003菌数报告规则

霉菌与酵母菌计数方法1试验菌液的制备和使用（以白色念珠菌为示例）白色念珠菌（0）代↓传代培养↓实验菌液的制备：沙氏葡萄糖琼脂培养基或沙氏葡萄糖液体培养基,培养温度20~25℃，培养时间2~3天↓计数培养基适用性检查：胰酪大豆胨琼脂培养基，培养温度30～35℃，培养时间不超过5天，接种量不大于100cfu↓计数方法适用性试验：胰酪大豆胨琼脂培养基（MPN法不适用），培养温度30～35℃，培养时间不超过5天，接种量不大于100cfu 注：当需用玫瑰红钠琼脂培养基测定霉菌和酵母菌总数时,应进行培养基适用性检查，检查方法同沙氏葡萄糖琼脂培养基1.1菌种试验用菌株的传代次数不得超过5代（从菌种保藏中心获得的干燥菌种为第0代)，并采用适宜的菌种保藏技术进行保存，以保证试验菌株的生物学特性.1。

2菌液制备（按表1规定程序培养各试验菌株）取白色念珠菌的新鲜培养物↓用pH7。

0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液或0。

9％无菌氯化钠溶液制成适宜浓度的菌悬液取黑曲霉的新鲜培养物↓加入3～5ml含0.05%聚山梨酯80的pH7.0无菌氯化钠—蛋白胨缓冲液或0。

9%无菌氯化钠溶液,将孢子洗脱↓采用适宜的方法吸出孢子悬液至无菌试管内↓用含0.05％聚山梨酯80的pH7。

0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液或0.9%无菌氯化钠溶液制成适宜浓度的黑曲霉孢子悬液菌液制备后若在室温下放置，应在2小时内使用;若保存在2～8℃，可在24小时内使用。

稳定的黑曲霉孢子悬液可保存在2～8℃，在验证过的贮存期内使用。

1。

3阴性对照为确认试验条件是否符合要求，应进行阴性对照试验，阴性对照试验应无菌生长。

如阴性对照有菌生长，应进行偏差调查。

2.培养基适用性检查按表1规定，接种不大于100cfu的菌液至沙氏葡萄糖琼脂培养基平板↓置表1规定条件下培养↓每一试验菌株平行制备2管或2个平皿↓同时，用相应的对照培养基替代被检培养基进行上述试验↓被检固体培养基上的菌落平均数与对照培养基上的菌落平均数的比值应在0.5-2范围内，且菌落形态大小应与对照培养基上的菌落一致；被检液体培养基管与对照培养基管比较，试验菌应生长良好3计数方法适用性试验供试液制备：水不溶性非油脂类供试品↓取供试品，用pH7。

（一）菌落计数1．细菌培养时间为72小时（3天），、分别在24小时及48小时，72小时，点记菌落数，一般以72小时菌落数为准，2：霉菌、酵母菌培养时间为120小时（5天），分别在48小时及72小时点记菌落数，一般以小时菌落数为准。

点计后，计算各稀释级的平均菌落数，按菌数报告规则报告菌数。

3．一般将平皿置菌落计数器或从平皿的背面直接以肉眼点计，以透射光衬以暗色背景，仔细观察。

勿漏计细小的琼脂层内和平皿边缘生长的菌落。

注意细菌菌落与霉菌菌落和酵母菌菌落以及它们与供试品颗粒、培养基沉淀物、气泡等的区别。

【必要时用放大镜或用低倍显微镜直接观察或挑取可疑物涂片镜检。

如仍难区别，可延长培养时间4～7天，细菌菌落常会生长增大而加以区别。

】（4．供试品如为微生物制剂，应将有效微生物菌落排除，不可点记在细菌、霉菌和酵母菌数内。

排除的方法须按该制剂微生物品种而定，并须观察菌落特征及染色形态。

）5．供试品稀释液常含有不溶性原料、辅料，（特别是1：10级别），培养基注皿后亦可能产生沉淀物，经过培养后有时形成数量很多且难与菌落用肉眼相区别的有形物。

（为了有利于菌落计数，可在操作时将适宜稀释级的供试液多增加注皿（1～2个平皿），注皿后不经培养而放置于冰箱（勿结冻）中，在计数菌落时作为对照。

或用0.001％TTC营养琼脂注皿，经培养后可将细菌菌落与其他有形物区别开来。

［0.001%TTC肉汤琼脂培养基（0.001%2、3、5氯化三苯四氮唑琼脂），TTC即为：2、3、5氯化三苯四氮唑琼脂在每1000ml营养琼脂内加入灭菌的1％TTC溶液1ml混匀后倾注平皿，防止菌落蔓延］。

）有些软膏等非水溶性供试品：经营养琼脂注皿后呈乳白色，培养后生长的菌落不易辨认和点计，【为防止这种情况，也可用0.001％TTC营养琼脂注皿，经培养后生长的菌落为红色，衬以白色背景上易于点计。

】若平板上有2个或2个以上菌落重叠，肉眼可辨别时仍以2个菌落或2个以上菌落计数；若片状菌落不到平板的一半,而余下的一半中菌落分布又很均匀,即可计算半个平板后乘以2代表全平板菌落数.若生长蔓延较大的片状菌落或花斑样菌落，一般不宜作为计数用。

1.目的：建立一个洁净室（区）浮游菌测定的标准操作规程，确保洁净室（区）洁净程度。

2.范围：适用于洁净室和洁净区、无菌室或局部空气净化区域（包括洁净工作台）的浮游菌的测定和环境的验证。

3.责任：质量管理部QA监测员对本规程的实施负责。

4.程序：4.1.术语和定义：下列术语和定义适用于本标准操作规程。

4.1.1.菌落：微生物培养后，由一个或几个微生物繁殖而形成的微生物集落，简称CFU。

通常用个数表示。

4.1.2.浮游菌：用本标准操作规程提及的方法收集悬浮在空气中的活微生物粒子，通过专门的培养基，在适宜的生长条件下繁殖到可见的菌落数。

4.1.3.浮游菌浓度：单位体积空气中含浮游菌菌落数的多少，以计数浓度表示，单位是个/m3或个/L。

4.1.4.纠偏限度：对于受控的洁净室（区），由使用者自行设定微生物含量等级。

当检测结果超过该等级时，应启动监测程序对该区域的微生物污染情况立即进行跟踪。

4.1.5.警戒限度：对于受控制的洁净室（区），由使用者自行设定一个微生物含量等级，从而给定了一个正常状态相比最早警戒的偏差值。

当超过该最早警戒的偏差值时，应启动保证工艺或环境不受影响的程序及相关措施。

4.2.测试方法4.2.1.方法提要：本标准操作规程采用的方法是计数浓度法。

即通过收集悬游在空气中的生物性粒子于专门的培养基（选择能证实其能够支持微生物生长的培养基），经若干时间和适宜的生长条件让其繁殖到可见的菌落计数，以判定该洁净室的微生物浓度。

4.2.2.人员的职责及培训：洁净室（区）的测试人员应进行本专业的培训并获得相应资格后才能履行对洁净室（区）测试的职责，其中包含涉及的卫生知识和基本微生物知识。

洁净室（区）的测试人员应选择与生产操作的空气洁净度级别要求相适应的穿戴方式。

4.2.3.仪器、辅助设备和培养基选择合适的浮游菌采样器，包括采用无油的抽气泵，较低的气流流速和较大的采样流量，以保证培养基表面的水分不被吹干。

本测试需要具备仪器、辅助设备和培养基如下：浮游菌采样器、培养皿、培养基（见本标准附录B）、恒温培养箱、高压蒸汽灭菌器。

微生物检验结果报告注意事项一、涉及定性项目的检验结果报告沙门氏菌、志贺氏菌、金黄色葡萄球菌、单核细胞增生李斯特氏菌、大肠杆菌O157：H7、空肠弯曲杆菌、副溶血性弧菌（定性）等，如果检样是称重取样，则最后检测结果一定报告为检出/25g或未检出/25g。

如果检样是体积取样，则最后检测结果一定报告为检出/25mL或未检出/25mL。

检测标准要求g必须要小写，mL中m必须小写，L则必须大写。

记录中所有有用的信息必须填上，无法填充的用“/”划掉。

二、菌落总数检验结果报告1.菌落总数小于100CFU时，按“四舍五入”原则修约以整数报告，如80.5CFU可修约报告为81CFU;80.4CFU则修约报告为80CFU。

2.菌落总数大于等于100CFU时，左边数第3位数字采用四舍五入原则修约后，取前2位数字，后面位数用0代替，也可用10的指数形式表示：如10-2两平板平均菌落数为238CFU/g，可修约为240CFU/g，最后报告为24000CFU/g或2.4×104CFU/g。

3.霉菌、酵母菌、乳酸菌、蜡样芽孢杆菌、产气荚膜梭菌报告形式和菌落总数一样。

4.称重取样以CFU/g为单位报告，体积取样以CFU/mL为单位报告。

三、大肠菌群检验结果报告。

LST初发酵，产酸产气，接种BGLB复发酵后仍产酸产气，则证明样品受到了大肠菌群污染，可检索MPN表，得出相应结果。

检测时如果采用（10-1，10-2,10-3）三个稀释度，最后BGLB产气管为（2，0，0），查MPN表可得出大肠菌群检测值为9.2MPN/g；检测时如果采用（100，10-1,10-2）三个稀释度，最后BGLB产气管仍为（2，0，0），查MPN表可得大肠菌群检测值为0.92MPN/g；如果采用（10-2，10-3,10-4）三个稀释度，最后BGLB产气管仍然为（2，0，0），查MPN表可得大肠菌群检测值为92MPN/g。

称重取样以MPN/g为单位报告，体积取样以MPN/mL为单位报告。

ISO与美国FDA的不同处食品微生物检验方法（FDA与ISO对比）内容提要：l 菌落总数检测l 大肠菌群及大肠杆菌检测l 金黄色葡萄球菌检测l 沙门氏菌检测l 单核细胞增生李斯特氏菌检测菌落总数测定——菌落总数的概念l 菌落总数是指在被检样品的单位重量（g）、容积（ml）或表面积（cm2）内，所含能于某种固体培养基上，在一定条件下培养后所生成的菌落的总数。

菌落总数测定——卫生学意义l 判定食品被细菌污染的程度及卫生质量。

l 及时反映食品加工过程是否符合卫生要求，为被检食品卫生学评价提供依据。

l 通常认为，食品中细菌数量越多，则可考虑致病菌污染的可能性越大，菌落总数的多少在一定程度上标志着食品卫生质量的优劣。

FDA BAM 菌落总数测定流程检样xg/mL+9xml稀释液（磷酸盐缓冲液）适当十倍稀释样品选择2~3个连续适宜稀释度各取1mL分别加入灭菌平皿内（每个稀释度做两个平行）每皿内加入适量平板计数琼脂（PCA）35 ℃ 48 ± 2h菌落计数FDA BAM 菌落计数方法l 选择25~250CFU之间的菌落进行计数，计算公式如下：N=∑C/（1*n1+0.1*n2）*dl 所有平板的菌落数都不足25CFU，报告EAPC/ml（g）为＜25*1/d。

EAPC：estimated aerobic plate countl 所有平板的菌落数都超过250CFU，但不足100/cm2 ，报告EAPC/ml（g）为最接近250CFU的平板菌落数的估计值，乘以相应的稀释度。

l 所有平板的菌落数都超过100/cm2 ，计算平板的面积（直径为90mm的平板面积为65cm2），估计最高稀释度每cm2的菌落数，乘以相应平板面积作为该稀释度的菌落计数结果，报告EAPC/ml（g）为＞65*100* 1/d。

l 无法计数的平板报告LA（Laboratory Accident）。

l 最终结果保留前两位有效数字。

按照4舍6入，5是奇进偶不进。

陕西爽爽佳食品有限公司微生物取样标准操作规范文件号：SSJ-SOP-PK-003A/0颁布日期：2017年4月14日文件类型：SOP 密级：仅供内部使用1.0目的1.1确保所取的样品具有代表性，确保测试过程的准确性。

1.2评估人员、原材料、产品、设备表面、内包环境的微生物状况。

2.0范围适用于所有样品、设备表面、人员、内包环境的微生物采集。

3.0职责微生物品控员负责本文件的执行，品控主管负责监督本文件的执行。

4.0定义无5.0程序5.1原材料5.1.1进厂原材料按照《原材料进厂检验标准》进行检验，对是产品的原料或直接接触产品的包装材料抽样做微生物检测。

5.1.2针对已在库房存放暂未使用的原材料，根据原料使用周期定期做微生物检测；对已经开封未使用完毕的原材料，根据原料特性定期检测微生物。

5.2产品5.2.1产品每天检测一次，根据生产产品品项取样，每个品项取一组样，根据微生物检验、复检、留样合理取样做微生物检测，并做好记录，对于经检测发现的异常需及时通知相关部门负责人，并予以跟踪。

5.2.2将取样的产品带回实验室，做微生物检测实验前用75%的酒精擦拭，以达到消毒杀菌的目的，避免污染引起的误差。

5.3设备表面5.3.1每天对半成品存放筐、拌料斗、盛料盆、内包操作台做涂抹试验。

5.3.2涂抹试验方法5.3.2.1将准备好的装有棉签的无菌瓶表面用75%酒精杀菌，将棉签取出后拭擦待测试区域，一般设备表面擦拭面积为10cm*10cm。

5.3.2.2将擦洗后的棉签插入已灭菌并有无菌水的试管中，然后摇晃几下使棉签上的擦拭物品充分洗下来。

5.3.2.3进行微生物实验。

参见附表：棉球擦拭微生物测试频率及测试点5.4人员5.4.1人员手部涂抹：取已准备好的无菌空白平皿，快速揭开1/3，让操做人员用手接触平皿内培养基后立即还原，做好标记并放置于36℃培养箱内观察微生物生长情况。

5.4.2工作服、工作鞋涂抹：将准备好的装有棉签的无菌瓶表面用75%酒精杀菌，将棉签取出后拭擦员工工作服，一般擦拭面积为10cm*10cm。

ISO与美国FDA的不同处食品微生物检验方法（FDA与ISO对比）内容提要：l 菌落总数检测l 大肠菌群及大肠杆菌检测l 金黄色葡萄球菌检测l 沙门氏菌检测l 单核细胞增生李斯特氏菌检测菌落总数测定——菌落总数的概念l 菌落总数是指在被检样品的单位重量（g）、容积（ml）或表面积（cm2）内，所含能于某种固体培养基上，在一定条件下培养后所生成的菌落的总数。

菌落总数测定——卫生学意义l 判定食品被细菌污染的程度及卫生质量。

l 及时反映食品加工过程是否符合卫生要求，为被检食品卫生学评价提供依据。

l 通常认为，食品中细菌数量越多，则可考虑致病菌污染的可能性越大，菌落总数的多少在一定程度上标志着食品卫生质量的优劣。

FDA BAM 菌落总数测定流程检样xg/mL+9xml稀释液（磷酸盐缓冲液）适当十倍稀释样品选择2~3个连续适宜稀释度各取1mL分别加入灭菌平皿内（每个稀释度做两个平行）每皿内加入适量平板计数琼脂（PCA）35 ℃ 48 ± 2h菌落计数FDA BAM 菌落计数方法l 选择25~250CFU之间的菌落进行计数，计算公式如下：N=∑C/（1*n1+0.1*n2）*dl 所有平板的菌落数都不足25CFU，报告EAPC/ml（g）为＜25*1/d。

EAPC：estimated aerobic plate countl 所有平板的菌落数都超过250CFU，但不足100/cm2 ，报告EAPC/ml（g）为最接近250CFU的平板菌落数的估计值，乘以相应的稀释度。

l 所有平板的菌落数都超过100/cm2 ，计算平板的面积（直径为90mm的平板面积为65cm2），估计最高稀释度每cm2的菌落数，乘以相应平板面积作为该稀释度的菌落计数结果，报告EAPC/ml（g）为＞65*100* 1/d。

l 无法计数的平板报告LA（Laboratory Accident）。

l 最终结果保留前两位有效数字。

按照4舍6入，5是奇进偶不进。

附录ⅩⅢC微生物限度检查法微生物限度检查法系检查非规定灭菌制剂及其原料、辅料受微生物污染程度的方法。

检查项目包含细菌数、霉菌数、酵母菌数及操纵菌检查。

微生物限度检查应在环境洁净度10000 级下的局部洁净度100 级的单向流空气区域内进行。

检验全过程务必严格遵守无菌操作，防止再污染，防止污染的措施不得影响供试品中微生物的检出。

单向流空气区域、工作台面及环境应定期按《医药工业洁净室（区）悬浮粒子、浮游菌与沉降菌的测试方法》的现行国家标准进行洁净度验证。

供试品检查时，假如使用了表面活性剂、中与剂或者灭活剂，应证明其有效性及对微生物无毒性。

除另有规定外，本检查法中细菌及操纵菌培养温度为30℃～35℃；霉菌、酵母菌培养温度为23℃～28℃。

检验结果以1g、1ml、10g、10ml 或者10c㎡为单位报告，特殊品种能够最小包装单位报告。

检验量检验量即一次试验所用的供试品量（g、ml 或者cm2）。

除另有规定外，通常供试品的检验量为10g 或者10ml；膜剂为100 cm2；贵重药品、微量包装药品的检验量能够酌减。

要求检查沙门菌的供试品，其检验量应增加20g 或者20ml（其中10g或者10ml 用于阳性参照试验）。

检验时，应从2 个以上最小包装单位中抽取供试品，大蜜丸还不得少于4丸，膜剂还不得少于 4 片。

通常应随机抽取很多于检验用量（两个以上最小包装单位）的3 倍量供试品。

供试品溶液的制备根据供试品的理化特性与生物学特性，采取适宜的方法制备供试液。

供试液制备若需加温时，应均匀加热，且温度不应超过45℃。

供试液从制备至加入检验用培养基，不得超过 1 小时。

除另有规定外，常用的供试液制备方法如下。

1.液体供试品取供试品10ml，加pH7.0 无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液至100ml，混匀，作为1∶10 的供试液。

油剂可加入适量的无菌聚山梨酯80 使供试品分散均匀。

水溶性液体制剂也可用混合的供试品原液作为供试液。

微生物限度检查法系检查非规定灭菌制剂及其原料、辅料受微生物污染程度的方法。

检查项目包括细菌数、霉菌数、酵母菌数及控制菌检查。

微生物限度检查应在环境洁净度10000级下的局部洁净度100级的单向流空气区域内进行。

检验全过程必须严格遵守无菌操作，防止再污染，防止污染的措施不得影响供试品中微生物的检出。

单向流空气区域、工作台面及环境应定期按《医药工业洁净室（区）悬浮粒子、浮游菌和沉降菌的测试方法》的现行国家标准进行洁净度验证。

供试品检查时，如果使用了表面活性剂、中和剂或灭活剂，应证明其有效性及对微生物无毒性。

除另有规定外，本检查法中细菌及控制菌培养温度为30℃～35℃；霉菌、酵母菌培养温度为23℃～28℃。

检验结果以1g、1ml、10g、10ml或10cm2 为单位报告，特殊品种可以最小包装单位报告。

检验量检验量即一次试验所用的供试品量（g、ml 或cm2）。

除另有规定外，一般供试品的检验量为10g 或10ml；膜剂为100cm2；贵重药品、微量包装药品的检验量可以酌减。

要求检查沙门菌的供试品，其检验量应增加20g 或20ml（其中10g 或10ml用于阳性对照试验）。

检验时，应从2 个以上最小包装单位中抽取供试品，膜剂还不得少于4 片。

一般应随机抽取不少于检验用量（两个以上最小包装单位）的3 倍量供试品。

供试液的制备根据供试品的理化特性与生物学特性，采取适宜的方法制备供试液。

供试液制备若需加温时，应均匀加热，且温度不应超过45℃。

供试液从制备至加入检验用培养基，不得超过1 小时。

除另有规定外，常用的供试液制备方法如下。

1.液体供试品取供试品10ml，加pH7.0 无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液至100ml，混匀，作为1∶10 的供试液。

油剂可加入适量的无菌聚山梨酯80使供试品分散均匀。

水溶性液体制剂也可用混合的供试品原液作为供试液。

2.固体、半固体或黏稠性供试品取供试品10g，加pH7.0 无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液至100ml，用匀浆仪或其他适宜的方法，混匀，作为1∶10 的供试液。

2020版药典中药饮片微生物限度检查法中药饮片微生物限度检查法用于检查中药材及中药饮片的微生物污染程度。

检查项目包括需氧菌总数、霉菌和酵母菌总数、耐热菌总数、耐胆盐革兰阴性菌、大肠埃希菌、沙门菌。

本法中的耐热菌系供试液置水浴（98～100℃）30分钟处理后按需氧菌总数测定方法检出的微生物总称。

中药饮片微生物限度检查的试验环境应符合微生物限度检查的要求。

检验全过程必须严格遵守无菌操作，防止再污染，防止污染的措施不得影响供试品中微生物的检出。

洁净空气区域、工作台面及环境应定期进行监测。

微生物计数培养基适用性检查和方法适用性试验供试品微生物计数中所使用的培养基应进行适用性检查。

供试品的微生物计数方法应进行方法适用性试验，以确认所采用的方法适合于该产品的微生物计数。

若检验程序或产品发生变化可能影响检验结果时，计数方法应重新进行适用性试验。

菌种及菌液制备菌种试验用菌株的传代次数不得超过5代(从菌种保藏中心获得的干燥菌种为第0代)，并釆用适宜的菌种保藏技术进行保存，以保证试验菌株的生物学特性。

计数培养基适用性检查和计数方法适用性试验用菌株见表1。

注：当需用玫瑰红钠琼脂培养基测定霉菌和酵母菌总数时，应进行培养基适用性检查，检查方法同沙氏葡萄糖琼脂培养基。

菌液制备按表1规定程序培养各试验菌株。

取金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞菌、枯草芽孢杆菌、白色念珠菌的新鲜培养物，用pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液或0.9%无菌氯化钠溶液制成适宜浓度的菌悬液；取黑曲霉的新鲜培养物加入适量含0.05%(ml/ml)聚山梨酯80的pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液或含0.05%( ml/ml)聚山梨酯80的0.9%无菌氯化钠溶液，将孢子洗脱。

然后，采用适宜的方法吸岀孢子悬液至无菌试管内，用含0.05%( ml/ml)聚山梨酯80的pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液或含0.05%(ml/ml)聚山梨酯80的0.9%无菌氯化钠溶液制成适宜浓度的黑曲霉孢子悬液。

微生物检验结果报告注意事项一、涉及定性项目的检验结果报告沙门氏菌、志贺氏菌、金黄色葡萄球菌、单核细胞增生李斯特氏菌、大肠杆菌O157：H7、空肠弯曲杆菌、副溶血性弧菌（定性）等，如果检样是称重取样，则最后检测结果一定报告为检出/25g或未检出/25g。

如果检样是体积取样，则最后检测结果一定报告为检出/25mL或未检出/25mL。

检测标准要求g必须要小写，mL中m必须小写，L则必须大写。

记录中所有有用的信息必须填上，无法填充的用“/”划掉。

二、菌落总数检验结果报告1.菌落总数小于100CFU时，按“四舍五入”原则修约以整数报告，如80.5CFU可修约报告为81CFU;80.4CFU则修约报告为80CFU。

2.菌落总数大于等于100CFU时，左边数第3位数字采用四舍五入原则修约后，取前2位数字，后面位数用0代替，也可用10的指数形式表示：如10-2两平板平均菌落数为238CFU/g，可修约为240CFU/g，最后报告为24000CFU/g或2.4×104CFU/g。

3.霉菌、酵母菌、乳酸菌、蜡样芽孢杆菌、产气荚膜梭菌报告形式和菌落总数一样。

4.称重取样以CFU/g为单位报告，体积取样以CFU/mL为单位报告。

三、大肠菌群检验结果报告。

LST初发酵，产酸产气，接种BGLB复发酵后仍产酸产气，则证明样品受到了大肠菌群污染，可检索MPN表，得出相应结果。

检测时如果采用（10-1，10-2,10-3）三个稀释度，最后BGLB 产气管为（2，0，0），查MPN表可得出大肠菌群检测值为9.2MPN/g；检测时如果采用（100，10-1,10-2）三个稀释度，最后BGLB产气管仍为（2，0，0），查MPN表可得大肠菌群检测值为0.92MPN/g；如果采用（10-2，10-3,10-4）三个稀释度，最后BGLB产气管仍然为（2，0，0），查MPN表可得大肠菌群检测值为92MPN/g。

称重取样以MPN/g为单位报告，体积取样以MPN/mL 为单位报告。