丛生福禄考对高温胁迫的栽培性状及生理响应
- 格式:pdf
- 大小:1.32 MB
- 文档页数:5
植物对环境胁迫的感知与响应机制解析植物作为生物体,也需要以适应环境和生存下去。
然而,环境胁迫如高温、干旱、盐碱等条件的存在,却给植物造成了很大的困扰。
为了应对这些胁迫,在长期的进化过程中,植物逐渐形成了一套对环境胁迫的感知与响应机制。
第一节:植物对环境胁迫的感知机制在植物的感知机制中,主要包括外源信号的感知和内源信号的产生。
外源信号的感知是指植物对环境胁迫的感知,例如植物能感知到温度的升高、湿度的减少等外部环境的变化。
内源信号则是植物对外部环境信号的感知后产生的一系列信号分子,如激素、酶等。
第二节:植物对环境胁迫的响应机制在对环境胁迫的响应机制中,植物主要通过两种方式进行应对,即生理响应和分子响应。
1. 生理响应生理响应是指植物对环境胁迫进行生理上的调整,以适应外部环境的变化。
例如,当植物受到高温胁迫时,可以通过增加气孔的开放度来降低温度,或者通过调节水分的平衡来降低温度。
2. 分子响应分子响应是植物对环境胁迫进行分子层面上的变化,以应对外界的变化。
例如,植物受到干旱胁迫时,会产生一系列抗性蛋白,同时植物还可以通过抗性基因的表达来提高对干旱的抵抗能力。
第三节:植物对环境胁迫的适应机制在长期的进化过程中,植物逐渐形成了对环境胁迫的适应机制。
例如,一些植物可以通过改变生长季节来适应不同季节的环境胁迫,从而提高存活的机会。
另外,一些植物还可以通过种群多样性来应对环境变化,从而增强整个种群对胁迫的适应性。
综上所述,植物对环境胁迫的感知与响应机制是一个复杂的过程。
通过感知环境胁迫的信号,植物可以调整自身的生理和分子状态,以应对外界环境的变化。
而长期的进化过程中,植物逐渐形成了一套对环境胁迫的适应机制,以增强存活的能力。
这些机制的研究对于揭示植物的适应性进化以及提高植物的抗旱、抗病能力具有重要意义。
植物对胁迫的生理响应植物作为生命体,在面对环境中的各种威胁和胁迫时,具备了一系列的适应和生理调节机制,以保障其自身生存和繁衍的需要。
在这篇文章中,我们将探讨植物对胁迫的生理响应及其机制。
一、光照胁迫下的光合作用调节光照是植物生长和发育的重要因素之一,但过强或过弱的光照都会对植物产生不利影响。
在光照胁迫下,植物通过一系列的调节机制来维持其正常的光合作用过程。
一方面,植物通过增加叶绿素的合成和降低光化学反应的损失来提高光能的利用效率;另一方面,植物会产生一些保护性色素,如类胡萝卜素和花青素,来减少过强光照对植物的伤害。
二、干旱胁迫下的水分调节干旱是植物生长中最常见的胁迫之一。
为了应对干旱胁迫,植物会通过多种途径来维持其水分平衡。
植物根系会通过增长深入土壤中,以吸收更多的水分。
同时,植物会调节气孔的开闭,减少蒸腾作用,减少水分的流失。
另外,植物还会合成一些保护性蛋白和酶类物质来保护细胞免受脱水的伤害。
三、高温胁迫下的热量调节高温是另一种常见的胁迫因子,对植物的正常生长和发育产生较大影响。
在高温胁迫下,植物会通过热休克蛋白的合成和导入来保护细胞免受高温引起的蛋白质变性损害。
此外,植物还会调节细胞膜的脂质组成,增强其稳定性,以减轻高温胁迫对细胞膜的破坏。
四、盐碱胁迫下的离子平衡盐碱胁迫是指土壤中过高的盐和碱性含量对植物的影响。
在盐碱胁迫下,植物会努力维持其细胞内外的离子平衡。
植物通过调节根系解吸和排泄离子的能力,以及调节离子通道和转运蛋白的表达来维持细胞内离子的稳定。
此外,植物还会合成一些特殊的有机溶质,如脯氨酸和脆氨酸,来提高细胞的渗透调节能力,以应对盐碱胁迫。
总结:植物对胁迫的生理响应是一个复杂而精密的系统,它使得植物能够在恶劣环境中存活和繁衍。
这些生理响应包括光照胁迫下的光合作用调节、干旱胁迫下的水分调节、高温胁迫下的热量调节以及盐碱胁迫下的离子平衡。
通过这些生理机制,植物能够适应不同的环境条件,并尽可能地保持其正常的生长和发育。
高温胁迫下植物抗性生理研究进展《园林科技》2008年01期加入收藏获取最新商侃侃张德顺王铖(上海市园林科学研究所200232)摘要:温度是影响植物生理过程的重要生态因子,全球变化使得高温热害变得非常突出,成为限制植物分布、生长和生产力的一个主要环境因子。
本文综述了热胁迫对植物细胞膜的伤害、生理活动的影响和植物应对高温的生理生化变化及其机理,以期为绿化植物的引种驯化、珍稀濒危植物的迁地保护和植物良种的选育和选择提供理论依据。
关键词:高温胁迫;生理生化效应;热激蛋白频繁的人类活动排放了大量的温室气体,使其在大气中的含量逐步上升,导致了全球气候的变暖,在最近的100年内全球气温上升了大约0.3~0.6℃[1],并有逐年上升的趋势,预计到2100年全球气温将再升高5.5K[2]。
同时,全球变暖也会引发极端气候的频繁发生,如局部地区的异常高温、干旱等[3~6]。
城市化导致的热岛效应,使城市局部地区的温度更高,有些城市的热岛效应影响高达10℃[5]。
这些都使得高温热害变得非常突出,影响了植物的生理生态过程[7],成为限制植物分布、生长和生产力的一个主要环境因子[8~10]。
植物抗逆性潜能和特殊生境下植物的生态适应机制,是当前植物生理生态学研究的热点问题之一[11]。
而植物对胁迫的生理响应往往先于外在形态表现。
本文综述了热胁迫对植物细胞膜的伤害、生理活动的影响和植物应对高温的生理生化变化及其机理,以期为绿化植物的引种驯化、珍稀濒危植物的迁地保护和植物良种的选育和选择提供理论依据。
1高温对植物的膜伤害1.1细胞膜结构细胞膜作为联系植物细胞与外界环境的介质,它的组成、性质与细胞所处的环境息息相关,而外界环境对植物的胁迫危害首先在膜系统中表现出来。
高温是改变生物膜结构和破坏其功能的一个重要的胁迫因子,所以细胞膜被认为是受热害影响的主要部位。
高温胁迫改变了膜脂组成,破坏了内质网、高尔基体和线粒体等内膜系统的结构完整性,膜上离子载体的种类和作用发生改变,从而导致了膜的选择性吸收的丧失和电解质的渗漏[3,12]。
高温胁迫对植物生理影响的研究进展高温胁迫是指环境温度超过植物正常生长需求范围的情况下,植物受到的生理、生化和形态上的各种负面影响。
在全球气候变化的背景下,高温胁迫正逐渐成为限制植物生产和发展的主要因素之一。
因此,对高温胁迫下植物生理学和生化学方面的影响进行深入研究是非常必要的。
高温胁迫对植物生长发育的影响主要表现在以下几个方面:1. 形态结构发生变化。
高温胁迫会导致植物叶片、花青素、气孔等结构形态的改变,形态破坏使得植物的生物量减少,最终影响植物的生长发育。
2. 生理代谢失调。
高温胁迫下,植物体内发生的代谢反应发生改变,使得植物不能正常的进行光合作用和呼吸作用,导致减缓生长速度,降低植物的产量。
3. 生化反应的变化。
高温胁迫使植物体内多种酶的活性减弱或破坏,如过氧化物酶、超氧化物脱氢酶等,进而植物受到更多的有害物质的攻击,导致细胞色素失效。
因此,高温胁迫对植物的生长、幸存性和产量产生了极大的负面影响。
为了应对这一问题,科学家们在植物学中研究出了一些方法。
其中,要点有:1. 基因改良。
基因改良是目前应对高温胁迫的最有效的方法之一。
科学家们通过研究不同物种、不同品种在高温胁迫下的表现和生理响应,在分子水平上研究其中诱导灵敏的基因和信号通路。
通过基因技术改良植物,提高植物对高温胁迫的抗性,以保证植物的生长发育和生产效率。
2. 植物物质代谢。
可以利用植物自身的化合物来突破高温胁迫,如脯氨酸、多糖、营养剂等,以增加植物的抗性,并促进植物的恢复。
3. 植物栽培技术。
合理调整植物栽培技术可以提高植物的抗胁迫性。
如浇水和施肥等,也可以正向影响植物的抗性和优化生产。
总之,高温胁迫对植物生理的影响是全面的,通过研究高温胁迫的生理和环境因素,不断健全解决高温胁迫的方法,可以帮助科学家们更好的发展农业,提高农业生产质量和增加效益。
【正鑫花卉】走进公园,首先映入眼帘的是一片片粉红色的花球。
在茂盛上的树叶下显得格外夺人眼球。
这一团团簇拥在一起的花儿,一朵挨着一朵,一团接着一团。
弯下腰轻触这娇嫩的身躯,清风拂来,花儿在枝间欢快的跃动起来。
丛生福禄考是一个很独特的名字。
花儿也如同它的名字一样的独特。
下面我们来了解一下这个独特花儿的生长习性。
【丛生福禄考生长习性】➢光照:喜阳光充足,但稍荫也可生长,不耐日光暴晒。
➢温度:喜温暖,不耐酷暑炎热,耐寒。
在冬季气温不低于- 8℃地区为常绿草本,➢水:喜湿润偏干,耐干旱,忌涝。
7~8 月雨季,应注意及时排水防涝,而且在天气炎热时经常向地面喷水,以保持地面湿润。
➢施肥:丛生福禄考对肥料的要求不严, 但在生长周期内, 应重视施入基肥, 在整地时加施有机肥,施入500kg/hm2左右。
生长期适当施入少量氮肥及磷肥, 长叶期以氮肥为主, 花期可喷施磷肥。
【丛生福禄繁殖及苗期管理】◆扦插繁殖:丛生福禄考扦插繁殖的最佳时间是秋季和花后45 d 左右。
秋季选择健壮的植株, 采用当年生半木质化的, 长度5~7 厘米的枝条作插穗。
扦插基质可用干净的河沙或蛭石, 湿度要保持80%~90%,温度在20 ℃~30 ℃, 半个月后即可生根, 生根率可达80%以上。
◆分株:分株繁殖可在春、秋季节进行。
将苗挖掘出来, 分开根部交织生长的植株, 使之形成独立种苗, 按15~20 厘米的株行距进行栽种, 每穴可植入2~3 株, 植入后将土踩实, 浇透一次定根水,3d之后再浇一次水。
大约4 d 之后可进行一次松土保墒, 之后转入常规管理。
◆土壤:在排水良好疏松肥沃的中性土壤中生长较好, 但以石灰质土壤最适生长。
【发生的病虫害症状及防治方法】夏天高温高湿易发病福禄考易感染,猝倒病、根腐病等。
为避免病虫害发生,一周打一次药,多以防真菌感染病害,通常使用波尔多液、多菌灵、百菌清等。
福禄考叶枯病:该病主要特征是植株下部叶片首先枯黄,并逐渐向上发展,直到整个枝条枯死。
《高温胁迫下实用菊的生理响应及耐热性综合评价》篇一一、引言随着全球气候变暖的趋势,高温胁迫已经成为农作物生长过程中的一个重要问题。
作为我国传统的重要花卉和药用植物,菊花的生长和产量也受到了高温胁迫的严重影响。
因此,研究高温胁迫下实用菊的生理响应及耐热性综合评价,对于提高菊花的抗逆性、保障其产量和品质具有重要意义。
二、材料与方法1. 材料实验选用的菊花品种为耐热性较强的实用菊品种。
实验材料包括菊花幼苗、高温胁迫处理设备、生理指标测定仪器等。
2. 方法(1)实验设计:将菊花幼苗分为两组,一组为对照组(正常温度条件下生长),另一组为高温处理组(35℃-40℃高温胁迫处理)。
(2)生理指标测定:分别在高温处理0h、12h、24h、48h后,测定菊花的叶绿素含量、丙二醛含量、超氧化物歧化酶活性等生理指标。
(3)耐热性评价:根据实验结果,综合分析高温胁迫下实用菊的生理响应及耐热性。
三、结果与分析1. 叶绿素含量变化实验结果显示,随着高温胁迫时间的延长,实用菊的叶绿素含量逐渐降低。
在高温处理48h后,实验组菊花的叶绿素含量明显低于对照组。
这表明高温胁迫对实用菊的光合作用产生了负面影响,导致叶绿素合成减少。
2. 丙二醛含量变化高温胁迫下,实用菊的丙二醛含量呈现先升高后降低的趋势。
在高温处理24h时,实验组菊花的丙二醛含量达到峰值,之后逐渐降低。
这表明在高温胁迫初期,实用菊会产生一定的氧化应激反应,但随着机体适应和修复,丙二醛含量逐渐降低。
3. 超氧化物歧化酶活性变化超氧化物歧化酶是一种重要的抗氧化酶,能够清除体内的活性氧自由基。
实验结果显示,在高温胁迫下,实用菊的超氧化物歧化酶活性呈现先升高后降低的趋势。
这表明在高温胁迫初期,实用菊通过提高超氧化物歧化酶活性来抵抗氧化应激反应,但随着胁迫时间的延长,机体的抗氧化能力逐渐减弱。
4. 耐热性综合评价根据实验结果,实用菊在高温胁迫下的生理响应表现为叶绿素含量降低、丙二醛含量先升后降、超氧化物歧化酶活性先升后降。
5种杜鹃幼苗对高温胁迫的生理生化响应及 耐热性综合评价王凯红1刘向平1张乐华1,①凌家慧2,李立11.江西省・中国科学院庐山植物园,江西庐山332900;2.江西省庐山自然保护区管理处,江西庐山332900摘要:以杜鹃花属(Rhododendron L.)5个亚属5种杜鹃的4年生实生苗为材料,对模拟高温(30℃和38℃)条件下叶片丙二醛(MDA)、过氧化氢(H2O2)和脯氨酸(Pro)含量以及超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化氢酶(CAT)和抗坏血酸过氧化物酶(APX)活性进行了测定分析,对各指标进行了相关性和主成分分析;在此基础上,采用隶属函数法对5种杜鹃的耐热性进行了综合评价,并通过建立最优回归方程对综合评价结果进行检验。
测定结果表明:与对照( 22℃)相比,5种杜鹃幼苗的MDA、H2O2和Pro含量以及CAT和APX活性均随胁迫温度的升高而增加;SOD活性则表现为在30℃条件下小幅增加、38℃条件下下降的趋势。
CAT活性与H2O2和Pro含量及APX活性均呈极显著正相关关系(P<0.01),APX活性与Pro含量和SOD活性分别呈显著的正相关和负相关关系(P<0.05)。
通过主成分分析可将测定的6个单项指标转换成3个相互独立的综合指标,累计贡献率达87.52%。
根据综合评价值(D),可将5种杜鹃的耐热性分为4个等级:白花杜鹃[R.mucronatum (Blume)G.Don]的耐热性最强,毛棉杜鹃(R.moulmainense Hook.f.)和羊踯躅[R.molle (Blume)G.Don]耐热性较强,红滩杜鹃(R.chihsinanum Chun et Fang)耐热性较弱,红棕杜鹃(R.rubiginosum Franch.)的耐热性最弱。
利用所建立的最优同归方程对供试种类进行耐热性预测,预测值与D值的次序完全一致,表明综合评价法可用于杜鹃苗期耐热性的评价。
杜鹃花属;幼苗;耐热性;主成分分析;隶属函数法;综合评价 Q945.78; Q948.112+.2; S685.2A1674-7895(2011)03-0029-07Physiological-biochemical response of five species in Rhododendron L. to high temperature stress and comprehensive evaluation of their heat toleranceWANG Kai-hongLIU Xiang-pingZHANGLe-huaLING Jia-huiLI Li2011-01-25国家科学技术部国际科技合作项目(2007DFA31410);江西省学科带头人培养计划项目(2010DD00500);江西省国际科技合作项目(2007BN18700);江西省星火计划项目(2008CX06500)王凯红(1968-),女,江西庐山人,本科,工程师,主要从事杜鹃花属植物的引种驯化及保育技术研究。
高温胁迫对植物生理影响的研究进展随着全球气候变暖的加剧,高温胁迫对植物生长发育和生理代谢产生了越来越严重的影响,成为当前植物学研究的热点之一。
高温胁迫会导致植物叶片生理生化代谢异常,影响光合作用,破坏细胞膜结构,引起生长发育受损,降低农作物产量和品质。
深入研究高温胁迫对植物生理的影响机制,为培育耐高温的抗逆基因资源和新品种提供理论基础,对保障粮食安全和生态环境具有重要意义。
高温对植物的生理生化影响主要包括以下几个方面:对光合作用的影响:高温胁迫会导致植物叶绿素含量下降、光合酶活性降低以及气孔关闭,从而影响光合作用的进行。
高温还会诱导超氧化物歧化酶和过氧化物酶等氧化还原酶活性的上调,导致氧化应激反应的产生,进一步破坏叶绿体、线粒体和质膜结构,降低叶绿体的光合活性,导致光合作用受到抑制。
对细胞膜结构的破坏:高温胁迫会导致植物细胞膜脂质过氧化反应的增加,从而破坏细胞膜的完整性和稳定性,导致细胞膜通透性增加,离子渗透加剧,细胞内外环境失衡,最终导致细胞死亡。
对植物生长发育的影响:高温胁迫会导致植物花粉发育受阻、落粉增加,影响授粉成功率和种子成熟率,从而降低作物产量。
高温还会诱导植物产生生长素合成及信号转导通路中关键酶活性的改变,进而影响植物的生长发育。
近年来,针对高温胁迫对植物生理影响的研究取得了一些重要进展。
研究发现,植物通过改变抗氧化酶活性和蛋白质表达调控抗氧化系统,以应对氧化应激反应的产生。
一些植物对高温胁迫的响应机制也得到了一定程度的阐明。
研究发现拟南芥 (Arabidopsis thaliana) 脱落酸 (abscisic acid, ABA) 信号通路中的乙烯合成途径对高温胁迫具有正调控作用,进而增强植物对高温的耐受性。
在植物抗高温胁迫的遗传改良方面,研究人员也取得了一些重要成果。
通过利用遗传工程技术,成功地转导了一些与热应激响应相关的抗逆基因,如热激蛋白 (heat shock protein, HSP)、转录因子 (transcription factor, TF)、抗氧化酶等,进而提高了植物对高温胁迫的耐受性。
植物对胁迫因素的生理响应植物作为生物界的重要成员,生长发育过程中会受到各种胁迫因素的影响,如高温、低温、干旱、盐碱等。
这些胁迫因素对植物的生理活性、生长发育和产量产生了显著的影响。
为了适应这些胁迫环境,植物会通过一系列的生理响应来进行适应和保护。
1. 温度胁迫高温胁迫会导致植物体内的蛋白质、脂类和核酸受到损伤,同时也会引起细胞膜的不稳定和氧化损伤。
植物通过激活热休克蛋白(heat shock protein,HSP)和抗氧化酶的表达来应对高温胁迫。
热休克蛋白可以帮助植物细胞恢复正常蛋白质的构象和功能,抗氧化酶则能够清除细胞中的活性氧自由基,减轻氧化损伤。
低温胁迫对植物的生长发育也会造成负面影响。
植物在低温下会遭受冻害和水分胁迫,细胞壁的完整性也会受到破坏。
植物为了应对低温胁迫,会产生特殊的蛋白质和脂类,如冷冻结构蛋白和脂肪酸。
这些物质可以保护细胞膜的稳定性和结构完整性,并减少细胞内的冷冻损伤。
2. 干旱胁迫干旱胁迫会导致植物体内水分的缺乏,进而影响植物的正常生理活动。
在干旱环境下,植物通过调节气孔的开合来减少水分散失,同时也减少光合作用。
植物还会积累渗透调节物质,如可溶性糖和脯氨酸,以提高细胞的渗透调节能力,使细胞保持稳定。
此外,植物在干旱胁迫下还会合成各种保护性蛋白质,如脯氨酸和渗透调节蛋白,来维持细胞的稳定和功能。
这些蛋白质具有保护膜蛋白的结构完整性、参与信号传导和防御机制等功能。
3. 盐碱胁迫盐碱胁迫是指土壤中钠离子(Na+)和钙离子(Ca2+)浓度的升高,导致植物根系吸收水分和养分的难度加大。
植物在盐碱胁迫下会受到离子毒害、氧化损伤和水分胁迫的影响。
为了应对盐碱胁迫,植物采取了多种生理响应策略。
首先,植物会增加细胞膜中脂质含量,提高细胞膜的稳定性。
其次,植物还会合成耐盐性蛋白质,如APX(抗坏血酸过氧化物酶)和SOD (超氧化物歧化酶),这些蛋白质可以清除活性氧自由基,减轻氧化损伤。
同时,植物还通过分泌根际酸、草酸菌素等物质来提高土壤的盐碱度,减轻盐碱胁迫。
夏玉米对高温胁迫的生理响应及抗逆基因表达研究进展作者:贾笛迩朱紫薇孙功祥来源:《农业灾害研究》2019年第03期摘要 ;高温是玉米种植区域的非生物胁迫之一,高温胁迫对玉米生理变化及基因表达产生不利影响,导致玉米产量和品质降低。
该文对高温胁迫下夏玉米生理变化和基因表达进行了综述:高温诱导夏玉米电导率及脂膜过氧化产物丙二醛(MDA)含量增加,超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化物酶(POD)、过氧化氢酶(CAT)、抗坏血酸过氧化酶(APX)、谷胱甘肽还原酶(GR)等抗逆性酶活性提高;高温胁迫还导致穗位叶净光合速率(Pn)、气孔导度(Gs)、最大光化学效率、光量子产量、光化学猝灭系数、磷酸烯醇式丙酮酸羧化酶(PEPC)和核酮糖二磷酸羧化酶活性降低,CO2浓度和非光化学猝灭系数提高。
同时,高温胁迫诱导了夏玉米耐热基因的表达量增加,提高了其耐热性。
夏玉米对高温胁迫无论生理变化还是基因表达量增加,均存在基因型间的显著差异。
关键词夏玉米;高温胁迫;抗逆性酶;光合作用;基因表达中图分类号:S513;S42文献标识码:A文章编号:2095-3305(2019)03-086-03DOI: 10.19383/ki.nyzhyj.2019.03.036高温热害是造成作物逆境的非生物胁迫因素之一,是指气温过高对作物的生长发育以及产量造成的伤害与损失。
一般把高温热害标准定为连续3 d及以上日平均气温≥30℃、日最高气温≥35℃[1]。
根据IPCC预测,21世纪大气温度将上升1.4~5.8℃,夏季极端高温会在全球多区域频繁出现,范围广,持续时间长[2-3]。
近年来,随着全球气候变暖,玉米种植区高温热害频发,严重影响玉米产量与品质[2-4]。
高温等非生物胁迫诱导植物体内产生活性氧(ROS),活性氧的变化是植物响应高温热害胁迫的典型特征[4]。
高温诱导植物体内活性氧积累,蛋白质、DNA和脂类氧化损伤[5],导致光合系统产生损伤,降低光合速率,致使作物减产[6]。
植物对高温胁迫的响应与适应高温对植物生长和发育过程产生了明显的影响,被认为是全球气候变暖带来的一个重要挑战。
植物在适应高温胁迫的过程中,通过一系列的响应机制和适应策略来应对不利环境条件。
本文将从植物对高温胁迫的响应和适应两个方面进行阐述。
一、植物对高温胁迫的响应植物在遭受高温胁迫时,会发生一系列的生理、生化和分子变化以适应不良环境。
首先,植物的生长和发育速度会受到抑制,导致植株高度和新鲜重量的降低。
其次,高温对植物细胞膜的稳定性造成损害,导致细胞质和胞间液的渗漏增加,进而影响植物的水分平衡。
此外,高温还会引发活性氧物质的积累,导致细胞内氧化应激反应加剧,并对植物DNA、蛋白质和膜脂产生损伤。
为了适应高温胁迫,植物通过一系列的生理和生化途径响应并缓解这些负面影响。
首先,植物会合成热休克蛋白(heat shock protein, HSP),这是一类能够保护细胞内蛋白质免受热胁迫损伤的特殊蛋白质。
HSP通过帮助其他蛋白质正确折叠、修复和重组,从而维持细胞内蛋白质的稳定性。
此外,植物还会积累抗氧化物质,如抗坏血酸和谷胱甘肽,以清除细胞内过剩的活性氧物质,减轻氧化应激状况。
二、植物对高温胁迫的适应除了响应机制外,植物还通过一些适应策略来增强自身对高温胁迫的适应能力。
首先,植物具有温度记忆能力,经过适应性训练后,可以通过改变基因表达和转录因子的调控,使植物在未来遇到高温胁迫时产生更好的适应效应。
其次,植物也通过生长调节和形态改变来适应高温环境。
例如,在高温胁迫下,植物的表皮细胞形态发生变化,形成更厚的角质层,从而减少水分蒸发和热量吸收。
此外,植物还可以通过改变气孔开闭调节蒸腾作用,以减少水分流失和热量损失。
植物还可以通过调节内源激素的合成和信号传导来适应高温胁迫。
研究发现,植物的茉莉酸和脱落酸合成通路在高温胁迫下受到调控,这些激素参与了植物的生长、发育和抗逆能力的调节。
此外,植物还可以通过与其他生物的互作来增强其对高温胁迫的适应能力。
《高温胁迫下实用菊的生理响应及耐热性综合评价》篇一一、引言近年来,全球气候逐渐变暖,高温天气频繁出现,给农业生产和植物生长带来了极大的挑战。
实用菊作为重要的观赏和药用植物,其生长和发育过程往往受到高温胁迫的影响。
因此,研究高温胁迫下实用菊的生理响应及耐热性综合评价,对于提高其抗逆能力和栽培管理具有重要意义。
本文通过实验研究,探讨了高温胁迫对实用菊生理特性的影响,并对其耐热性进行了综合评价。
二、材料与方法1. 材料实验所用材料为不同品种的实用菊,包括金丝菊、万寿菊、波斯菊等。
2. 方法(1)实验设计:设置正常温度组和高温胁迫组,分别对各品种实用菊进行生长观察和生理指标测定。
(2)生理指标测定:测定各品种实用菊在不同温度下的叶绿素含量、光合作用速率、蒸腾速率、气孔导度等生理指标。
(3)耐热性评价:根据实验结果,综合分析各品种实用菊的耐热性。
三、结果与分析1. 生理响应(1)叶绿素含量:在高温胁迫下,各品种实用菊的叶绿素含量均有所降低,但不同品种间存在差异。
其中,金丝菊的叶绿素含量降低幅度较小,表现出较强的抗逆能力。
(2)光合作用速率和蒸腾速率:高温胁迫下,各品种实用菊的光合作用速率和蒸腾速率均有所降低。
其中,波斯菊的光合作用速率降低幅度较小,表现出较好的光合能力。
(3)气孔导度:高温胁迫下,各品种实用菊的气孔导度有所增加,以万寿菊最为明显。
这表明在高温环境下,万寿菊的气孔开放程度较大,可能有利于其散热,但也可能导致水分散失过多。
2. 耐热性综合评价根据实验结果,各品种实用菊的耐热性存在差异。
其中,金丝菊在高温胁迫下表现出较强的抗逆能力,叶绿素含量降低幅度较小,光合作用速率和蒸腾速率相对稳定,气孔导度适中,整体表现出较好的耐热性。
而波斯菊虽然光合作用速率降低幅度较小,但在其他生理指标上表现一般,耐热性相对较弱。
万寿菊在气孔导度方面表现较好,但在其他生理指标上表现一般或较差,因此其耐热性需进一步观察和研究。
通过分子设计育种实现作物对高温胁迫的适应性引言:全球气候变化带来的高温胁迫对农作物的生长和产量造成了巨大的影响。
当前的全球变暖趋势对农业生产提出了巨大的挑战,因此寻找有效的方法提高作物对高温的适应性至关重要。
分子设计育种作为一种新的育种策略,提供了一种可行的途径来改善作物对高温胁迫的适应性。
一、高温胁迫对作物的影响高温胁迫会导致作物生理和生化过程的紊乱,进而影响其生长和发育。
在高温环境下,作物的光合作用、呼吸作用和光能利用效率降低,导致光合产物的减少。
同时,高温还会破坏作物的细胞膜,引起离子渗透和细胞液丢失,导致水分亏缺和营养物质失调。
高温还会促进作物植株内源激素的失衡,从而进一步抑制作物的生长和发育。
二、分子设计育种的原理分子设计育种是指利用分子生物学和基因工程技术通过设计和调整作物基因组来改善作物性状的育种方法。
通过分子设计育种,可以精确地修改或引入特定的基因,从而增加作物对高温胁迫的耐受性。
三、关键基因的发掘与调控为了实现作物对高温胁迫的适应性,首先需要发掘与高温胁迫相关的关键基因。
通过利用生物信息学和大数据分析技术,可以筛选出与高温胁迫响应相关的候选基因。
这些基因可以分为热休克蛋白基因、抗坏血酸途径相关基因、膜脂代谢相关基因等多个类别。
在了解这些关键基因的功能和调控机制后,可以利用分子设计育种的方法对这些基因进行调控。
例如,通过基因编辑技术,可以精确地修改或删除特定的基因序列,以增加作物对高温胁迫的抵抗能力。
另外,还可以利用转基因技术引入耐高温基因,从而提高作物的适应性。
四、生理过程的调节除了调控与高温胁迫相关的关键基因外,分子设计育种还可以通过调节作物的生理过程来提高其对高温胁迫的适应性。
例如,可以通过优化作物的光合作用和光能利用效率,降低对高温的敏感度。
此外,还可以调节作物的水分平衡和营养物质的吸收利用效率,提高作物的抗旱能力和营养供应。
五、分子监测与筛选途径为了评估作物对高温胁迫的适应性以及分子设计育种的效果,可以利用分子监测和筛选途径进行评估。
高温胁迫对植物生理的影响摘要:全球变暖使得高温成为影响植物生理的一个重要的环境因子。
本文综述了高温胁迫下植物在细胞膜、叶片相关生理活动和相应的生理生化效应上的变化情况。
关键词:高温胁迫;细胞膜;光合作用;生理生化效应Abstract:Global warming makes high temperature which is an important environment factor that affects plant physiology. Plants under high temperature stress in the cell membrane is reviewed in this paper, blade related physiological activities and the corresponding change of physiological and biochemical effect. Key words: high-temperature stress; cell membrane. Photosynthesis; physiological and biochemical effect在胁迫因子中,温度是影响植物生长的主要因子。
近年来,随着温室效应的加剧,全球气温上升,高温1__________________________________________________直接威胁着二十一世纪农业生产方向。
许多植物面临着高温胁迫的严峻挑战。
研究高温胁迫对植物生理的影响,将有助于采取有效的措施减轻高温的危害。
1 高温胁迫对细胞膜的影响细胞膜系统是热损伤和抗热的中心。
植物对逆境的适应主要在细胞膜系统,特别是质膜和内囊体膜的特性。
温度逆境不可逆的伤害,原初反应发生在生物膜系统的类质分子热相变上[1]。
因为,按照生物膜的流动镶嵌学说,膜的双分子层脂质的物理状态通常成液晶相,温度过高会转化为液相,温度过低会转化为凝胶相,后两种状态都会影响镶嵌于脂质中层的构型极其功能。
丛生福禄考栽培系列技术
钱亚静
【期刊名称】《农村科技》
【年(卷),期】2012(000)010
【摘要】丛生福禄考是花葱科福禄考属草本多年生宿根花卉,是一种优良的地被花卉,它不仅覆盖率高。
观赏性优,而且栽培管理简单,耐旱、耐寒、耐盐碱能力强,在园林绿化中使用越来越多,需求量逐年增加。
【总页数】1页(P60-60)
【作者】钱亚静
【作者单位】奎屯市园林局,奎屯833200
【正文语种】中文
【中图分类】S681.9
【相关文献】
1.耐寒地被植物r——丛生福禄考的栽培与应用前景 [J], 姚春玲
2.丛生福禄考的繁殖和栽培管理技术 [J], 杨逢蔚;张毅;王书宏
3.丛生福禄考的繁殖和栽培管理技术 [J], 李春华;王堃;崔建龙
4.丛生福禄考的生物学特性及繁育栽培技术 [J], 刘振东
5.丛生福禄考对高温胁迫的栽培性状及生理响应 [J], ZHU Jun-jie;ZHANG Guo-wei;XU Ming
因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
不同油茶品种苗对高温胁迫的生理响应及耐热性评价傅志强;张恒;刘祯;奚如春【期刊名称】《林业科学研究》【年(卷),期】2024(37)2【摘要】[目的]近年来我国南方高温频发,高温环境已成为油茶生长发育的重要限制因素。
为探究不同油茶品种高温胁迫的生理响应及耐热性差异,筛选出适合在高温地区种植的油茶品种。
[方法]选用我国各省(区)现行的15个油茶品种为研究对象,以其3年生嫁接幼苗为试验材料,分别调查测定各油茶品种在高温胁迫(覆膜增温)下的叶片相对含水量、干物质含量、光合色素、渗透调节物质和抗氧化酶活性等12个生理生化指标,并利用主成分分析法和隶属函数法对15个品种的耐热性进行综合评价。
[结果]在高温胁迫下,参试油茶品种的叶片相对含水量和干物质含量降低;光合色素含量降低,且多数存在显著差异(p<0.05);丙二醛含量、抗氧化酶活性和渗透调节物质含量均升高;隶属函数分析表明,15个油茶品种的耐热性存在差异,其强弱顺序为华金>赣州油1号>华硕>岑软2号>湘林210>赣无2>长林53号>粤韶75-2>粤韶77-1>长林4号>岑软3号>华鑫>长林40号>赣州油7号>赣石83-4。
[结论]15个油茶品种中,华金、赣州油1号、华硕、岑软2号和湘林210耐热性强,适宜高温地区引种栽培。
【总页数】12页(P189-200)【作者】傅志强;张恒;刘祯;奚如春【作者单位】华南农业大学林学与风景园林学院;广东省森林植物种质创新与利用重点实验室【正文语种】中文【中图分类】S794.4【相关文献】1.不同耐热性萝卜幼苗对高温胁迫的生理响应2.高温胁迫下不同耐热性萝卜幼苗生理响应分析3.高温胁迫下杜鹃不同品种的生理响应及其耐热性综合评价4.六个大丽花品种对高温胁迫的生理响应及耐热性综合评价5.苦瓜苗期对高温胁迫的生理响应及耐热性初步评价因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
绿化用丛生福禄考培育
丛生福禄考又称之为草夹竹桃,五色梅,花荵科天蓝绣球属。
多年生草本植物,原产于北美洲,日前在各地较为常见,常用于环境绿化,是代替传统草坪的地被植物。
那么,我们一起来了解一下丛生福禄考怎么养,丛生福禄考的养殖方法和注意事项吧!
丛生福禄考怎么养,丛生福禄考的养殖方法和注意事项:
1、生长习性:丛生福禄考植物是一、二年生草花,喜光、耐寒、喜温和湿润气候、不耐酷暑、炎热;喜排水良好、轻松土壤、不耐干旱、忌涝、忌盐碱。
据了解,丛生福禄考植物在贫瘠的黄沙土地上,即使多日无雨,仍可生存生长。
2、浇水施肥:丛生福禄考植物生长健壮,在微干性土壤中亦能生长良好。
丛生福禄考植物对肥料的要求不严,但在生长周期内,种植人员应重视施入基肥,在整地时加施有机肥,每亩施入500公斤至1000公斤左右。
在丛生福禄考植物进入生长期,适当施入少量氮肥及磷肥,长叶期以氮肥为主,花期可喷施磷肥。
3、修剪:据了解,丛生福禄考植物在夏季应注意及时修剪,在开花后是修剪的时期,应剪去开过花的枝蔓和不争气的枝蔓。
同时,种植人员发现杂草,应人工进行,可以有效的提高植物的观赏价值。
以上就是丛生福禄考怎么养,丛生福禄考的养殖方法和注意事项了,不仅覆盖率高、观赏价值也很强,是优良的地被花卉,是良好的地被植物,用于点缀草坪或吊盆栽植。
高温胁迫下大苞景天的形态特征及生理响应傅杨;杨柳青;吴红强;刘志昂;廖飞勇;陈月华;黄琛斐【摘要】To study the thermal stability of Sedum amplibracteatum K. T. Fu and physiological characteristics under different high temperature stress, the Licor 6400 portable photosynthetic apparatus produced by U.S.A. was used to determine fluorescence parameters of S. amplibracteatum. The results show that since the degrees of high temperature stress were slowly increased, S. amplibracteatum leaves appeared symptoms of curly, dry, yellow wilting, dried-up and drop, part of the plant stem base were soft and rot, the symptoms reflected that S. amplibracteatum had not temperature withstanding characteristics. In the process of the high temperature stress, the relative water content of leaves and fluorescence parameters of S.amplibracteatum had a descending trend; and the conductivity showed a upward trend. From the physiological change and morphological characteristics, S. amplibracteatum cannot resist high temperature.%为了研究大苞景天 Sedum amplibracteatum K. T. Fu 的耐热性及在不同高温胁迫下的生理特点,采用美国生产的 Licor6400便携式光合仪对大苞景天的荧光参数进行了测定。
黑龙江农业科学2019(1):82G85H e i l o n g j i a n g A gr i c u l t u r a l S c i e n c e s h t t p ://w w w.h a a s e p.c n D O I :10.11942/j.i s s n 1002G2767.2019.01.0082丛生福禄考对高温胁迫的栽培性状及生理响应朱军杰,张国威,胥㊀明(上海辰山植物园,上海201612)摘要:为评价丛生福禄考种间耐热性,以丛生福禄考为试验材料,设置20㊁25㊁30㊁35㊁40ħ五个温度,观察生长情况并测定其叶绿素含量㊁组织含水量㊁细胞膜伤害率,可溶性蛋白含量㊁丙二醛含量以及脯氨酸含量等生理指标.结果表明:在20和25ħ时,长势好,生理指标没有显著变化;在30和35ħ环境下,叶子开始枯黄,脯氨酸含量升高㊁丙二醛和可溶蛋白含量降低.在40ħ环境下,植株长势差.丛生福禄考在30ħ以下环境生长时,长势较好.35ħ及以上时,长势受到影响,生理指标出现显著变化.具有一定的耐热性.伤害率㊁丙二醛含量㊁可溶性蛋白含量和脯氨酸含量可作为丛生福禄考品种耐热性鉴定的指标.关键词:丛生福禄考;高温;生理指标收稿日期:2018G06G20基金项目:上海市绿化和市容管理局科学技术资助项目(G 162413).第一作者简介:朱军杰(1993G),男,学士,助理工程师,从事观赏植物研究.E Gm a i l :x u m@s h l i n g a n g.c o m .㊀㊀丛生福禄考,属花荵科,原产于北美东部堤岸及草原上,为春化型多年生常绿耐寒宿根草本花卉,老茎半木质化,匍匐性草甸状多年生.叶针状,簇生,革质,长约1.3c m .花有紫红色㊁白色㊁粉红色等.花期为4G5月和8G9月,是春秋两季重要的节日花卉.近年来,丛生福禄考已经在北方地区被引种栽培并推广.丛生福禄考于2004年引进山东,经过长期试验观察具有良好的耐寒㊁耐旱性,是良好的花坛栽植品种.郑州市于2006年引进丛生福禄考,经试验观察总结出栽培要点,并推广.而在上海地区,上海辰山植物园内栽植的丛生福禄考长势却逐年变差,且秋季开花不如春季开花.南方地区夏季常有持续高温且部分地区最高气温可达35ħ以上,由于对丛生福禄考耐热性的研究鲜有报道,因此鉴定丛生福禄考的耐热性,判断它在夏天是否能安全越夏,具有十分重要的意义.植物耐热性研究可以采用生理指标及形态指标的方法.曲彦婷等[1]对进行福禄考属植物耐寒性试验,对脯氨酸㊁叶绿素㊁丙二醛含量和超氧化物歧化酶进行测定,认定丛生福禄考品种的抗寒性优于宿根福禄考.孙黎黎[2]将丛生福禄考与五芒雀麦进行抗旱性试验,对脯氨酸,丙二醛等生理指标的测定,判断出丛生福禄考也具有较强的抗旱性.研究高温对丛生福禄考生理指标的影响,探究其耐热性,并为丛生福禄考种间耐热性评价提供依据.1㊀材料与方法1.1㊀材料试验材料为丛生福禄考品种P h l o xs u b u l a t a 一年生扦插苗.1.2㊀方法1.2.1㊀试验设计㊀试验于2016年12月至2017年1月在上海辰山植物园后备温室内进行.将选取规格,生长势一致的一年生扦插苗,上盆.置于人工气候箱内进行高温处理.处理温度设置为:20ħ/15ħ(昼/夜)㊁25ħ/20ħ(昼/夜)㊁30ħ/25ħ(昼/夜)㊁35ħ/30ħ(昼/夜)㊁40ħ/35ħ(昼/夜).各温度处理28d .处理期间光照强度为8000l x ,光周期为10h /14h (昼/夜).相对湿度60%.定期适度浇水,保持基质湿润.每组处理重复3次,每重复10株植株.1.2.2㊀测定指标及方法㊀每处理7d,剪取成熟的叶片,洗净并用干净纱布拭干,混合取样,用于测定生理指标.除叶绿素含量外,各生理指标均按照«植物生理学实验教程»测定[3].叶绿素含量使用S P A D G502测定,每个处理选取3个叶片进行测定.组织含水量使用常压干燥法.称取一定量的叶片进行称量,记为鲜重W 1.之后将叶片放入装有100m l 蒸馏水的的烧杯中,24h 之后测量叶片鲜重,记为饱和鲜重W 2.随后将叶片放入80ħ的干燥箱中进行烘干,24h 之后取出,称量干重,记为W 3.组织含水量按公式计算.组织含水量(%)=W 1-W 3W 2-W 3ˑ100称取植物叶片0.5g,放入装有少量蒸馏水的281期㊀㊀朱军杰等:丛生福禄考对高温胁迫的栽培性状及生理响应试管中抽气至植物叶片下沉至底部,再转移到烧杯中定容至100m L ,静置20m i n,用电导仪测量.随后放入100ħ的沸水浴中20m i n ,取出冷却后再次测量电导率.细胞膜伤害率(下文简称伤害率)按下式计算.伤害率(%)=处理电导率煮沸电导率ˑ100脯氨酸含量采用酸性茚三酮法法测定.称取叶片1g ,用4m L3%磺基水杨酸研磨,匀浆液装入离心管中沸水浴10m i n ,冷却后3000g 离心10m i n ,取上清液定容至5m L 备用.取2m L 脯氨酸提取液,加入2m L 蒸馏水㊁2m L 冰乙酸及4m L2.5%茚三酮,沸水浴60m i n ,冷却后加入4m L 甲苯萃取红色物质.静置后,取甲苯相在520n m 下测定O D 值.根据O D 值从标准曲线上查出对应的脯氨酸含量,按下式计算样品中的脯氨酸含量.辅氨酸含量(μg g G1)=ρˑV /m 式中,ρ为从标准曲线上查出的测定液中脯氨酸的含量,μg m L G1;V 为脯氨酸提取液总体积,m L ;m 为植物材料的质量,g.植物在逆境或衰老条件下,会发生膜脂的过氧化作用.丙二醛(M D A )是膜脂过氧化产品之一,其浓度表示细胞膜脂质的过氧化强度和和膜系统的伤害程度,所以是逆境生理指标.丙二醛含量采用硫代巴比妥酸法测定.称取叶片0.5g ,加入50m m o l L G1磷酸缓冲液(p H 7.8)研磨,10000g 离心10m i n ,上清液定容至5m L ,取上清液备用.取上清液1.5m L ,加入0.5%B A T 溶液2.5m L ,混合后于沸水浴上反应30m i n ,冷却后4000g 离心10m i n ,上清液分别于532㊁600及450n m 波长下测定O D 值.结果按下式计算.M D A (μm o l L G1)=6.45ˑ(O D 532-O D 600)-0.56ˑO D 450使用考马斯亮蓝G G250染色法测定.称取2g 叶片剪碎,加入10m L0.1m o lL G1的磷酸缓冲液(pH 7.0),研磨提取,13000g 离心15m i n ,取上清液置4ħ备用.准确吸取0.1m L 样品提取液,加入4.9m L 考马斯亮蓝G G250蛋白试剂,将试管溶液倒转充分混合,放置2m i n 后在595n m 下比色.根据吸光度,结果按下式计算.蛋白质含量(m gg -1F W )=M 0ˑV 0V 1M 1式中,M 0为查标准曲线得到的样品测定管中蛋白质的质量,m g;V 0为提取液总体积,m L ;V 1为测定时取样液体积,m L ;M 1为取样量,g.1.2.3㊀数据分析㊀数据计算使用E x c e l 2010完成,统计分析使用S P S S 22.0完成,图形绘制使用E x c e l 2010完成.2㊀结果与分析2.1㊀高温胁迫对丛生福禄考栽培性状的影响定期对各温度胁迫处理的植株形态进行观察,初步得到:高温处理7d 后,40ħ处理组的植株部分叶片开始发黄.其余处理组植株长势良好,叶片深绿色.高温处理14d 后,各处理组植株茎段开始生长,新叶细窄,新茎变细,叶片间距变大.40ħ处理组植株,茎段开始枯死,新茎生长量小.高温处理21d 后,35ħ处理植株开始出现老茎枯死,老叶枯黄的现象,新茎长势良好.40ħ处理植株叶片黄化和茎段枯死的现象加剧.其余处理组长势良好.高温处理28d ,20和25ħ处理植株生长良好,叶片翠绿.30ħ处理植株叶片绿色,基部少量叶片枯死.35ħ处理植株苗木死亡一半,基部有萌蘖.40ħ处理植株均枯死.2.2㊀相同温度不同时间处理对丛生福禄考生理指标的影响2.2.1㊀叶绿素含量㊀由表1可知,随着处理时间的增加,植株20ħ时叶绿素含量相对稳定;25ħ处理组呈下降趋势,28d 处理组与其它时间处理组相比降幅较大,差异显著;30ħ组呈下降趋势,28d 处理组与其它时间处理组相比降幅较大;35ħ组叶绿素呈下降趋势.2.2.2㊀相对含水量㊀各温度处理组的植株组织相对含水量没有显著变化.2.2.3㊀伤害率㊀20和25ħ处理组的伤害率没有显著变化;30和35ħ组的伤害率随着时间的增加而增加,均在14d 时伤害率显著上升.2.2.4㊀脯氨酸含量㊀各温度处理组植株脯氨酸含量均随着时间的增加而增加,只是达到峰值所需时间不同.20ħ处理组在第28d 时达到峰值,25ħ处理组在第14天时达到峰值,30ħ处理组在第7天达到峰值,之后下降.35ħ处理组在第21天时达到峰值.2.2.5㊀丙二醛含量㊀20和30ħ处理组植株的丙二醛含量在第14天时达到峰值后,开始下降;25ħ处理组的丙二醛含量没有随时间变化而变38㊀㊀㊀㊀㊀黑㊀龙㊀江㊀农㊀业㊀科㊀学1期化;35ħ处理组的丙二醛含量呈上升趋势,在第28天时达到峰值.2.2.6㊀可溶性蛋白含量㊀各温度处理组植株的可溶性蛋白含量随着时间的增加而减少,20ħ时在第21天达到最小值后,趋于平稳.25ħ时在第14天和21天时,降幅显著.30ħ时可溶性蛋白含量在第14和28天降幅显著;35ħ在第28天时降幅显著.表1㊀同温度不同时间处理对丛生福禄考生理指标的影响T a b l e 1㊀T h e e f f e c t o f d i f f e r e n t t i m e p r o c e s s i n g w i t h t h e s a m e t e m p e r a t u r e o n p h y s i o l o gi c a l i n d e x o f P h l o x s u b u l a t a温度/ħT e m pe r a t u r e 时间/d T i m e 叶绿素/S P A D C h l o r o p h y l l 组织含水量/%T i s s u em o i s t u r e c o n t e n t伤害率/%D a m a g e r a t e 脯氨酸/(μg g G1)P r o l i n e丙二醛/(μm o l g G1F W )M D A可溶性蛋白/(m g g G1F W )S o l u b l e p r o t e i n 20728.28ʃ3.01a 84.00ʃ3.60a 15.45ʃ4.01a 5.69ʃ3.82b 0.97ʃ0.09b 3.67ʃ0.69a 1429.67ʃ4.51a 80.53ʃ1.26a 24.19ʃ1.65a 3.09ʃ1.22b 1.21ʃ0.13a 2.74ʃ0.40a2126.14ʃ5.33a 82.73ʃ1.57a 16.15ʃ11.48a 5.69ʃ3.08b0.8ʃ0.04b 1.11ʃ0.58b 2822.40ʃ5.58a 80.43ʃ1.30a 12.79ʃ0.95a 16.26ʃ1.73a 0.68ʃ0.02c1.54ʃ0.15b 25724.23ʃ1.16a b 77.49ʃ3.32a 16.39ʃ3.88b 13.50ʃ3.98b 0.93ʃ0.07a 4.85ʃ0.43a 1427.41ʃ3.78a 83.39ʃ2.75a 29.69ʃ5.32a 20.18ʃ5.14a 1.22ʃ0.13a 2.87ʃ0.20b 2120.69ʃ3.72b 81.67ʃ0.50a 20.30ʃ1.21b 7.39ʃ1.09b0.92ʃ0.15a 2.27ʃ0.51b c 2814.13ʃ0.80c83.44ʃ3.10a 21.62ʃ1.94b 19.74ʃ5.22a 1.15ʃ0.25a 1.77ʃ0.06c30726.42ʃ4.71a77.63ʃ8.01a12.81ʃ1.49c 41.90ʃ10.80a 0.94ʃ0.06a b 4.74ʃ0.42a1422.44ʃ6.34a b 80.72ʃ0.40a 20.42ʃ1.26a 6.60ʃ1.19c 1.15ʃ0.02a 2.67ʃ0.22b 2122.50ʃ1.51a b 83.35ʃ3.36a 16.89ʃ0.90b 8.97ʃ0.78b c 0.75ʃ0.38b 2.56ʃ0.26b 2813.63ʃ5.95b 84.32ʃ1.71a21.18ʃ1.24a 18.93ʃ4.63b0.77ʃ0.12b 1.75ʃ0.06c 35721.41ʃ3.22a b 81.22ʃ1.10a 14.86ʃ0.78b 9.31ʃ5.49b0.90ʃ0.08b 3.88ʃ0.53a 1423.61ʃ1.83a81.55ʃ0.94a 27.54ʃ4.33a 19.38ʃ6.79a b 1.08ʃ0.09a b 3.12ʃ0.65a 2117.37ʃ1.39b80.90ʃ0.95a 9.28ʃ1.13b32.28ʃ3.58a1.06ʃ0.12a b3.48ʃ0.25a 2820.38ʃ2.06a b 84.96ʃ4.29a 25.61ʃ9.78a 20.04ʃ12.41a b 1.24ʃ0.13a1.90ʃ0.01b㊀㊀同温度同一列数据内不同小写字母表示在0.05水平下差异显著.下同.D i f f e r e n t l o w e r c a s e l e t t e r s i n t h e s a m e c o l u m no f d a t a a t t h e s a m e t e m p e r a t u r e i n d i c a t e s i gn i f i c a n t d i f f e r e n c e a t 0.05l e v e l .T h e s a m e b e l o w.2.3㊀相同时间内不同温度对丛生福禄考生理指标的影响2.3.1㊀叶绿素含量㊀由表2可知,随着温度的上升,7㊁14和21d 处理组的叶绿素没有显著变化,28d 处理组的叶绿素随着温度的上升呈先降后升的趋势.2.3.2㊀含水量㊀各时间处理组植株的组织含水量并没有随着温度的上升而发生明显变化.2.3.3㊀伤害率㊀伤害率在不同高温胁迫下,7d 处理组的伤害率呈上升趋势,在40ħ时达到峰值,差异显著;14d 处理组的伤害率呈波动性,25和35ħ与其它温度处理组相比较大;21d 处理组呈下降趋势,35ħ时降幅明显;28d 处理组的伤害率随着温度上升而上升.2.3.4㊀脯氨酸含量㊀脯氨酸含量在各时间处理下,随着温度的上升而上升.7d 处理组的植株在30和40ħ含量较大,差异显著;14d 处理组植株在25和35ħ时含量较大,差异显著;21d 处理组植株在35ħ时脯氨酸含量明显上升,与其它温度处理组相比增幅大;28d 处理组植株的脯氨酸含量没有显著变化.2.3.5㊀丙二醛含量㊀7d 处理组植株的丙二醛在40ħ时达到最大值,差异显著;14和21d 处理组的丙二醛没有随着温度变化而变化;28d 时,25和40ħ处理组与其它温度处理组相比,丙二醛含量降幅较大,差异显著.2.3.6㊀可溶性蛋白含量㊀不同时间处理组,可溶性蛋白含量随着温度的上升而上升.7和14d 处理组的可溶性蛋白没有随温度变化而变化;21d处理组在25和35ħ时增幅较大;28d 处理组在481期㊀㊀朱军杰等:丛生福禄考对高温胁迫的栽培性状及生理响应35ħ时达到最大值,差异显著.表2㊀相同时间内不同温度对丛生福禄考生理指标的影响T a b l e2㊀T h e e f f e c t o f s a m e t i m e p r o c e s s i n g w i t h t h e d i f f e r e n t t e m p e r a t u r e o n p h y s i o l o g i c a li n d e x o f P h l o x s u b u l a t a时间/d T i m e温度/ħT e m p e r a t u r e叶绿素/S P A DC h l o r o p h y l l组织含水量/%T i s s u em o i s t u r ec o n t e n t伤害率/%D a m a g e r a t e脯氨酸/(μg gG1)P r o l i n e丙二醛/(μm o l gG1F W)M D A可溶性蛋白/(m g gG1F W)S o l u b l e p r o t e i n72028.28ʃ3.01a84.00ʃ3.60a15.45ʃ4.01b5.69ʃ3.82c0.97ʃ0.09b3.68ʃ0.69a 2524.23ʃ1.16a b77.49ʃ3.32a16.39ʃ3.88b13.50ʃ3.98c0.93ʃ0.07b4.85ʃ0.44a 3026.42ʃ4.70a b77.63ʃ8.01a12.81ʃ1.49b41.90ʃ10.80b0.94ʃ0.06b4.74ʃ0.42a 3521.41ʃ3.22a b81.22ʃ1.10a14.86ʃ0.78b9.31ʃ5.49c0.90ʃ0.08b3.88ʃ0.53a 4026.88ʃ5.91a b79.13ʃ0.03a29.69ʃ0.92a120.21ʃ22.13a1.18ʃ0.13a4.38ʃ0.45a 142029.67ʃ4.51a80.53ʃ1.26a24.19ʃ1.65a b3.09ʃ1.23b1.21ʃ0.12a2.74ʃ0.40a 2527.41ʃ3.78a83.39ʃ2.75a29.69ʃ5.32a20.18ʃ5.14a1.22ʃ0.13a2.87ʃ0.20a 3022.45ʃ6.34a80.72ʃ0.40a20.42ʃ1.26b6.60ʃ1.19b1.15ʃ0.02a2.67ʃ0.22a 3523.61ʃ1.83a81.55ʃ0.95a27.54ʃ4.33a19.38ʃ6.79a1.08ʃ0.09a3.13ʃ0.64a 212026.14ʃ5.33a82.73ʃ1.57a16.15ʃ11.48a b5.69ʃ3.08b0.87ʃ0.04a1.11ʃ0.59c 2520.69ʃ3.73a b81.67ʃ0.51a20.30ʃ1.21a7.39ʃ1.09b0.92ʃ0.15a2.27ʃ0.52b 3022.5ʃ1.51a b83.35ʃ3.36a16.89ʃ0.895a b8.97ʃ0.76b0.75ʃ0.37a2.56ʃ0.26b 3517.37ʃ1.38b80.90ʃ0.55a9.28ʃ1.13b32.28ʃ3.58a1.06ʃ0.12a3.49ʃ0.25a 282022.40ʃ5.58a80.43ʃ1.30a12.79ʃ0.95b16.26ʃ1.74a0.68ʃ0.0b1.54ʃ0.15b 2514.13ʃ0.80b83.44ʃ3.10a21.62ʃ1.94a b19.74ʃ5.22a1.15ʃ0.25a1.77ʃ0.06a b 3013.63ʃ5.95b84.32ʃ1.71a21.18ʃ1.24a b18.93ʃ4.63a0.77ʃ0.12b1.75ʃ0.06a b 3520.38ʃ2.05a b84.96ʃ4.29a25.61ʃ9.78a20.0ʃ12.41a1.24ʃ0.13a1.90ʃ0.01a3㊀结论与讨论植物细胞膜对于维持细胞的微环境与正常的代谢有着重要的作用.在正常情况下,细胞膜对物质有选择透性能力.当植物收到逆境环境影响时,细胞膜遭到破坏,膜透性增大,从而导致植物细胞浸提液的电导率增大.因此电导法已经成为了鉴定植物抗逆性强弱的一个重要的指标.陈娅琼[4]在荷兰菊耐热实验中发现电导率值越大,植株抗性越差.吴斌[5]对不同萝卜耐热性研究发现,耐热材料积累脯氨酸的能力强于不耐热材料.杨华庚等[6]在对蝴蝶兰进行在高温胁迫下生理反应的研究时,证明高温胁迫下耐热性强的材料丙二醛积累量低于耐热性弱的材料.试验证明,20和25ħ温度胁迫28d,植株栽培性状表现良好,说明该温度下植株能正常生长.此时除脯氨酸,丙二醛呈波动性,可溶性蛋白含量降低,其余指标没有变化;当温度上升到30ħ时,植株出现部分黄叶,开始影响正常生长.此时伤害率呈波动性,脯氨酸含量呈先降后升的趋势,说明植株合成脯氨酸抵抗高温.可溶性蛋白呈下降趋势;温度上升到35ħ时,一半植株出现死亡,此时伤害率呈上升趋势,膜透性增加,脯氨酸和丙二醛含量上升.当环境温度上升到40ħ,植株长势变差,胁迫时间过长,引起植株死亡.丛生福禄考耐高温,但过高的温度或过长的胁迫时间会影响植株的正常生长.在受到高温胁迫时,叶绿素和组织含水量的变化不显著,不能作为评判抗逆性强弱的指标.其它指标均有明显的差异,可以作为丛生福禄考耐热性评价指标.本试验初步证明,通过形态观察和生理指标测定,认为丛生福禄考具有一定的耐热性,温度超过35ħ开始对其生长产生影响.细胞膜透性㊁丙二醛㊁可溶性蛋白㊁脯氨酸可以作为丛生福禄考品种耐热性鉴定的指标.参考文献:[1]㊀曲彦婷,熊燕,韩辉,等.不同福禄考品种对低温胁迫的生理响应及抗寒性综合评价[J].植物生理学报,2016,52(4):487G496.(下转第89页)581期㊀㊀黄㊀奇等:四种不同花色滇水金凤中金属元素含量测定与分析2004,53(2):391G403.[5]㊀S h u i Y M,J a n s s e n s S,H u a n g SH,e t a l.T h r e eN e wS p e c i e s o f I m p a t i e n t s L.f r o m C h i n aa n d V i e t n a m:P r e p a r a t i o no fF l o w e r s a n dM o r p h o l o g y o f P o l l e n a n d s e e d s[J].S y s t e m a t i cB o t a n y,2011,36(2):428G439.[6]㊀L iGF,S h u i Y M,C h e nW H,e t a l.An e ws p e c i e s o f I m p aGt i e n s(B a l s a m i n a c e a e)f r o m Y u n n a n,C h i n a[J].B r i t t o n i a,2011,63(4):452G456.[7]㊀裴仁济,陈小强,孙宁,等.火焰原子吸收光谱法测定不同花色非洲紫罗兰金属元素[J].江苏农业科学,2010(6):444G445.[8]㊀包雪英,刘翠珍.原子吸收法测定黄岑中的矿质元素[J].北方园艺,2007(12):50G51.[9]㊀李荣华,张媛,方正.铜对紫色新几内亚凤仙开花性状的影响[J].安徽农业科学,2012,40(8):4490G4491.[10]㊀李荣华,张媛,方正.铝对新几内亚凤仙生长发育及花色的影响[J].河北农业大学学报,2006(5):32G36.[11]㊀管海波,黄忠京,银小玲,等.当归藤红色素稳定性研究[J].食品研究与开发,2012(10):232G235.[12]㊀李颖畅,孟宪军,周艳,等.金属离子和食品添加剂对蓝莓花色苷稳定性的影响[J].食品科学,2009(9):80G84.[13]㊀付红岩,李自强,姚晶,等.金属离子和食品添加剂对紫甘薯花色苷稳定性的影响[J].食品工业技术,2013(15):273G276.[14]㊀赵昶灵,陈俊愉,刘雪兰,等,理化因素对梅花 南京红须 花色色素颜色呈现的效应[J].南京林业大学学报(自然科学版),2004(2):27G32.D e t e r m i n a t i o na n dA n a l y s i s o fM e t a lE l e m e n t sC o n t e n ti nF o u rD i f f e r e n t C o l o r s o f I m p a t i e n s u l i g i n o s a sH U A N G Q i,G U OJ i aGw e i,W A N G Q i o n g,W E NY o n gGh u i,H U A N G M e iGj u a n,H U A N G H a iGq u a n(C o l l e g e o fL a n d s c a p eA r c h i t e c t u r e,S o u t h w e s tF o r e s t r y U n i v e r s i t y,K u n m i n g650224,C h i n a)A b s t r a c t:I no r d e r t o e x p l o r e t h ew a y s o f f l o w e r c o l o r i m p r o v e m e n t o f I m p a t i e n s u l i g i n o s a i nY u n n a n p r o v i n c e, t h e c o n t e n t s o f e i g h tm e t a l e l e m e n t s o fK,N a,F e,C a,M n,C u,M g a n dZ n i n t h e f o u r k i n d s o f I m p a t i e n s u l i g iGn o s a s w e r e d e t e r m i n e db y f l a m e a t o m i c a b s o r p t i o n s p e c t r o m e t r y(F A A S).T h e r e s u l t s s h o w e d t h a t t h e c o n t e n t s o f e i g h tm e t a l e l e m e n t s i n t h e f o u r k i n d s o f I m p a t i e n s u l i g i n o s a s w e r e s i g n i f i c a n t d i f f e r e n c e s.T h e c o n t e n t so f K,N a,M g a n dC aw e r e h i g h e r t h a n o t h e r e l e m e n t s,a n d t h e c o n t e n t s o f C uw e r e l o w e r t h a n o t h e r e l e m e n t s.T h e c o n t e n t s o fF ea n d M ni nt w ok i n d so f I m p a t i e n s u l i g i n o s a F r a n c h w e r ed i f e r e n t,a l t h o u g h w h i c h w a s i nt h e s a m e c o l l e c t i o n s i t e.K e y w o r d s:I m p a t i e n s u l i g i n o s a;m e t a l c o n t e n t;f l a m e a t o m i c a b s o r p t i o n s p e c t r o m e t r y(上接第85页)[2]㊀孙黎黎.丛生福禄考与无芒雀麦抗旱性比较试验[J].中国城市林业,2014,12(4):23G25.[3]㊀张以顺,黄霞,陈云风.植物生理学实验教程[M].北京:高等教育出版社,2009.[4]㊀陈娅琼,蒋文伟,黄建荣,等.4种荷兰菊品种耐热性生理指标初探[J].江苏林业科技,2009,36(1):15G28.[5]㊀吴斌,蒋秋玮,顾婷婷,等.高温胁迫下不同耐热性萝卜幼苗生理响应分析[J].中国蔬菜,2010(10):25G28.[6]㊀杨华庚,杨重法,陈慧娟,等.蝴蝶兰不同耐热性品种幼苗对高温胁迫的生理反应[J].中国农学通报,2011,27(1):144G150.C u l t i v a t i o nC h a r a c t e r i s t i c s a n dP h y s i o l o g y R e s p o n s e s o f P h l o xs u b u l a t a t oH i g hT e m p e r a t u r e S t r e s sZ H UJ u nGj i e,Z H A N GG u oGw e i,X U M i n g(S h a n g h a i C h e n s h a nB o t a n i c a lG a r d e n,S h a n g h a i201612,C h i n a)A b s t r a c t:I no r d e r t o e v a l u a t e t h e i n t e r s p e c i f i ch e a t r e s i s t a n c eo f P h l o x s u b u l a t a,P h l o x s u b u l a t a w e r eu s e da s e x p e r i m e n t a lm a t e r i a l a n d f i v e t r e a t m e n t s o f20,25,30,35a n d40ħs e t t om e a s u r e c o n t e n t o f c h l o r o p h y l l,c o nGt e n t o fw a t e r,c e l lm e m b r a n e i n j u r y r a t e,c o n t e n t o f s o l u b l e p r o t e i n,c o n t e n t o fm a l o n d i a l d e h y d e(M D A)a n d f r e e p r o l i n e c o n t e n t(P R O).T h e r e s u l t s s h o w e d t h a tw h e n i tw a s20a n d25ħ,p l a n t sw e r e a b e t t e r g r o w t h,p h y s i oGc h e m i c a l i n d e x s d i dn o t c h a n g e s i g n i f i c a n t l y;A t30a n d35ħe n v i r o n m e n t,l e a v e sw e r eb e g i n n i n g t o y e l l o w, c o n t e n t o fP R Oi n c r e a s e d,c o n t e n t s M D Aa n ds o l u b l e p r o t e i nd e c r e a s e d.A t40ħe n v i r o n m e n t,p l a n t s g r e w w o r s e.T h e y c o u l d g r o w w e l l a t30ħe n v i r o n m e n t.B u t t h e r ew i l l b e s i g n i f i c a n t c h a n g e o n g r o w t ha n d p h y s i oGc h e m i c a l i n d e x e sw h e n t h e t e m p e r a t u r ew a s35ħ.T h e c e l lm e m b r a n e i n j u r y r a t e,M D Ac o n t e n t,s o l u b l e p r oGt e i n,f r e e p r o l i n e c o n t e n tw e r e s e l e c t e da s p h y s i oc h e m i c a l i n d e x e so f e v a l u a t i n g o nh e a t t o l e r a n c eo fd i f f e r e n t P h l o x s u b u l a t a.K e y w o r d s:P h l o x s u b u l a t a;h i g h t e m p e r a t u r e s t r e s s;p h y s i o c h e m i c a l i n d e x e s98。