家兔呼吸运动神经的调节(实验报告)

一、实验目的1. 了解呼吸兔子调节的基本原理和方法。

2. 观察和分析呼吸兔子在不同生理状态下的呼吸运动调节。

3. 掌握实验操作技能，提高实验操作能力。

二、实验原理呼吸运动是呼吸肌在神经系统控制下进行的有节律的收缩和舒张造成的。

呼吸运动调节机制包括呼吸中枢、肺牵张反射以及外周化学感受器的反射性调节。

本实验通过观察家兔在不同生理状态下的呼吸运动，分析呼吸兔子调节的机制。

三、实验材料1. 实验动物：家兔2. 实验仪器：兔体手术台、常用手术器械、张力传感器、引导电极、计算机采集系统、气管插管、注射器、橡皮管3. 实验试剂：20%氨基甲酸乙酯、生理盐水四、实验方法1. 家兔麻醉：使用20%氨基甲酸乙酯进行麻醉，待家兔麻醉成功后，背位固定于兔体手术台上。

2. 分离气管和迷走神经：切开颈部皮肤，分离气管并插入气管插管，分离出双侧迷走神经，穿线备用。

3. 连接实验仪器：将张力传感器、引导电极和计算机采集系统连接好，用于记录呼吸运动。

4. 记录正常呼吸曲线：观察家兔在正常生理状态下的呼吸运动，记录呼吸频率、节律和幅度。

5. 改变呼吸运动调节因素：a. 增加无效腔：将气管插管适当延长，增加无效腔，观察呼吸运动的变化。

b. 切断迷走神经：切断双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。

c. 改变血液中CO2分压：通过注射生理盐水或二氧化碳，改变血液中CO2分压，观察呼吸运动的变化。

6. 记录和分析实验结果。

五、实验结果1. 正常呼吸曲线：家兔在正常生理状态下的呼吸运动呈现规律性，呼吸频率、节律和幅度稳定。

2. 增加无效腔：增加无效腔后，家兔的呼吸频率和呼吸深度增加，呼吸张力增强，呼吸阻力增大。

3. 切断迷走神经：切断双侧迷走神经后，家兔呈现慢而深的呼吸运动，呼吸频率降低，呼吸深度增加。

4. 改变血液中CO2分压：降低血液中CO2分压，家兔的呼吸频率和呼吸深度降低；提高血液中CO2分压，家兔的呼吸频率和呼吸深度增加。

六、实验分析1. 增加无效腔：增加无效腔导致呼吸阻力增大，使家兔通过增加呼吸频率和呼吸深度来满足身体对氧气的需求。

一、实验目的1. 观察家兔呼吸运动的生理变化，了解呼吸运动的调节机制。

2. 分析血液中化学因素（PCO2、PO2、[H]）对家兔呼吸频率、节律、通气量的影响及调节机制。

3. 探讨迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用。

二、实验原理呼吸运动是呼吸肌在神经系统控制下进行的有节律的收缩和舒张造成的。

呼吸中枢分布于大脑皮层、间脑、桥脑、延髓、脊髓等部位，各级部位相互配合，共同完成呼吸节律性运动。

呼吸运动受体内、外各种因素影响，如血液中CO2分压、PO2、[H]等化学因素，以及迷走神经、肺牵张反射等神经调节机制。

三、实验材料与仪器1. 实验动物：家兔2. 实验仪器：兔体手术台、常用手术器械、张力传感器、引导电极、计算机采集系统、气管插管、注射器、橡皮管、20%氨基甲酸乙酯、生理盐水3. 实验试剂：20%氨基甲酸乙酯、生理盐水四、实验方法与步骤1. 麻醉与固定：将家兔置于兔体手术台上，用20%氨基甲酸乙酯进行麻醉。

待家兔麻醉后，将其背位固定在手术台上。

2. 气管插管：在颈部切开皮肤，分离气管，插入气管插管，连接呼吸传感器。

3. 分离迷走神经：在颈部分离双侧迷走神经，穿线备用。

4. 记录呼吸运动：启动计算机采集系统，记录家兔呼吸频率、节律、通气量。

5. 观察血液中化学因素对呼吸运动的影响：a. 向气管插管内注入一定量的CO2，观察呼吸运动的变化；b. 向气管插管内注入一定量的生理盐水，观察呼吸运动的变化；c. 向气管插管内注入一定量的[H]，观察呼吸运动的变化。

6. 观察迷走神经对呼吸运动的影响：a. 切断双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化；b. 重新连接双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。

五、实验结果与分析1. 观察到在注入CO2后，家兔呼吸频率、节律、通气量均增加，表明CO2对呼吸运动具有促进作用。

2. 观察到在注入生理盐水后，家兔呼吸运动无明显变化，表明生理盐水对呼吸运动无明显影响。

3. 观察到在注入[H]后，家兔呼吸频率、节律、通气量均降低，表明[H]对呼吸运动具有抑制作用。

兔子的呼吸运动的调节实验报告引言呼吸是生物体维持生命活动的基本过程之一。

呼吸运动的调节对于维持正常生理功能非常重要。

兔子作为常见的哺乳动物，其呼吸运动机制一直是研究的热点之一。

本实验旨在研究兔子的呼吸运动的调节过程，并探讨外界环境因素对呼吸运动的影响。

实验方法实验材料和设备•实验兔（6只）•注射器和针头•氧气供应系统•呼吸频率记录仪•麻醉剂实验步骤1.实验前准备：将实验兔置于实验舱中，使其适应环境。

准备好氧气供应系统和呼吸频率记录仪。

2.注射麻醉剂：使用注射器和针头给实验兔注射一定剂量的麻醉剂，使其进入麻醉状态。

3.观察呼吸运动：记录兔子在麻醉状态下的呼吸频率和呼吸深度，并观察呼吸运动的变化情况。

4.外界环境因素调节：在实验过程中，通过改变室内温度、氧气浓度等外界环境因素来调节兔子的呼吸运动，记录并比较不同环境条件下的呼吸频率和呼吸深度的变化。

5.数据记录和分析：将实验过程中观察到的数据记录下来，使用适当的统计方法进行数据分析，并绘制相应的图表。

实验结果与讨论实验数据显示，在麻醉状态下，兔子的呼吸频率较平时明显降低。

此外，呼吸深度也较平时有所减弱。

这可能是由于麻醉剂的作用导致兔子神经系统的抑制，进而影响了呼吸运动。

在外界环境因素调节下，实验结果显示温度的变化对兔子的呼吸运动有一定的影响。

当室内温度较高时，兔子的呼吸频率和呼吸深度会明显增加；而当室内温度较低时，兔子的呼吸频率和呼吸深度则会明显降低。

这说明温度是调节兔子呼吸运动的一个重要因素。

另外，实验结果还显示氧气浓度的变化也会对兔子的呼吸运动产生影响。

当氧气浓度较高时，兔子的呼吸频率和呼吸深度会明显增加；而当氧气浓度较低时，兔子的呼吸频率和呼吸深度则会明显降低。

这表明氧气浓度是调节兔子呼吸运动的另一个重要因素。

结论通过本次实验，我们了解到兔子的呼吸运动受到多种因素的调节。

其中，外界环境因素如温度和氧气浓度对兔子的呼吸频率和呼吸深度有明显的影响。

家兔呼吸运动的调节实验报告本实验旨在探究家兔呼吸运动的调节机制，通过实验观察和数据分析，深入了解家兔呼吸运动的调节规律，为相关生理学研究提供理论依据和实验数据支持。

实验材料与方法。

1. 实验材料，健康的家兔若干只，呼吸频率计、呼吸深度计、心率监测仪等实验设备。

2. 实验方法，将家兔置于实验箱内，记录其正常呼吸状态下的呼吸频率和呼吸深度，并监测其心率。

接着通过不同方式的刺激（如运动、音响刺激等）观察家兔呼吸频率、呼吸深度和心率的变化情况。

实验结果。

1. 正常状态下，家兔的呼吸频率约为每分钟40-60次，呼吸深度约为每次10-15毫升，心率约为每分钟120-150次。

2. 运动刺激后，家兔的呼吸频率明显增加，呼吸深度也有所增加，心率也随之加快。

3. 音响刺激后，家兔的呼吸频率和呼吸深度均有所增加，但心率的变化不明显。

实验分析。

1. 家兔呼吸运动受到外界刺激的调节，运动刺激和音响刺激都能引起家兔呼吸频率和呼吸深度的变化，说明家兔呼吸运动受到外界刺激的调节。

2. 家兔呼吸运动调节具有一定的灵活性，家兔对不同刺激的呼吸反应不同，表明其呼吸运动调节具有一定的灵活性，能够根据外界环境变化做出相应调整。

实验结论。

家兔呼吸运动的调节受到外界刺激的影响，具有一定的灵活性，这为家兔在不同环境下适应生存提供了生理基础。

同时，本实验结果也为相关呼吸生理学研究提供了重要的实验数据支持。

结语。

通过本次实验，我们对家兔呼吸运动的调节机制有了更深入的了解，同时也为今后的相关研究提供了重要的实验基础。

希望本实验结果能够为相关领域的科研工作者提供参考，推动相关领域的研究进展。

一、实验目的1. 掌握呼吸运动调节的基本原理和方法。

2. 观察血液中化学因素（PCO2、PO2、[H]）改变对呼吸运动（呼吸频率、节律、通气量）的影响及机制。

3. 学习气管插管术和神经血管分离术。

二、实验原理呼吸运动是呼吸中枢在中枢神经系统和体液因素调节下，通过呼吸肌节律性运动使胸廓节律性地扩大或缩小，从而实现吸入氧气和排出二氧化碳的过程。

呼吸运动调节机制主要包括化学因素调节、神经调节和体液调节。

三、实验材料与仪器1. 实验动物：家兔2. 实验仪器：手术台、常用手术器械、生理信号采集处理系统、呼吸传感器、气管插管、注射器、橡皮管、刺激电极、生理盐水、棉线、纱布等。

四、实验步骤1. 家兔麻醉：取一只家兔，称重后，用剪刀剪去耳缘静脉上的毛。

用20ml注射器由耳缘静脉缓慢推注25%氨基甲酸乙酯（1g/kg体重）进行麻醉。

2. 气管插管：在兔颈部进行气管插管，连接呼吸传感器，记录呼吸频率和通气量。

3. 呼吸运动调节实验：a. 观察正常呼吸曲线：记录家兔在正常条件下的呼吸频率、节律和通气量。

b. 观察CO2吸入对呼吸运动的影响：通过气管插管向家兔吸入一定浓度的CO2，观察呼吸频率、节律和通气量的变化。

c. 观察N2吸入对呼吸运动的影响：通过气管插管向家兔吸入一定浓度的N2，观察呼吸频率、节律和通气量的变化。

d. 观察无效腔增大对呼吸运动的影响：通过手术方法扩大家兔的无效腔，观察呼吸频率、节律和通气量的变化。

e. 观察肺牵张反射对呼吸运动的影响：剪断家兔双侧迷走神经，观察呼吸频率、节律和通气量的变化。

4. 实验结束：完成所有实验步骤后，将家兔恢复至正常状态，进行解剖观察。

五、实验结果与分析1. 正常呼吸曲线：家兔在正常条件下的呼吸频率约为60-80次/分钟，节律均匀，通气量适中。

2. CO2吸入对呼吸运动的影响：吸入CO2后，家兔呼吸频率明显加快，节律变浅，通气量增加。

这是因为CO2是一种化学刺激物质，能够刺激中枢神经系统，使呼吸中枢兴奋，从而增加呼吸频率和通气量。

家兔呼吸运动的调节实验报告家兔呼吸运动的调节实验报告引言：呼吸是生物体生命活动中不可或缺的过程之一。

对于家兔这类哺乳动物来说，呼吸运动的调节对其生存和适应环境至关重要。

本次实验旨在探究家兔呼吸运动的调节机制，以增进我们对生物体呼吸系统的理解。

实验方法：1. 实验材料准备：本次实验所需材料包括家兔、呼吸频率计、呼吸深度计、氧气浓度计、二氧化碳浓度计等。

2. 实验步骤：首先，将家兔置于实验室的呼吸室中，确保环境温度和湿度适宜。

然后，使用呼吸频率计和呼吸深度计来测量家兔的呼吸频率和呼吸深度。

接下来，使用氧气浓度计和二氧化碳浓度计来测量家兔所处环境中的氧气和二氧化碳浓度。

3. 实验记录：记录家兔在不同环境条件下的呼吸频率、呼吸深度以及环境中的氧气和二氧化碳浓度。

实验结果：通过实验记录的数据，我们得出以下结论：1. 温度对家兔呼吸运动的调节有显著影响。

在较高温度下，家兔的呼吸频率和呼吸深度明显增加，以促进体内热量的散发。

而在较低温度下，家兔的呼吸频率和呼吸深度减少，以减少体内热量的散失。

2. 湿度对家兔呼吸运动的调节也有一定影响。

在较高湿度下，家兔的呼吸频率和呼吸深度增加，以帮助散发体内的湿气。

而在较低湿度下，家兔的呼吸频率和呼吸深度减少，以减少体内水分的流失。

3. 氧气浓度对家兔呼吸运动的调节非常重要。

在较低氧气浓度下，家兔的呼吸频率和呼吸深度明显增加，以增加氧气的摄入量。

而在较高氧气浓度下，家兔的呼吸频率和呼吸深度减少，以避免氧中毒。

4. 二氧化碳浓度也对家兔呼吸运动的调节产生影响。

在较高二氧化碳浓度下，家兔的呼吸频率和呼吸深度明显增加，以增加二氧化碳的排出量。

而在较低二氧化碳浓度下，家兔的呼吸频率和呼吸深度减少，以避免呼出过多二氧化碳。

讨论：通过本次实验，我们可以看到家兔呼吸运动的调节是一个相当复杂的过程。

它受到温度、湿度、氧气浓度和二氧化碳浓度等多个因素的影响。

家兔通过调节呼吸频率和呼吸深度来适应不同的环境条件，以保持体内的氧气和二氧化碳平衡。

创作编号：BG7531400019813488897SX创作者：别如克*家兔呼吸运动神经的调节【实验目的】1.学习测定兔呼吸运动的方法。

2.进一步掌握测定动脉血压的相关技术。

3.学习哺乳类动物的手术操作，掌握气管插管和神经血管分离术4.探讨血液中PCO2、PO2和[H+]对家兔呼吸运动的影响及机制5.探讨迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用及机理【实验器材】1.1 动物体重2.5 kg家兔(rabbit)，雌雄不拘。

1.2 器材BL420E+生物信号处理系统，呼吸换能器（pressure-gradient transducer）1.3 药品试剂20%乌来糖（urethane)，12%磷酸二氢钠(Sodium dihydrogen phosphate)，5%碳酸氢钠（Sodium bicarbonate)，N2，CO2。

【实验步骤】1. 家兔称重，按1 g/kg 体重耳缘静脉20%乌来糖麻醉家兔，家兔麻醉后将其仰卧，固定四肢和头。

2. 颈部手术颈正中切口5～7 cm左右皮肤。

用血管钳钝性分离出气管穿线备用，用玻璃分针分离出两侧的迷走神经穿线备用、分离出一侧颈总动脉3 cm备用。

3.气管插管用手术剪在甲状软骨下1 cm处剪一“⊥”切口,插入气管插管，结扎固定。

4.将气管插管一端连接呼吸换能器。

5观察记录（observations)1.记录家兔正常的呼吸频率和通气量2.记录增加气道长度前后家兔呼吸运动的变化3.按5ml/kg体重剂量静脉注射12%磷酸二氢钠溶液，注射速度5-6 ml/min，观察家兔呼吸运动的变化。

10 min后，颈总动脉采血0.5 ml，作血气分析4.. 按bm nnnBE×0.5×体重计算出50 g/L碳酸氢钠剂量，按4 ml/min 速度静脉注射，观察呼吸变化。

10 min后，颈总动脉采血0.5 ml，作血气分析5. 记录切断一侧、两侧迷走神经前后家兔的呼吸频率和幅度的变化。

家兔呼吸运动的调节实验报告一、实验目的本实验旨在观察和分析各种因素对家兔呼吸运动的调节作用，深入理解呼吸运动的生理机制以及神经、体液等因素在呼吸调节中的重要性。

二、实验原理呼吸运动是呼吸肌节律性收缩和舒张所引起的胸廓有节律的扩大和缩小。

呼吸运动受神经和体液因素的调节。

神经调节主要包括迷走神经和交感神经，体液调节则包括血液中二氧化碳分压、氧分压和氢离子浓度等的变化。

三、实验材料与方法（一）实验材料1、实验动物：健康家兔 1 只，体重 20 25kg。

2、实验器材：哺乳动物手术器械一套、兔手术台、气管插管、压力换能器、生物信号采集处理系统、50cm 长的橡皮管、20ml 和 5ml 注射器、CO₂气囊、N₂气囊、装有钠石灰的广口瓶、装有空气的广口瓶、生理盐水、3%乳酸溶液等。

（二）实验方法1、家兔称重后，用 20%乌拉坦溶液（5ml/kg）于耳缘静脉缓慢注射麻醉。

将家兔仰卧固定于手术台上，剪去颈部手术部位的被毛。

2、颈部正中切开皮肤，分离气管并插入气管插管，通过压力换能器与生物信号采集处理系统相连，记录呼吸运动曲线。

3、分离双侧迷走神经，穿线备用。

4、观察并记录正常呼吸运动曲线。

四、实验步骤（一）增加吸入气中二氧化碳浓度将装有 CO₂的气囊通过橡皮管与气管插管的侧管相连，使家兔吸入含较高浓度 CO₂的气体，观察呼吸运动的变化。

（二）缺氧将装有 N₂的气囊通过橡皮管与气管插管的侧管相连，使家兔吸入氮气造成缺氧，观察呼吸运动的变化。

（三）增大无效腔将一段 50cm 长的橡皮管连接在气管插管的侧管上，增加无效腔，观察呼吸运动的变化。

（四）静脉注射乳酸溶液用 5ml 注射器经耳缘静脉缓慢注入 3%乳酸溶液 2ml，观察呼吸运动的变化。

（五）切断迷走神经分别切断双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。

然后再分别刺激切断后的迷走神经中枢端和外周端，观察呼吸运动的变化。

五、实验结果（一）增加吸入气中二氧化碳浓度当家兔吸入含较高浓度 CO₂的气体后，呼吸运动明显加深加快。

第1篇一、实验目的1. 观察兔子呼吸运动的基本规律，包括呼吸频率、节律和幅度。

2. 探讨影响兔子呼吸运动的各种因素，如无效腔、二氧化碳浓度、缺氧等。

3. 分析迷走神经在兔子呼吸运动调节中的作用。

4. 掌握气管插管术和神经血管分离术等基本操作。

二、实验原理呼吸运动是呼吸中枢节律性活动的反映。

在不同生理状态下，呼吸运动所发生的适应性变化有赖于神经系统的反射性调节，其中较为重要的有呼吸中枢、肺牵张反射以及外周化学感受器的反射性调节。

因此，体内外各种刺激，可以直接作用于中枢部位或通过不同的感受器反射性地影响呼吸运动。

三、实验材料与器材1. 实验动物：家兔2. 实验器材：生物信号采集处理系统、呼吸流量换能器、CO2气囊、哺乳类动物手术器具一套、兔手术台、气管插管、注射器（10ml、20ml各一只）、橡胶管、纱布、玻钩、手术丝线、麻醉剂、生理盐水等。

四、实验步骤1. 实验动物准备：选择健康成年家兔，称重后进行麻醉。

2. 麻醉与固定：按照2ml/kg取麻醉剂戊巴比妥钠，从兔耳缘静脉缓慢注入麻醉，然后将家兔固定在手术台上。

3. 颈部手术：颈部剪毛，于颈部正中切开皮肤，钝性分离肌肉组织，暴露并分离气管。

在3-4气管环之间切开气管，做一倒T形切口，气管插管后用手术丝线固定，两侧迷走神经穿线备用。

4. 连接仪器：将呼吸流量换能器连接在气管插管上，并连接生物信号采集处理系统。

5. 记录正常呼吸曲线：打开计算机，启动生物信号采集处理系统，点击菜单，进入实验/实验项目”，按计算机提示逐步进入呼吸运动”实验项目，记录家兔正常呼吸曲线。

6. 增加无效腔：通过改变气管插管长度，增加无效腔，观察呼吸曲线的变化。

7. 增加二氧化碳浓度：使用CO2气囊，向气管插管中注入一定浓度的二氧化碳，观察呼吸曲线的变化。

8. 轻度缺氧实验：使用低氧气体，向气管插管中注入一定浓度的氧气，观察呼吸曲线的变化。

9. 剪短迷走神经：剪断一侧迷走神经，观察呼吸曲线的变化。

第1篇一、实验目的1. 了解呼吸调节的基本原理和生理机制。

2. 观察并分析影响呼吸运动的内外因素。

3. 掌握呼吸调节实验的基本操作技能。

二、实验原理呼吸运动是机体与外界环境进行气体交换的重要生理过程。

呼吸调节机制涉及中枢神经系统、外周感受器和效应器等多个方面。

本实验通过观察家兔在不同生理状态下呼吸运动的改变，探讨呼吸调节的生理机制。

三、实验材料与仪器1. 实验动物：家兔2. 实验仪器：手术台、常用手术器械、生理信号采集处理系统、呼吸传感器、气管插管、注射器、橡皮管、刺激电极、20%氨基甲酸乙酯、生理盐水等。

四、实验方法与步骤1. 家兔麻醉与固定：将家兔置于手术台上，用20%氨基甲酸乙酯进行麻醉。

待家兔麻醉后，将其固定于手术台上。

2. 气管插管：分离气管，插入气管插管，并连接呼吸传感器。

3. 记录呼吸运动：打开生理信号采集处理系统，记录家兔的呼吸频率、节律和幅度。

4. 改变实验条件：a. 缺氧实验：将家兔置于密闭容器中，观察呼吸运动的变化。

b. 二氧化碳实验：向密闭容器中注入二氧化碳，观察呼吸运动的变化。

c. 酸性物质实验：向密闭容器中加入乳酸，观察呼吸运动的变化。

d. 迷走神经阻断实验：剪断家兔双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。

5. 数据分析：对实验数据进行统计分析，比较不同实验条件下呼吸运动的变化。

五、实验结果与分析1. 缺氧实验：缺氧条件下，家兔呼吸频率加快，幅度减小，说明缺氧对呼吸运动有促进作用。

2. 二氧化碳实验：二氧化碳浓度升高时，家兔呼吸频率加快，幅度增大，说明二氧化碳对呼吸运动有促进作用。

3. 酸性物质实验：乳酸浓度升高时，家兔呼吸频率加快，幅度增大，说明酸性物质对呼吸运动有促进作用。

4. 迷走神经阻断实验：剪断双侧迷走神经后，家兔呼吸频率减慢，幅度减小，说明迷走神经对呼吸运动有抑制作用。

六、结论1. 缺氧、二氧化碳和酸性物质等生理因素可以通过中枢和外周化学感受器影响呼吸运动，调节呼吸频率和幅度。

呼吸运动调节实验报告（五篇）第一篇：呼吸运动调节实验报告呼吸运动的调节【实验目的】1、学习呼吸运动的记录方法2、观察血液理化因素改变对家兔呼吸运动的影响3、了解肺牵张反射在呼吸运动调节中的作用【实验对象】家兔重量：1.9kg【实验器材和药品】哺乳动物手术器械（主要用到手术刀、组织剪、止血钳、玻璃分针、），兔手术台，生物信号采集处理系统，呼吸换能器，气管插管，20%氨基甲酸乙酯溶液，生理盐水，橡皮管，N 2 气囊，CO 2 气囊等。

【实验方法与步骤】1.取家兔并称重，由家兔腹腔缓慢注入20%氨基甲酸乙酯溶液10ml，（因注射过程中出现差错，后补注入20%氨基甲酸乙酯溶液8ml）待家兔麻醉后，仰卧用绳子固定于手术台上。

2.剪去颈前部兔毛，颈前正中用手术刀切开皮肤5-7cm，少量出血，用纱布蘸取生理盐水擦拭。

分离气管并穿线备用。

分离颈部双侧迷走神经，穿线备用。

以倒T 型剪开气管，有少量出血，止血后用镊子清理其中异物，做气管插管。

手术完毕后，用温生理盐水纱布覆盖手术范围。

3.实验装置（1）将呼吸换能器与生物信号采集处理系统的相应通道相连接，橡皮管连接气管插管和呼吸换能器。

（2）打开计算机，启动生物信号采集处理系统，设置好参数，开始采样。

（3）采样项目①缺氧对呼吸运动的影响：方法同上，将氮气气囊管口与气管插管的通气管用手掌罩住，打开气囊，使吸入气中含较多的氮气，造成缺氧，观察呼吸运动的变化，移开气囊和手掌，待呼吸恢复正常后进行下一步实验。

②CO 2 对呼吸运动的影响：将二氧化碳气囊管口与气管插管的通气管用手掌罩住，打开气囊，使吸入气中含较多的二氧化碳，观察呼吸运动的变化，移开气囊和手掌，待呼吸恢复正常后进行下一步实验。

③增大无效腔对呼吸运动的影响：将橡皮管连接于气管插管的一个侧管上，观察此时呼吸运动的变化。

变化明显后，去掉橡皮管，观察呼吸运动的恢复过程。

④迷走神经在呼吸运动调节中的作用：先剪断一侧迷走神经，观察呼吸运动的变化，再剪断另一侧迷走神经，观察呼吸运动又有何变化。

家兔呼吸疏通神经的安排之阳早格格创做【真验脚段】1.教习测定兔呼吸疏通的要领.2.进一步掌握测定动脉血压的相闭技能.3.教习哺乳类动物的脚术支配，掌握气管插管战神经血管分散术4.探讨血液中PCO2、PO2战[H+]对于家兔呼吸疏通的效率及体制【真验器材】1.1 动物体沉2.5 kg家兔(rabbit)，雌雄没有拘.1.2 器材BL420E+死物旗号处理系统，呼吸换能器（pressure-gradient transducer）1.3 药品试剂20%黑去糖（urethane)，12%磷酸二氢钠(Sodium dihydrogen phosphate)，5%碳酸氢钠（Sodium bicarbonate)，N2，CO2.【真验步调】1. 家兔称沉，按1 g/kg 体沉耳缘静脉20%黑去糖麻醒家兔，家兔麻醒后将其俯卧，牢固四肢战头.2. 颈部脚术颈正中切心5～7 cm安排皮肤.用血管钳钝性分散出气管脱线备用，用玻璃分针分散出二侧的迷走神经脱线备用、分散出一侧颈总动脉3 cm备用.3. 气管插管用脚术剪正在甲状硬骨下1 cm处剪一“⊥”切心,拔出气管插管，结扎牢固.4. 将气管插管一端对接呼吸换能器.5瞅察记录（observations)3.按5ml/kg体沉剂量静脉注射12%磷酸二氢钠溶液，注射速度5-6 ml/min，瞅察家兔呼吸疏通的变更.10 min后，颈总动脉采血0.5 ml，做血气分解4.. 按bm nnnBE×0.5×体沉估计出50 g/L碳酸氢钠剂量，按4 ml/min速度静脉注射，瞅察呼吸变更. 10 min后，颈总动脉采血0.5 ml，做血气分解5. 记录切断一侧、二侧迷走神经前后家兔的呼吸频次战幅度的变更.6. 记任命强度5 V、频次20 Hz、波宽2 ms的连绝电脉冲刺激一侧迷走神经中枢端前后家兔的呼吸频次战幅度的变更.【真验截行】图3注射磷酸二氢钠后的呼吸直线图7刺激迷走神经中枢端【截行分解取计划】减少气讲少度后家兔呼吸弛力减少，呼吸频次减少 .减少气讲少度便等于减少家兔解剖无效腔，减少无效腔从而缩小了肺泡的通气量，使肺泡气体革新率下落制成动脉血PO2落矮，PCO2降下，反射性引起呼吸疏通加强;PO2落矮战PCO2降下皆可引起呼吸疏通加强.然而以PCO2的效率为主，CO2对于呼吸的刺激效率主要通过刺激中枢化教体验器，从而引起延髓呼吸中枢镇静，引导呼吸加快.也可刺激颈动脉体战主动脉体中周化教体验器，通过窦神经战主动脉神经传进延髓呼吸中枢，使呼吸疏通加强，PO2下落主假如通过刺激中周化教体验器，引起呼吸中枢镇静；气讲加少使呼吸气讲阻力删大，反射性呼吸加深加快.2注射磷酸二氢钠，战碳酸氢钠后，呼吸强度均加深，频次加快.然而是磷酸二氢钠少剂量注射，变更明隐，变更快，而后者，变更速度缓缓，而且需要注射较多剂量才搞有明隐的直线变更.家兔血液中的H 浓度降下，刺激中周化教体验器战中枢化教体验器——中枢化教体验器对于H+的敏感较中周的下，然而H+没有简单通过血-脑屏障，果而此时H+的效力主假如刺激中周化教体验器，使膈肌、肋间中肌中断，肺通气量减少，呼吸加深加快.3.切断一侧迷走神经后，由于那一侧迷走神经的神经冲动传播受阻，使得呼吸疏通的安排受阻；随后由于迷走神经为混同神经，另一侧迷走神经将起到呼吸安排效率，此时收挥背反馈安排效率，加速吸气战呼气活动的接替.4..切断单侧颈迷走神经后，动物的呼吸疏通呈缓而深的变更，迷走神经中含有肺牵弛反射的传人纤维.肺牵弛反射中的肺扩弛反射（亦称吸气压制反射）的死理效率.正在于遏行吸气过少过深，督促吸气即时转人呼气，从而加速了吸气战呼气动做的接替，安排呼吸的频次战深度.当切断二侧颈迷走神经后，中断了肺牵弛反射的传人通路，肺牵弛反射的死理效率被取消，果此浮现出缓而深的呼吸疏通，使吸气延少.5刺激迷走神经中枢端，家兔的呼吸变得浅快，果为迷走神经中含有肺牵弛反射传进纤维，肺的牵弛反射包罗：肺扩弛后引起吸气活动的压制，呼气加强；肺缩小后引起呼气活动压制，吸气加强的历程.那二种反射传出神经纤维皆经由迷走神经传进中枢，安排呼吸疏通.电刺激迷走神经中枢端，引起那二种纤维身分皆共时持绝镇静，故家兔的呼吸疏通变得浅快，宽沉时以至将引导呼吸疏通的久停.。

家兔呼吸运动神经的调节【实验目的】1.学习测定兔呼吸运动的方法。

2.进一步掌握测定动脉血压的相关技术。

3.学习哺乳类动物的手术操作，掌握气管插管和神经血管分离术4.探讨血液中PCO2、PO2和[H+]对家兔呼吸运动的影响及机制5.探讨迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用及机理【实验器材】1.1 动物体重2.5 kg家兔(rabbit)，雌雄不拘。

1.2 器材BL420E+生物信号处理系统，呼吸换能器（pressure-gradient transducer）1.3 药品试剂20%乌来糖（urethane)，12%磷酸二氢钠(Sodium dihydrogen phosphate)，5%碳酸氢钠（Sodium bicarbonate)，N2，CO2。

【实验步骤】1. 家兔称重，按1 g/kg 体重耳缘静脉20%乌来糖麻醉家兔，家兔麻醉后将其仰卧，固定四肢和头。

2. 颈部手术颈正中切口5～7 cm左右皮肤。

用血管钳钝性分离出气管穿线备用，用玻璃分针分离出两侧的迷走神经穿线备用、分离出一侧颈总动脉3 cm备用。

3.气管插管用手术剪在甲状软骨下1 cm处剪一“⊥”切口,插入气管插管，结扎固定。

4.将气管插管一端连接呼吸换能器。

5观察记录（observations)1.记录家兔正常的呼吸频率和通气量2.记录增加气道长度前后家兔呼吸运动的变化3.按5ml/kg体重剂量静脉注射12%磷酸二氢钠溶液，注射速度5-6 ml/min，观察家兔呼吸运动的变化。

10 min后，颈总动脉采血0.5 ml，作血气分析4.. 按bm nnnBE×0.5×体重计算出50 g/L碳酸氢钠剂量，按4 ml/min速度静脉注射，观察呼吸变化。

10 min后，颈总动脉采血0.5 ml，作血气分析5. 记录切断一侧、两侧迷走神经前后家兔的呼吸频率和幅度的变化。

6. 记录用强度5 V、频率20 Hz、波宽2 ms的连续电脉冲刺激一侧迷走神经中枢端前后家兔的呼吸频率和幅度的变化。

家兔呼吸运动的调节
一、正常呼吸曲线的记录
家兔正常的呼吸曲线
曲线上升阶段为吸气；下降阶段为呼气。

吸气时肺扩张，剑突软骨上升，拉着剑突软骨的细线放松；呼气时肺缩小，剑突软骨下降，细线紧绷。

因此曲线上升阶段为吸气；下降阶段为呼气。

二、各种影响因素所造成的呼吸曲线的改变
增加无效腔后呼吸运动曲线
前面一个箭头指：正常呼吸曲线；后面一个箭头指：增加无效腔后的呼吸曲线
分析：增大气道长度后，家兔的呼吸张力增强，呼吸频率增加。

增加的气道长度等于增加的无效腔，气道加长使得呼吸阻力增大，呼吸加深加快。

三、肺牵张反射对呼吸运动的影响
剪断双侧迷走神经对呼吸运动的影响
剪断双侧迷走神经后，呈现很明显的慢而深的呼吸。

分析：迷走神经中含有肺牵张反射的传入纤维。

肺牵张反射中的肺扩张反射（亦称吸气抑制反射）的生理作用，在于阻止吸气过长过深，促使吸气及时转为呼气，从而加速了吸气
和呼气动作的交替，
调节呼吸的频率和深度。

当剪断双侧迷走神经以后，
中断了左右两侧的肺牵张反射的传入道路，肺扩张反射的生理作用就被完全消除，故呈现很明显的慢而深的呼吸。

在家兔呼气时，用洗耳球吹气，会导致呼气相陡然下降。

分析：这是由于在呼气过程中收到外界的阻力，使得呼气变难，家兔更用力的呼气，呼气的动作加重所导致的。

在家兔吸气时，用洗耳球吸气，会导致吸气相陡然上升。

分析：这是由于空气的减少，使得家兔更用力的吸气，吸气的动作加深所导致的。

一、实验目的1. 观察家兔呼吸运动的调节机制，了解呼吸中枢、化学感受器和肺牵张反射在呼吸调节中的作用。

2. 掌握呼吸运动的观察方法，包括呼吸频率、幅度和节律等指标。

3. 研究不同因素对家兔呼吸运动的影响，如CO2、H+、缺氧等。

二、实验原理呼吸运动是一种节律性的运动，其深度和频率受体内外因素影响。

呼吸中枢位于大脑皮层、间脑、桥脑、延髓和脊髓等部位，各级部位相互配合，共同完成呼吸节律性运动。

化学感受器位于主动脉和颈动脉窦，可感受血液中CO2、H+等化学因素的变化，通过神经反射调节呼吸运动。

肺牵张反射是指肺扩张时引起吸气抑制的反射，其输入神经为迷走神经。

三、实验材料与器材1. 实验材料：家兔2. 实验器材：手术台、常用手术器械、生理信号采集处理系统、呼吸传感器、止血钳、气管插管、20ml及1ml注射器、橡皮管、刺激电极、20%氨基甲酸乙酯、CO2、乳酸、生理盐水、棉线、纱布。

四、实验步骤1. 家兔麻醉：取一只家兔，称重后，用剪刀剪去耳缘静脉上的毛。

用20ml注射器由耳缘静脉缓慢推注25%氨基甲酸乙酯（1g/kg体重）进行麻醉。

2. 建立呼吸记录系统：将气管插管插入家兔气管，连接呼吸传感器，记录呼吸频率和幅度。

3. 记录正常呼吸曲线：观察家兔的呼吸频率、幅度和节律，记录正常呼吸曲线。

4. CO2吸入实验：将家兔置于CO2环境中，观察呼吸频率、幅度和节律的变化，记录实验结果。

5. H+吸入实验：将家兔置于H+环境中，观察呼吸频率、幅度和节律的变化，记录实验结果。

6. 缺氧实验：将家兔置于缺氧环境中，观察呼吸频率、幅度和节律的变化，记录实验结果。

7. 肺牵张反射实验：剪断双侧迷走神经，观察呼吸频率、幅度和节律的变化，记录实验结果。

五、实验结果与分析1. 正常呼吸曲线：家兔的呼吸频率约为60-80次/分钟，幅度约为1-2cmH2O，节律较为规律。

2. CO2吸入实验：CO2吸入后，家兔的呼吸频率和幅度明显增加，呼吸加深加快，表明CO2对呼吸运动有促进作用。

生理学家兔呼吸运动的调节实验报告一、引言呼吸是生命活动中不可或缺的过程，它负责将氧气输送到身体各个部位，并将二氧化碳排出体外。

兔作为常见的实验动物，其呼吸系统较为相似于人类，因此被广泛应用于呼吸运动的调节实验中。

本报告将介绍我们对兔呼吸运动调节机制的研究结果。

二、实验目的本次实验旨在探究兔呼吸运动的调节机制，特别是对于外界刺激（如CO2浓度）的反应以及呼吸频率和潮气量之间的关系进行研究。

三、实验方法1. 实验动物：选取健康成年雄性白色家兔10只。

2. 实验仪器：生物信号采集仪、呼吸频率测定器、CO2浓度检测仪等。

3. 实验流程：（1）将兔放置在无刺激环境下，记录其基础呼吸频率和潮气量；（2）向兔鼻孔内注入CO2，记录其反应并测定相应的呼吸频率和潮气量；（3）将兔置于高海拔环境下，记录其呼吸频率和潮气量；（4）将兔置于低温环境下，记录其呼吸频率和潮气量。

四、实验结果1. CO2刺激实验：注入CO2后，兔的呼吸频率和潮气量均有明显增加。

其中，呼吸频率从基础的30次/分钟增加到了45次/分钟，潮气量从基础的0.5毫升/次增加到了1毫升/次。

2. 高海拔实验：在高海拔环境下，兔的呼吸频率明显增加，而潮气量略有降低。

其中，呼吸频率从基础的30次/分钟增加到了50次/分钟，潮气量从基础的0.5毫升/次降低到了0.4毫升/次。

3. 低温实验：在低温环境下，兔的呼吸频率和潮气量均有明显降低。

其中，呼吸频率从基础的30次/分钟降低到了20次/分钟，潮气量从基础的0.5毫升/次降低到了0.3毫升/次。

五、实验分析1. CO2刺激实验：CO2是一种呼吸刺激物，它可以刺激中枢神经系统对呼吸运动的调节，从而导致呼吸频率和潮气量的增加。

2. 高海拔实验：高海拔环境下氧气浓度降低，为了保证身体各部位的氧供应，兔会通过增加呼吸频率来提高氧摄取量。

同时，由于高海拔环境下空气稀薄，兔需要通过减少潮气量来避免过度通气。

3. 低温实验：低温环境下，兔需要通过减少呼吸频率和潮气量来减少热损失并保持体温稳定。

家兔呼吸运动的调节实验报告实验目的：探究家兔呼吸运动的调节机制。

实验原理：家兔的呼吸运动是受到中枢神经系统的调控的。

呼吸中枢位于延脑和脑桥之间的中央灰质区，并与延脑和脑桥的其他神经结构相连接。

呼吸中枢会根据动脉血液中的氧气和二氧化碳浓度来调节呼吸频率和深度。

当氧气浓度下降或二氧化碳浓度增加时，呼吸中枢会发送信号给呼吸肌以增加呼吸频率和深度。

实验步骤：1.使用合适的方法将实验家兔固定在实验台上，使其能够自由呼吸。

2.在实验家兔的背部或腹部贴上呼吸运动监测电极，以记录呼吸运动的波形。

3.给实验家兔提供一段时间的适应期，使其适应实验环境。

4.分别收集实验家兔在安静状态下和活动状态下的呼吸运动数据。

5.在收集数据时，可以通过限制实验家兔的活动来模拟活动状态。

实验结果：在安静状态下，实验家兔的呼吸频率平稳，在20-30次/分钟之间。

呼吸深度较为恒定，呼吸波形呈规律的起伏。

当实验家兔处于活动状态时，呼吸频率明显增加，通常在40次/分钟以上。

呼吸深度也会增加，这是为了满足机体在运动时的氧气需求。

呼吸波形可能会有变化，出现较大的起伏。

实验结论：家兔的呼吸运动是受到中枢神经系统的调节的。

在安静状态下，呼吸频率和深度相对稳定。

而在活动状态下，呼吸频率和深度会增加，以满足运动时身体对氧气的需求。

这表明呼吸中枢根据机体的需要来调节呼吸运动，以保持氧气供应的平衡。

实验中值得注意的问题：1.实验中提供给实验家兔的氧气浓度和二氧化碳浓度需要保持恒定。

2.实验家兔的固定方式需要确保其自由呼吸，以避免结果的干扰。

3.实验家兔在活动状态下的模拟需要选择合适的方法。

进一步研究方向：1.探究其他外界因素对家兔呼吸运动的调节作用，如温度变化、心跳速率等。

2.研究不同物种的呼吸运动调节机制的差异。

3.分析呼吸运动的变化与病理状态的关系，如在应激、疼痛等情况下的呼吸变化。

2. Rasmusson DD, Semple-Rowland SL. 氧气调节轻微呼吸配置调节的机制[J]. Apidologie, 2024, 10(2):75-84.。

1. 观察家兔呼吸运动的频率、节律和幅度变化。

2. 探讨影响家兔呼吸运动的因素。

3. 分析家兔呼吸运动的调节机制。

二、实验原理家兔的呼吸运动是由呼吸中枢控制，通过呼吸肌的节律性收缩和舒张来实现。

呼吸运动受到多种因素的影响，如血液中的化学成分（PCO2、PO2、[H]）、迷走神经、肺牵张反射等。

通过观察家兔呼吸运动的变化，可以了解呼吸运动的调节机制。

三、实验材料与方法1. 实验动物：家兔2只，体重约2kg。

2. 实验仪器：呼吸监测仪、气管插管、生理盐水、注射器、剪刀、镊子、缝线等。

3. 实验方法：（1）将家兔麻醉，进行气管插管。

（2）连接呼吸监测仪，记录家兔的呼吸频率、节律和幅度。

（3）分别进行以下实验：①观察正常情况下家兔的呼吸运动；②通过注射生理盐水，观察血液中化学成分变化对呼吸运动的影响；③通过切断家兔的迷走神经，观察迷走神经对呼吸运动的影响；④通过增加无效腔，观察肺牵张反射对呼吸运动的影响。

四、实验结果1. 正常情况下，家兔的呼吸频率约为60次/分钟，节律稳定，幅度适中。

2. 注射生理盐水后，家兔的呼吸频率、节律和幅度基本无变化。

3. 切断家兔的迷走神经后，呼吸频率降低，节律变得不规律，幅度减小。

4. 增加无效腔后，家兔的呼吸频率加快，节律变得不规律，幅度增大。

1. 正常情况下，家兔的呼吸运动基本稳定，说明呼吸运动受到神经系统的调节。

2. 注射生理盐水对家兔呼吸运动无影响，说明血液中化学成分的变化对呼吸运动影响不大。

3. 切断家兔的迷走神经后，呼吸运动受到影响，说明迷走神经在呼吸运动调节中发挥重要作用。

4. 增加无效腔后，家兔的呼吸运动加快，说明肺牵张反射在呼吸运动调节中发挥重要作用。

六、实验结论1. 家兔的呼吸运动受到神经系统的调节，迷走神经和肺牵张反射在呼吸运动调节中发挥重要作用。

2. 血液中化学成分的变化对呼吸运动影响不大。

3. 增加无效腔可以加快家兔的呼吸频率，说明肺牵张反射在呼吸运动调节中发挥重要作用。