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痰液检验及临床意义一、痰液标本的采集与处理（一）操作1、痰常规标本：嘱患者晨起用清水漱口，然后用力咳出1~2口痰液，盛于蜡纸盒或广口容器内。
如查癌细胞，容器内应放10%甲醛溶液或95%乙醇溶液固定后送检。
2、痰培养标本：清晨痰量多，含菌量亦大，嘱患者先用复方硼砂含漱液，再用清水漱口，除去口腔中细菌，深吸气后用力咳出1 ~2口痰液盛于灭菌培养皿或瓶中，及时送检。
3、24小时痰标本：容器上贴好标签，注明起止时间，嘱患者将晨7时至次日7时的痰液全部留在容器中送检，不可将漱口液、唾液等混人。
（二）注意事项1、痰液标本收集法因检验目的不同而异，主要用自然咳痰法。
采集容器须加盖，痰液勿污染容器外(用不吸水容器盛留)。
2、痰液一般检查应收集新鲜痰，以清晨第一口痰为宜。
患者起床后刷牙，漱口(用3% H2O2及清水漱3次)，用力咳出气管深处呼吸道分泌物，勿混人唾液、鼻咽分泌物和漱口水，及时送检。
适用于常规检验、一般细菌检验、结核菌检查。
3、细胞学检查用上午9~10点深咳痰液及时送检（清晨第一口痰在呼吸道停留时间久，细胞可发生自溶破坏或变性而结构不清），应尽量送含血痰液。
4、浓缩法找抗酸杆菌应留24小时痰(量不少于5ml)，细菌检验应避免口腔、鼻咽分泌物污染。
5、幼儿痰液收集困难时，可用消毒棉拭子刺激喉部引起咳嗽反射，用棉拭子采取标本。
6、对无痰或少痰患者可用经459C加温100g/L氯化钠水溶液雾化吸人，促使痰液咳出;对小儿可轻压胸骨柄上方，诱导咳痰;昏迷患者可清洁口腔后用负压吸引法吸取痰液。
7、观察每日痰排出量和分层时，须将痰放人广口容器内，可加少量苯酚防腐。
8、标本不能及时送检，可暂时冷藏保存，但不宜超过24小时。
9、检验完毕后，标本及容器应按生物危害物处理。
二、痰液理学检验痰液理学检验有检测痰液的量、颜色、气味、性状等理学指标，为呼吸系统疾病诊断及疗效判断提供依据。
（一）结果判定1、量：以ml/24h计，无痰或仅有少量泡沫样或黏液样痰。
痰检室标准操作程序一、进入实验室工作前，穿戴工作衣、口罩、帽子、手套。
二、痰标本分类：1、即时痰；2、夜间痰；3、次日晨痰。
三、痰标本性状分类：A、干酪痰；B、血痰；C、黏液痰；D、唾液痰。
标本量一般3—5ml。
四、标本采集：（一）初诊患者应收集3份痰液标本（1.即时痰；2.夜间痰；3.次日晨痰）；（二）治疗中或者随访患者按期留取2份标本（1.晨痰；2.夜痰）。
注：若当日未能检查的标本，应放入4℃冰箱保存，避免干固或污染。
五、标本处理：（一）收集痰标本后，首先将病人姓名、编号（初诊病人门诊序号或随访病人登记号）、痰标本序号和性状作登记。
（二）用铅笔在有磨砂面的新玻片上注明实验序号及标本序号。
注：确保玻片上的编号与痰盒上的编号一致（三）小心打开痰标本容器，使用折断的竹签挑取痰标本中可疑部分，于玻片正面均匀涂抹成10㎜×20㎜的卵圆形痰膜。
注：取样、染色必须在通风柜中进行。
（四）待痰涂片自然干燥后，放置在染色架上，玻片间距离10㎜以上，酒精灯5秒钟内将玻片经过火焰加热4次固定。
（五）染色：1、滴加石炭酸复红初染液盖满玻片，加热出现蒸汽，染色5分钟。
2、用流水自玻片一端轻缓冲洗，沥干水，滴加脱色液，脱色1分钟。
3、用流水自玻片一端轻缓冲洗，沥干水，滴加亚甲蓝复染液，染色30秒。
4、流水自玻片一端轻缓冲洗，沥干水，待玻片干燥后镜检。
（六）镜检：1、取染色干燥的玻片，痰膜向上放置在显微镜台上并固定。
2、先用10倍目镜调节成像清晰后，在玻片上滴1—2滴专用镜油，使用100倍油镜进行细致观察。
六、结果判定：阅片时，从头开始，以“弓”形移动读片，在淡蓝色背景下，抗酸杆菌呈红色杆状，其他细胞呈现蓝色。
1、观察300视野未见抗酸杆菌为阴性；2、1-8条/300视野以条数报告；3、3-9条/100视野为1+；4、1-9条/10视野为2+；5、1-9条/每视野为3+；6、≥10条/每视野为4+。
七、使用完显微镜后，立即用镜头纸将油镜擦净，关闭显微镜电源。
、痰液及下呼吸道分泌物培养标准操作流程1观察标本合格后操作。
一般为晨痰，再留取痰之前刷牙、反复漱口，应从气管深部咳出痰，吐进无菌容器内送检。
涂片白细胞小于10，上皮细胞大于25 为不合格痰，相反白细胞大于25，上皮细胞小于10-25 为合格痰标本。
2点燃酒精灯，尽量保证无菌中间。
3接种环灭菌—待冷却后—取痰液—接种到血平板、中国兰平板（或麦康凯平板上）。
平板划线分离培养：（1）用接种环将标本涂布在平板第一区域并作数次划线，在第二三区依次用接种环划线。
（2）每划一区域应将接种环烧灼一次，冷却后再划下一区域，每一区域得划线应接触上一区域得接种线2-3 次使菌量逐渐减少以形成单个菌落。
（3）划线完毕将平板加盖倒置（琼脂平板得底部向上）于35°C 培养18-24 小时。
4观察菌落特征涂片染色，确定阳性菌、阴性菌、球菌还就是杆菌后鉴定种属。
5做药敏试验---- 报告结果。
便培养标准操作流程1、收取有粘液或脓血、稀水粪便标本。
2、点燃酒精灯，尽量保证无菌中间。
3、接种环灭菌一待冷却后一取粪便一接种到血平板、SS平板、中国兰平板（或麦康凯平板上）。
平板划线分离培养：（1）用接种环将标本涂布在平板第一区域并作数次划线，在第二三区依次用接种环划线。
2）每划一区域应将接种环烧灼一次，冷却后再划下一区域，每一区域得划线应接触上一区域得接种线2-3 次使菌量逐渐减少以形成单个菌落。
（3）划线完毕将平板加盖倒置（琼脂平板得底部向上）于35°C 培养。
4培养18-24 小时后观察菌落特征涂片染色，确定阳性菌、阴性菌、球菌还就是杆菌后鉴定种属。
5做药敏试验--- 报告结果。
尿培养标准操作流程1收取晨尿第一泡清洁中段尿。
（把外阴用肥皂清洗一遍，再用清水清洗两遍，待干或用干净布擦干）用导尿管得病号需新换导尿管后取标本2点燃酒精灯，尽量保证无菌中间。
3接种环灭菌一待冷却后将标本混匀，用定量接种环取尿液1ul（大约一接种环）一接种到血平板，接种环灭菌---待冷后取标本接种到中国兰平板（或麦康凯平板上）。
痰培养操作流程sop
痰培养是一种常见的临床检验方法，用于检测痰样本中的细菌、真菌和病毒等微生物。
正确的痰培养操作流程（SOP）对于确保检测结果的准确性至关重要。
以下是一份关于痰培养操作流程的详细指南：
1. 准备工作：在进行痰培养之前，首先要准备好所需的实验室
用品和设备，包括培养皿、试管、吸管、培养基、显微镜等。
2. 收集痰样本：患者在清晨醒来后深呼吸数次，然后用消毒液
清洁口腔，用力咳嗽将痰样本吐入干净的容器中。
3. 样本处理：将收集到的痰样本转移到试管中，并加入适量的
生理盐水或其他稀释液，使样本更易于处理。
4. 稀释和涂片制备：将痰样本进行适当的稀释，然后取少量样
本涂抹在玻片上，用炉灰染色或其他染色方法染色。
5. 培养：将涂片放入培养皿中，加入适量的培养基，然后放入
培养箱中进行培养。
根据需要，可以选择不同种类的培养基，如血
琼脂培养基、马铃薯葡萄糖琼脂培养基等。
6. 培养条件：将培养皿放入恒温培养箱中，设置适当的温度和
湿度条件，通常在37摄氏度下培养24-48小时。
7. 结果观察：观察培养皿中的细菌、真菌或病毒的生长情况，根据形态、颜色、大小等特征进行初步鉴定。
8. 进一步鉴定：对于生长的微生物，可以进行进一步的生化试验或分子生物学检测，以确定其种属和抗生素敏感性。
9. 结果报告：根据实验结果，编制详细的检测报告，并及时通知临床医生，以指导患者的治疗方案。
总之，痰培养操作流程需要严格按照规范操作，确保实验结果的准确性和可靠性。
只有这样，才能为临床诊断和治疗提供有效的支持。
儿童痰培养的标准流程1.引言1.1 概述痰培养是一种常见的临床检验方法，用于检测病原体（如细菌、真菌等）是否存在于痰中，并进一步确定其种类和敏感性。
对于儿童来说，痰培养尤为重要，因为他们的免疫系统较为脆弱，容易感染各种致病微生物。
因此，及时、准确地进行儿童痰培养对于儿童的健康非常关键。
儿童痰培养的标准流程是一套规范化的操作步骤，旨在确保痰样本的采集、保存、运输和分析的准确性和可靠性。
标准流程的制定有助于规范儿童痰培养的操作，提高检测结果的准确性和可比性。
本文将详细介绍儿童痰培养的标准流程，包括痰样品的采集方法、保存条件、运输方式和实验室分析，以及对实验结果的解读和处理。
通过了解和掌握这些标准流程，医护人员和实验室技术人员能够更好地进行儿童痰培养，准确地判断儿童是否感染了致病微生物，并根据检测结果制定相应的治疗方案。
此外，我们还将提供一些建议，以便将标准流程推广应用到更多的医疗机构和实验室，从而提高儿童痰培养的质量和效率。
下一节将进一步介绍文章的结构和目的，以及痰培养的意义和儿童痰培养的必要性。
通过全面介绍这些内容，我们希望读者能够对儿童痰培养有一个更深入的理解，并且能够正确地应用标准流程进行实际操作。
文章结构部分的内容如下：1.2 文章结构本篇文章分为引言、正文和结论三个部分。
引言部分主要对文章进行概述，介绍儿童痰培养的标准流程的背景和重要性。
同时，还会说明文章的目的，即通过介绍标准流程，提高人们对儿童痰培养的认识和认识的正确性。
正文部分是本篇文章的核心内容，将重点讨论痰培养的意义和儿童痰培养的必要性。
首先，会详细解释痰培养的意义，包括可以帮助医生确定细菌或真菌感染的类型，以便选用正确的药物进行治疗。
其次，会阐述儿童痰培养的必要性，即儿童由于免疫系统不完善，容易受到细菌或真菌感染，并可能导致严重的呼吸道疾病。
因此，对于儿童来说，及早进行痰培养并严格按照标准流程操作是非常必要的。
结论部分主要总结标准流程的重要性，并提出推广应用的建议。
痰液细菌学检验的标准化操作程序初探杨 进 卢先雷 罗宇鹏(成都市第五人民医院检验科,成都611130)【摘要】 目的 提高痰液细菌学检验的临床符合率的同时,尽可能缩短检验时间,促进呼吸科感染病诊治水平的提高和抗生素滥用的控制。
方法 通过对痰标本质量和首代分离培养基质量控制的改进,合理搭配使用多种选择性培养基,坚持在直接涂片镜检结果的指导下分离鉴定,采用具有培养鉴定作用的多功能培养基配合快速酶法编码鉴定系统进行鉴定并在鉴定的同时进行药敏试验;以病历调查统计临床符合率。
结果 痰标本合格率仅为20%～30%,筛选后2000份合格标本分离率为64.7%,苛养性细菌分离率24.7%,其中肺炎链球菌分离率14.4%,流感嗜血杆菌分离率20.8%;629株常见细菌的鉴定正确率97.0%,与常规微量生化编码法对556株非苛养菌的鉴定比较,x2=13.56,P<0.005,差异具有显著性;所有常见菌全部试验可在45h～96h内完成;400份病历初步调查,临床符合率74%。
结论 痰标本采集合格率低是影响痰液临床符合率的主要因素;应用作者建立的痰液细菌学标准化操作程序(SOP)可提高痰液细苗学检验的阳性率和临床符合率,在一定程度上缩短试验时间,加快报告的进程。
【关键词】 细菌学;呼吸道感染Init i al study for t he sta ndar d operat ion pr ocedure of sputum cult ure Lu X ianlei(Clin ical Microbial Lab oratory,Th e N O.5 H ospital of Chengdu.Chengdu W enjiaog611130)【Abstra ct】Objective T o improv e the clin ical agreement o f s potu m cu lture,and curtail testing period,for th e prom oti on o f pulm onary in2 fection disease and the drug abuse control of antibiotics.Methods By the improv emen t o f QC o f s puta s peciments and first cu lture med ia,and reas onable comb ination of varied media,is olates were be cu lture and identified with pil ot of micrography,usin g the Rapid identificati on System w ith multi-fatmtion media that can culture and iden ti fy bacteria,identification were be to d o wh ile antib iotic suscep fib ility testing;th e Clin ical agreemen t w as be calculated by case files analysis.Results T he sam ples elig ibility rate o f sputa w as20～30%.W ith2000specimen ts that were eligible by screenin g.T otal is olation rate w as64.7%,24.7%for th e fastid ious,and14.7%for S.pnu moniae,the is olation rate o f H aemophilus w as20.8%;the id entification accuracy w as97.0%with629is olates.By556n o-fas fidious is olates’identification as comparis on between Rapid identi fication Sys tem and routin e iden tificati on SystemPanel,x2=13.56,P<0.005,the di fference was significant.T otal tes ts cou ld be com plete within45～96h for all s pecies;the clinical agreement w as74%by400cas es anulyzing.Co nclusions T he reas on that the clinical a2 greement was lo wer w hh sputum culture is lower elig ibility rate of s puta.By this study,it w as con firmed that the is olation rate and clinical agree2 men t of sputu m culture w ould be hcreased w ith us ing our standard operation procedure(SOP)o f s putum cu lture,and testing period w ould de curtailed.【K ey w or ds】Bacteriology;Respirat ory T ract ln fections 众所周知,传统习惯程序的痰标本细菌学检验其临床符合率并不高,其原因是多方面的。
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在进行痰液标本的细菌学检验前，首先需要采集痰液标本。
痰液标本细菌学检验（一）关键词：细胞库菌株培养中心 atcc 北京标准物质网一、检验程序痰及呼吸道标本的细菌学检验程序见图34—1。
二、检验方法(一)显微镜检查1．一般细菌涂片检查挑取标本中脓性或带血部分涂片进行革兰染色镜检，描述观察到的细菌的染色性、形态及排列等特征，可发出初步报告。
2．结核分枝杆菌涂片检查挑取标本干酪样或脓性部分做抗酸染色和金胺“O”荧光染色，前者用油镜，后者用荧光显微镜检查。
具体操作详见第十五章分枝杆菌属检验。
3．放线菌及诺卡菌涂片检查将痰液用生理盐水反复洗涤数次，挑取黄色颗粒(硫黄颗粒)或不透明着色斑点，置玻片上并覆以盖玻片，轻压后置高倍镜下观察。
如见中央为交织的菌丝，其末端粗杆呈放线状排列时揭去盖玻片，待干后做革兰染色及抗酸染色镜检。
4．下呼吸道其他标本检查支气管肺泡灌洗液等直接取自下呼吸道的标本，不易受上呼吸道杂菌的污染，涂片检菌的意义较大。
可取离心沉淀物进行革兰染色与抗酸染色检查。
(二)培养和鉴定1．痰培养标本的前处理于痰标本中加入一定量无菌生理盐水，剧烈振荡5～10秒后，将沉淀于管底的脓痰小片取出，置于另一试管中，同法再处理2次，可洗去痰中的正常菌群。
然后向洗涤过的痰液中加入等量pH 7. 6的1％胰酶溶液，放置35℃环境90分钟，使痰液均质化后备用。
2．培养基与培养环境(1)血琼脂平板：适用于分离多种细菌，需氧环境，可分离β-溶血性链球菌，葡萄球菌；置于5％CO环境培养，分离肺炎链球菌和β-溶血性链球菌。
根2据血琼脂平板生长的菌落特征及镜检形态，得出初步结果，再按各类细菌特性做进一步鉴定。
环境培养，常用于分离嗜血杆菌和脑膜(2)巧克力色琼脂平板：置于5％CO2炎奈瑟菌等有特殊营养需求的细菌。
(3)中国蓝琼脂平板／麦康凯平板：需氧环境培养，常用于分离肠杆菌科细菌。
(4)TTC-沙保弱培养基：需氧环境培养，用于分离白假丝酵母菌及其他酵母菌、诺卡菌、放线菌以及烟曲霉菌等。
痰检实验室操作规程一、检查程序（一）痰标本收集：在三个痰标本盒上注明病人的姓名、编号、检查日期和容器序号。
病人首次留痰前应指导病人，留取“即时痰”、“夜间痰”、“晨痰”合格的痰标本，对所送不合格痰标本除常规检查外，应要求患者重新送检，合格的痰标本包括干酪痰、血痰、粘液痰。
唾液或口水用于病人确诊时为不合格痰标本，标本量一般在3～5 ml。
（二）痰涂片制作：1、检查前对新的玻片用95%的乙醇擦拭脱脂，经干燥、清洁、检查无油污、无划痕后作为合格的玻片备用。
在已经准备的痰玻片背面左端的1/3处注明编号，挑取痰标本中可疑部分约0.05～0.1 ml，于玻片正面右侧2/3处，均匀涂抹成10×20 mm的卵圆形痰膜。
2、痰膜朝上静置自然干燥后(一般约需要30分钟)进行染色镜检。
当气温低，痰膜不易干燥时，严禁将玻片直接在火焰上烘拷，以防产生气溶胶或痰膜脱落。
一张载玻片上只能涂抹一份痰标本，一张载玻片只能使用一次，不得清洗后再次用于痰涂片染色检查。
3、涂抹完毕后的痰标本，在检查结果报告前，应暂时保留。
以备涂片、染色不合格影响镜检结果时，重新涂片和染色之用。
4、萋－尼氏染色油镜检查.（三）实验室登记：按照年度病人序号和痰标本序号在实验室登记本上进行登记，并以同样的号码在痰涂片检查单上进行标记。
检验单的病人姓名应与实验室登记本一致。
（四）痰涂片检查结果登记与报告：及时在登记本上登记痰涂片检查结果。
当病人的三次痰涂片检查完成后，发现有阳性痰涂片，应在规定时间内报医院防保科，县级结核病防治机构再对痰涂片进行确认。
（六）痰涂片的保存：每个查痰点镜检后的全部痰涂片应按实验室登记本序号连续排列，分别存放在各点固定的玻片盒中，供上级实验室复核确认。
（七）痰检质量控制：每个痰涂片检查点均按照中国结核病防治规划《痰涂片镜检质量保证手册》的要求，作为一个独立的被质控单位接受室间质量评估和检查工作。
二、萋－尼氏染色1、涂片自然干燥后，放置在染色架上，玻片间距保持在10 mm以上的距离；火焰固定(在5秒钟内将玻片置于火焰上来回烘烤4次)。
痰标本细菌学检验
细菌室
一、项目申请：
1、普通细菌培养：对于病房患者选择项目名称为“病房痰培养”，对于门急诊患者选择“门诊痰培养”。
如果临床怀疑奴卡菌等特殊病原体，需要在打印出的条码上注明目的病原菌，以便实验室延长培养时间和选择适当培养方法。
2、真菌培养：选择项目名称为“真菌培养”，标本种类选择“痰”。
3、不适于培养的病原菌：厌氧菌、军团菌、衣原体、支原体等，如果有疑问请与细菌室联系询问（电话2485）。
分枝杆菌培养为我院外送检验项目。
二、标本采集：
1、采集时间：尽量在抗生素使用前，以清晨留取的标本为更佳。
2、容器要求：螺旋口无菌塑料瓶。
3、采集方法：标本采集前应充分清洁患者口腔，如：漱口、刷牙等，有假牙的病人应取下假牙。
嘱附病人深咳，将痰液直接留到无菌瓶内。
容器瓶口旋紧勿泄漏。
4、将条码贴于标本瓶上，扫描记录采集时间。
三、送检要求：
1、标本采集后应及时（2小时内）送检。
标本若冷藏保存可能会影响对温度敏感细菌的检出。
2一天送检一次即可，不需同一天内连续送检多次，多余的送检标本视为不合格。
如遇特殊情况需多次送检时，请事先与细菌室联系。
3、常规送检时间为每周一至周五8点至16点30分，节假日顺延。
在常规时间以外如有送检要求，请事先与细菌室联系说明送检原因，经确认后再送检。
四、检验流程：
五、报告发放：
1、阴性报告：普通细菌培养2-3天，真菌培养1周，特殊病原菌延长相应时间。
2、阳性报告：4天，如遇细菌生长缓慢等特殊情况则延迟发放。
第1篇一、实验目的痰标本实验主要用于检查痰液中是否存在病原微生物，如细菌、病毒、真菌等，以协助诊断呼吸系统疾病。
本实验报告流程旨在规范痰标本的采集、处理、检验及报告流程。
二、实验流程1. 标本采集（1）评估患者病情：采集痰标本前，评估患者的病情、年龄、治疗情况、排痰情况及配合程度。
（2）物品准备：备好痰标本采集容器、无菌手套、生理盐水、漱口液等。
（3）采集方法：a. 常规痰标本：嘱患者晨起后用清水漱口清洁口腔，然后用力咳出气管深处的痰液，盛于痰标本容器内。
b. 24小时痰标本：嘱患者将24小时内（晨7时至次晨7时）的痰液全部留于清洁广口瓶内。
c. 培养标本：嘱患者清晨起床后先用朵贝儿溶液漱口，再用清水漱口，深呼吸数次后用力咳出气管深处的痰液，盛于无菌培养瓶或盒内。
2. 标本处理（1）常规痰标本：将痰液置于生理盐水中，剧烈振荡5-10秒，然后用接种环将沉淀于管底的脓痰小片沾出，放入另一试管内，重复此过程两次。
（2）培养标本：将痰液接种于适宜的培养基上，置于37℃恒温箱中培养。
3. 检验（1）一般细菌涂片检查：挑选痰液中脓性或带血部分，涂成均匀薄片，行革兰氏染色，镜检。
（2）痰培养：观察培养基上是否有菌落生长，并进行鉴定。
4. 结果报告（1）根据检验结果，报告病原微生物的种类、数量等信息。
（2）若为细菌感染，报告敏感抗生素及耐药情况。
（3）若为病毒、真菌感染，报告病原微生物的种类。
三、注意事项1. 采集痰标本时，注意无菌操作，避免污染。
2. 标本采集后，尽快送检，以免影响检验结果。
3. 检验过程中，严格按照操作规程进行，确保检验结果的准确性。
4. 对患者进行解释，取得患者的配合。
四、实验总结痰标本实验是呼吸系统疾病诊断的重要手段之一。
本实验报告流程规范了痰标本的采集、处理、检验及报告流程，有助于提高检验结果的准确性，为临床诊断提供有力支持。
在实验过程中，应严格遵守操作规程，确保实验结果的可靠性。
第2篇一、实验目的痰标本实验是对痰液进行微生物学、细胞学、病理学等方面的检测，以辅助临床诊断和治疗。
痰标本采集操作标准痰标本采集操作标准目的：1.评估患者痰液的量、颜色、气味及浓稠度，了解疾病进展和治疗成效。
2.收集患者痰液做细菌培养、细胞学检查，协助诊断。
操作前准备：1.评估患者病情、年龄、治疗、排痰情况和配合程度。
2.评估患者口腔粘膜有无异常。
3.观察痰液的颜色、性质、量、气味、粘稠度，并解释留痰的目的、方法和注意事项。
4.护士准备：洗手、戴帽子、口罩。
5.用物准备：化验单、痰标本（留取痰培养标本时需备无菌标本及漱口液）、吸痰用物一套（一次性痰液收集器、无菌手套、生理盐水、负压吸引器一套）。
操作步骤：1.双人核对医嘱，打印条码。
2.按医嘱备痰标本，上贴好条形码。
3.洗手，戴口罩、手套。
4.携用物至患者床旁，再次核对患者姓名、住院号，向病人解释，取得配合。
5.指导或帮助患者按要求排痰，包括常规痰液标本、痰培养标本、难于自然咳嗽、不合作或人工气道患者痰液采集法、24小时痰标本采集法和咽试子采集法。
6.脱手套，消毒双手，再次核对，整理床单位，协助患者取舒适体位。
7.观察痰液的色、质、量。
8.处理用物，洗手。
9.按要求将痰标本及时送检。
注意事项：1.除24小时痰标本外，痰液收集时间宜选择在清晨。
2.查痰培养及肿瘤细胞的标本应立即送检，也可用95%乙醇或10%甲醛固定后送检。
3.避免在进食后2小时内留取咽拭子标本，以防呕吐，棉签不要触及其他部位以免影响检查结果。
痰标本采集考核标准：项目操作要点分值评分标准：无需删除明显有问题的段落，也无需小幅度改写。
要求：将文章格式错误剔除，删除明显有问题的段落，并进行小幅度改写。
评估患者的配合程度、年龄、病情、治疗和排痰情况，以及口腔粘膜是否异常，这些都是留痰操作前需要评估的内容。
如果漏掉其中一项，将会被扣除2分或更多。
此外，观察痰液的颜色、性质、量、气味和粘稠度也是非常重要的步骤，这一步可以获得5分。
在留痰操作前，需要准备好化验单、痰标本、吸痰用物等一系列工具。
痰培养标本检验流程下载提示：该文档是本店铺精心编制而成的，希望大家下载后，能够帮助大家解决实际问题。
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痰培养操作流程sop痰培养是一种常见的临床实验室检查方法，用于检测痰样本中的细菌、真菌和病毒等微生物。
正确的痰培养操作流程对于准确诊断和治疗疾病至关重要。
下面是一份关于痰培养操作流程的标准操作规程（SOP）：1. 收集痰样本：首先，需要向患者解释痰培养的目的和过程，并告知患者如何正确收集痰样本。
患者应该在清晨醒来后进行痰样本的收集，以确保样本的新鲜度和准确性。
2. 标本处理：将患者收集的痰样本转移到干净、干燥的容器中，并密封好。
在标本处理过程中，操作人员应该佩戴手套和口罩，以避免交叉感染。
3. 样本传送：将标本送往实验室进行痰培养前，需要填写标本送检单，并确保标本的标识清晰准确。
在传送过程中，要注意避免样本的温度变化和震动。
4. 样本处理：实验室接收到痰样本后，首先需要进行样本的离心处理，以分离细菌和其他微生物。
然后将样本接种到不同的培养基上，以促进微生物的生长。
5. 培养条件：根据不同的微生物种类，需要在不同的培养条件下进行培养。
通常情况下，细菌需要在37摄氏度的培养箱中培养，而真菌和病毒则需要在不同的培养基上进行培养。
6. 结果解读：培养后的样本会形成不同形状和颜色的菌落，实验室技术人员需要根据菌落的形态和生长特性来鉴定微生物的种类。
最终，会生成一份痰培养报告，告知医生检测结果。
7. 结果分析：医生根据痰培养报告来判断患者是否感染了细菌、真菌或病毒，并根据检测结果来制定相应的治疗方案。
痰培养结果对于选择抗生素和其他治疗药物具有重要的指导意义。
总的来说，痰培养操作流程需要严格按照标准操作规程来进行，以确保检测结果的准确性和可靠性。
只有通过正确的操作流程和专业的实验室技术人员，才能为临床医生提供准确的诊断信息，帮助患者及时得到有效的治疗。
痰标本处理标准操作程序1呼吸道标本细菌培养检测结果的准确、可靠。
2深部痰标本或下呼吸道分泌物。
3无菌痰杯或咽拭子。
4BD Phoenix 100 全自动细菌分析仪。
55.1 标本采集5.1.1 采样时机：在抗生素药物使用之前采集清晨第一次痰液送检。
a) 痰标本：最好在应用抗菌药物之前采集标本。
以晨痰为最好。
对支气管扩张症或与支气管相通的空洞患者，清晨起床后进行体位引流，可采集大量痰液。
b)下呼吸道分泌物、支气管纤维镜刷片：也宜早晨空腹采集为佳。
5.1.2 采集方法a) 痰液标本采集患者清晨起床后，用清水反复漱口后用力自气管咳出第一口痰于灭菌容器内，立即送检。
对于痰量少或无痰的患者可采用雾化吸入加温至 45℃的10%NaCl 水溶液，使痰液易于排出。
对咳痰量少的幼儿，可轻轻压迫胸骨上部的气管，使其咳嗽，将痰收集于灭菌容器内送检。
b) 环甲膜穿刺吸痰对于一些疑难、病情危重或免疫受损患者继发肺部感染可用一些侵入性诊断技术采集下呼吸道标本。
若采用环甲膜穿刺吸痰法取痰液标本，藉套管针自环甲膜插入消毒塑料管吸取分泌物，作病原体培养，不受口腔、咽部病原体的污染，可较准确地反映下呼吸道及肺部感染的病原菌。
本方法简便实用，阳性率高，结合定量培养可能区别假阳性。
但本检查有轻微创伤性，并发症包括皮下气肿、气管内出血等。
有出血倾向、严重心血管疾病者禁用。
c)纤维支气管镜采集法经(纤支镜)直接吸引下呼吸道分泌物，由于纤支镜通过口咽部时同样受到污染，因此认为也不比咳出的痰更好。
经纤支镜以附刷的双层套导管方式直接采集肺部分泌物，进行细菌、真菌、厌氧菌培养和免疫荧光等检查，往往能可靠地找到感染病原体。
由于其效果尚无法达到完全不受污染的情形，所以应进行定量培养，其细菌浓度＞103cfu/ml 则有意义。
经过临床评估，此种采样方式临床应用价值颇高。
采样时防污染标本刷取样应深入，且应多方向旋转及上下移动，这样取痰可提高痰培养的敏感性。
痰液细菌学检验的标准化操作程序1前言众所周知，传统习惯程序的痰标本细菌学检验其临床符合率并不高,其原因是多方面的。
除了痰标本采集不规范导致的不合格标本带来的培养结果与病人感染不相符外，还因为微生物和人体的相关性本身就具有复杂性：源自细菌的致病与条件致病的辨证性，如致病菌可能为正常携带，而细菌在肺通气功能异常病人的下呼吸道的可以发生单纯定植或感染，要证明培养结果与感染的相关性是医学微生物学所面临的难题，这也使得一直以来在对于痰培养的标准化进展十分缓慢，以至在各版《全国临床检验操作规程》上也未提出相应详细可行的令全国同行公认的统一规范的标准化操作程序（SOP）和完整的痰液培养的质量控制办法。
习惯程序的痰标本细菌学检验的缓慢也很不适应临床诊断治疗的迫切性。
故而，建立规范而快速的痰液细菌学检验的SOP对于提高呼吸系统感染病的诊治水平和控制抗生素的滥用等问题均有重要的作用痰培养阳性率普遍教低，临床符合率差的关键因素是痰标本采集不规范，不合格痰标本将直接导致病原菌被分离的机会降低，大量正常菌群也会抑制病原菌的生长或干扰病原菌的检出，降低了临床符合率；再有就是操作程序的不规范，不重视直接涂片，检验过程控制的不严密也是导致临床符合率低的重要原因。
我们通过SOP的临床应用情况的分析，痰培养阳性率和临床符合率均可能被提高，并且细菌分布统计结果显示本文与国外文献所报道的情况基本一致。
对于直接涂片的意义，在于判断标本中微生物有无、类型、染色特性、形态特征，标本的污染情况，还可对痰标本中可能的病原菌初步诊断(依据人体被病原菌感染后的炎性渗出包裹和白细胞吞噬反应)，判断是否存在复数菌感染，动态观察处于治疗过程中不同时期所送检的标本中病原菌情况的变化（如同种病原菌数量的增减，机体的免疫反应，菌群的交替）。
甚至可以推断临床治疗疗效和病人病情的变化和转归，医院内感染的发生等，具有重要意义。
为了满足高质量需求，对首代分离培养基应该进行严格的质量控制。
另外，对首代分离培养基的选用和搭配的合理化也需要进行探讨。
为了缩短鉴定时间，在细菌鉴定中可采用酶法鉴定：所谓酶法鉴定：国外八十年代中一些微生物学家在研究中发现由于细菌在生长分裂过程中细胞内集聚了大量的与物质代谢相关的各种酶类，可在短时间内释放到胞外（称胞外酶）可迅速分解相应底物。
故而，当在高灵敏微量生化反应培养基中加入大量浓厚的菌液时，则无须细菌繁殖就能在短时间内产生反应。
根据这一理论采用高灵敏微量生化反应单元与数值分类法相结合而成的酶法生化编码鉴定系统可对细菌进行快速鉴定（如API rapid 20E/NH 11n、Sensititre AP80、MicroScan Rapid Neg ID3、Vitek GNI+、RapID onE、超声波辅助快速酶法革兰阴性杆菌鉴定系统），鉴定时间可缩短至4~6小时。
但链球菌因为首代分离生长慢，菌落细小，不能收集充足菌量，暂不能采用酶法鉴定，其鉴定仍沿用常规生化反应鉴定或免疫学方法鉴定.2 标准化操作程序2.1标本接收筛选方案：目测：黄色、灰色、血性、铁锈色，浑浊、稠厚，呈现团块状的标本为合格标本；而无色透明、有灰白片状物或黑色小点，有明显食物渣滓、纸屑灰尘的为不合格标本。
显微镜下筛选：对经过目测筛选的标本，在洗涤前还须再经过显微镜下筛选：取约 0.1ml痰液（黄豆大小）用接种环均匀涂布成2×2cm2大小的涂膜，在显微镜下，凡脓细胞>25/LP且鳞状上皮<10/LP的标本为合格标本，可进入下一步程序；而脓细胞<10/LP但细菌数量>+++或鳞状上皮>25/LP的标本为不合格标本，应拒收。
2. 2标本预处理：[/align][align=left] 按《全国临床检验操作规程》（第2版）相关章节，采用先用20ml生理盐水洗涤两次，经过10ml生理盐水稀释后，加入1%的PH7.6的胰蛋白酶溶液消化90min后接种。
并同时在洗涤后制作原始痰涂片，进行染色镜检。
2. 3读片：根据人体对细菌/真菌感染在早期主要以非特异性免疫的细胞免疫为主的特点，结合呼吸系统生理病理特点，阐述痰液形成过程和排出过程，我们可以得知，在下呼吸道中感染中形成的炎性渗出、包裹物中存在与感染直接相关的病原菌，在自然排痰的过程中会被上呼吸道的正常菌群所污染，但污染菌位于炎性包裹物之外，且人体对正常菌群具有共生性保护因而不会产生吞噬现象，借此理论，我们将选择痰标本中脓细胞成团块状分布，集中而不稠密，且周围无鳞状上皮细胞或无大量成团状分布的细菌球的区域为读片区，认真收寻20~30个视野中脓细胞聚集处的脓细胞胞浆中有无吞噬的细菌及细菌的染色排列特征，菌体特征（如粗细、长短、扭曲）并作记录，将此作为确定病原菌的理论依据。
2.4标本的接种培养：一般情况接种BA、Choc（含万古霉素50mg/L）、麦康凯/MecK(即“分科琼脂”NBIIA)、CHROMagar，BA、Choc置5%CO2、35℃潮湿环境培养，麦康凯/MecK、CHROMagar置普通环境35℃培养；怀疑为军团菌的加种BCYE-а培养基，怀疑为百日咳的加种Boudet-Gengou培养基，怀疑为肺结核的加种罗-琼氏培养基或采用商品化专门的分枝杆菌培养基培养；怀疑为肺炎支原体感染的加种Hayflick双相培养基或采用免疫学及分子生物学方法检测，肺炎衣原体须用免疫学或分子生物学方法。
2.5读碟：（经过18~24h隔夜培养，但孪生球菌、营养缺陷链球菌以及分枝杆菌则需延长培养时间）2.5.1 G+菌：BA生长、Choc不生长、MecK不生长，——Gram染色：分G+co（革兰阳性球菌） ,G+ b（革兰阳性杆菌）2.5.1.1 G+co—依靠溶血特征，菌落形态、菌落颜色、菌体形态区分:葡萄球菌：淡黄色/白色，中等大小，较凸，规则圆形，β/γ溶血，较湿润，除金黄色葡萄球菌外，一般不具有临床意义；微球菌：黄色/白色/橙色，中等大小，较凸，规则圆形，不溶血，较干燥，不易乳化较葡萄球菌生长缓慢，该菌一般无临床意义；链球菌：白色/灰白色、凸起小菌落，β溶血为溶血型链球菌；灰白隆起中心扁平或凹陷，1.0-1.5mm大小的宽大а溶血为肺炎链球菌，该菌是最常见的肺部感染病原菌，在社区获得性感染中有重要的地位；细如针尖，白色凸起а溶血的为草绿色链球菌，自然咯痰标本中的草绿色链球菌一般不具有临床意义；肠球菌：灰白，低凸，2.0mm左右之а溶血菌落，较湿润，但一般不具有临床意义；口腔球菌：白色凸起较大菌落，不溶血，黏着，接种针挑之则整个菌落挑起，琼脂上不留痕迹。
该菌偶尔可引起肺部的严重感染，一般好发生于COPD病人和肺气肿病人；孪生球菌：白色、凸起细小菌落，β溶血，生长慢48h仅0.2~0.4mm，在含羊血的MH琼脂上不生长。
该菌是上呼吸道的正常菌群组成之一，一般不导致肺部感染；2.5.1.2 G+ b—依靠溶血特征，菌落形态、菌落大小、菌体形态区分：棒状杆菌：白色1.0-1.5mm左右大小，较干燥，不溶血/狭窄β溶血的为白喉或一般棒状杆菌；小而湿润，灰白/无色，半透明的为J-K棒状杆菌；灰白细小，β溶血的可能为假结核、化脓放线菌、溶血分泌杆菌；除白喉杆菌外，假结核、化脓放线菌、溶血分泌杆菌是罕见的咽喉部病源菌，棒状杆菌一般不导致肺部感染；乳杆菌：细小，白色凸起а溶血菌落，有特殊的酸臭味，口腔正常菌群，无临床意义；芽孢杆菌：灰白大菌落，表面粗糙如毛玻璃状、蜡状、边缘不规则，不同种类菌落形态差异巨大，宽大β溶血。
延长培养时间，菌落从湿润变得干燥，边缘呈放射状扩散，形成叶状、掌状、雪花状、齿轮状等，常常为痰培养的污染菌；BA生长、Choc生长、MecK不生长，——Gram染色：G+co平面球菌、藻球菌：血琼脂上为а溶血，0.5-1.0mm大小，在Choc上呈现金属色泽，无临床意义。
2.5.2 G-菌：根据形态分为G- b（革兰阴性杆菌）、G-co（革兰阴性球菌）、以及根据对特殊营养的需求对苛养性G- b进一步分类，常见的如嗜血杆菌，军团菌等：2.5.2.1 BA生长、Choc生长、MecK生长，——Gram染色：G- b—氧化酶、分科琼脂颜色肠杆菌：氧化酶（-），分科琼脂上黄色湿润大菌落；弧菌：氧化酶（+），分科琼脂上淡黄色扁平大菌落；非发酵菌：氧化酶（+/-），分科琼脂上蓝色/无色透明小菌落—鲍曼不动杆菌为中等大小，菌落聚集处产不扩散黄色色素，分离菌落为兰色；2.5.2.2 BA生长、Choc生长、MecK不生长，——Gram染色：G-co—氧化酶（+）、触酶（+）奈瑟菌：白色/黄色中等大小菌落，该类细菌为口腔常见正常菌群，该菌在痰培养中含量的高低反应了标本采集状态的合格程度，大量出现提示培养结果将是不可信的；卡他莫拉菌：白色小菌落（24h内），菌落有脆性，用接种环推之可移，是儿科和老年病人常见的下呼吸道病原菌；2.5.2.3 BA不生长/细小、Choc生长、MecK不生长，——Gram染色：G-b、菌体细小或呈扭曲之长丝状嗜血杆菌：灰色/无色，半透明，1.5-2.0mm的多为流感嗜血杆菌，该菌为最常见的肺部感染病原菌，可发生于各个年龄层次，其高携带与COPD发病有较强的相关性；灰色略黄，不透明，1.0-1.5mm的多为副流感嗜血杆菌。
一般副流感嗜血杆菌不导致肺部感染，大量出现提示培养结果将是不可信的；2.5.2.4 BA不生长、Choc不生长、MecK不生长、BCYE-а生长/或在含有L-半胱氨酸、铁离子、复合抗生素选择剂的强化血琼脂上生长—Gram染色：G-b、菌体细、长丝状提示可能为军团菌：该菌在BCYE-а上48~72 h为中等大小扁平菌落，灰白色，较粘着；该菌具有较强的生物危险性，其中嗜肺军团菌可传染；2.5.3真菌及奴卡菌：BA、Choc、分科琼脂、CHROMagar均生长—Gram染色形态、生长速度真菌：酵母样真菌，菌落中等大小，生长快，多数可在CHROMagar上显色；大多为口腔咽喉正常菌群，一般不导致肺部感染，但免疫缺陷、糖皮质激素、长期大剂量的抗生素使用可增加该类微生物机会感染的可能性；烟曲霉菌，丝状真菌菌落，35℃培养24~48h时菌落为白色泛绿，72h后菌落迅速转为褐色，中心粉末状背面为黄褐色如烟熏状，该菌为肺部最常见的条件致病菌，感染时患者症状重，预后非常差；奴卡菌：小菌落，生长慢，菌落皱褶，呈颗粒状，有时产生褐色、黄色、黑色等色素，该类细菌可导致肺脓肿，标本脓性，有硫磺颗粒者应高度怀疑该菌；2.5.4肺炎支原体：固体培养基上，低倍镜或解剖显微镜下为典型“荷包蛋”样菌落，在Hayflick双相培养基的液体中使培养基变黄，该类微生物是最常见的非典型性肺炎的病原体，在社区获得性感染中有着很高的比例。
