病理制片过程
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病理制片过程的几点体会标签:病理制片;脱水;浸蜡;包埋在病理技术领域中,HE染色是最常规和最基本的操作技术,一张优质的HE 切片,是病理诊断、教学和科研中一个不可缺少的环节。
病理制片技术是病理学的一项重要组成部分。
一位病理技术工作者,首先要求能懂得组织的石蜡包埋和HE染色的机制,熟练石蜡切片和HE染色技术的操作。
几十年来,病理技术有了较大的发展,新设备的问世使病理技术工作者大大减少了繁琐的手工操作,新技术的应用充实了病理诊断的方法,提高了诊断的准确性。
尽管如此,最常规、最基本、最重要的仍然是石蜡切片和HE染色,因为它的质量与病理诊断的准确性休息相关。
一张优质的HE染色切片,可以清晰地观察到各种不同的组织结构作为病理诊断上的确切依据。
制备一张优质的HE染色切片,绝非仅指染色,它包括很多方面:1 固定固定应及时。
采用10%的甲醛溶液固定组织,组织固定是制片的关键。
新鲜的组织经过适当的固定,才能保持细胞和组织的固有形态,否则,细胞内的各种酶在缺氧时将细胞内的蛋白质分解破坏,导致组织自溶。
因此,手术切除的组织标本一定要及时固定。
固定液的选择、固定液的量、组织块的大小、固定的时间及固定温度相当重要的。
Mallory曾经说过:“若是你能取到新鲜的组织能切片不超过2~3 mm的切块和记得固定液是10倍于组织块的总体积,你的诊断的正确性已得到了80%的保证。
”固定的作用可见一斑。
2 脱水脱水要彻底。
脱水常用乙醇,要由低浓度逐级至高浓度,逐步置换组织内水分。
一般组织内含有大量水分,所以在石蜡包埋前,必须脱去组织内的所有水分。
脱水剂的选择,经与水在任何比例下能混为一体,使组织内的水分逐步减少,脱水必须干净、彻底,组织脱水是关键,脱水不尽,影响以后的透明和浸蜡。
如脱水不尽的蜡块,切片后组织一经与空气接触,即干燥收缩,蜡块切面出现凹陷,甚至裂缝,切片时虽勉强切片,而染色时切片容易脱落。
保留的蜡块,遇到下次再切片时就会相当困難。
---------------------------------------------------------------最新资料推荐------------------------------------------------------组织病理切片的制作流程组织病理切片的制作流程 1.取材组织取材的方法是制作切片的一个重要程序,根据教学、科研及外检的具体要求取自人体(外科手术切除标本、活检标本、尸检标本)或动物,并确定取材的部位和方法。
取材者需要掌握解剖学、组织学、病理学的基本理论知识,还要掌握实际操作技术,每个组织器官的取材都有一定的部位和方法,不能任意切取组织作为制片材料,不然,无法达到教学、科研和临床诊断的目的,具体要求如下:(1) 材料新鲜:取材组织愈新鲜愈好,人体组织一般在离体后,动物组织在处死后迅速固定,以保证原有的形态学结构。
(2) 组织块的大小:所取组织块较理想的体积为 2. 0cm 2. 0cm 0. 3cm,以使固定液能迅速而均匀地渗入组织内部,但根据制片材料和目的不同,组织块的较理想体积也不同,如制作病理外检、科研切片,其组织块可以薄取 0. 1~0. 2cm 即可,这样可以缩短固定脱水透明的时间,若制作教学切片厚取 0. 3 ~0. 5cm,这样可以同一蜡块制作出较多的教学切片。
(3) 勿挤压组织块: 切取组织块用的刀剪要锋利,切割时不可来回锉动。
1/ 17夹取组织时切勿过紧,以免因挤压而使组织、细胞变形。
(4) 规范取材部位: 要准确地按解剖部位取材,病理标本取材按照各病变部位、性质的不同,根据要求规范化取材。
(5) 选好组织块的切面: 根据各器官的组织结构,决定其切面的走向。
纵切或横切往往是显示组织形态结构的关键,如长管状器官以横切为好。
(6) 保持材料的清洁: 组织块上如有血液、污物、粘液、食物、粪便等,可用水冲洗干净后再放入固定液中。
(7) 保持组织的原有形态: 新鲜组织固定后,或多或少会产生收缩现象,有时甚至完全变形。
病理科主要工作流程标本接收流程图负责人:接受标本(核对、编号、记录)立即退回并记录退回原因立即使用10%中性甲醛固定标本合格 送检单或标本不合格 标本放置在标本存放柜中送检单放置在取材记录台内 取材医师双核对无误,进行标本取材取材完毕与技师交接,双核对无误签字备案,组织进入处理流程制片完毕诊断医生验收签字,进入诊断流程相关临床科室纠正后,再次验收,合格后进入下步流程标本处理流程图技师与取材医生双核对无误,签字备案 进入液基细胞制片流程 检查组织处理机程序及时间标本合格 细胞学标本检查处理机内各液体数量及浓度检查处理机各试剂缸是否安装到位装入待处理组织块启动处理机制片完毕交诊断医生验收签字备案组织病理检查与快速病理诊断工作流程组织病理检查包括病灶局部穿刺、咬取、切取活检和手术切除标本,通过活检为临床提供定性诊断。
活检组织从患者病灶处取下后,到获得最后病理诊断结果过程中,主要工作流程如下:病灶处取下组织标本↓临床医师详细填写病理诊断申请单(包括病史、体征、术中所见、其它辅助检查结果、申请要求等)↓临床支持中心送达病理科↓病理标本的接收与确认(送检人与接收人核对签字备案)↓病理医师取下检测组织块(取材医生与技术人员核对签字备案)↓组织固定、脱水、透明、浸蜡、包埋↓石蜡组织切片、染色(病理医生与技术人员核对签字备案)↓病理医师阅片,分析病变特征,确定诊断结果↓采集病理改变特征性图象,描述病变特征,填写病理诊断报告↓上级病理医师审核病理报告后签发↓(病理收发人员与临床人员核对签字备案)免疫组织化学(免疫组化)检查流程病理诊断医师详细填写免疫组化工作单(包括病理号、组织块号码、检查项目、检查要求等)↓免疫组化工作单的接收与确认(送检人与接收人核对签字备案)↓技术人员准备组织块(再次核对检查项目,实验者填写工作记录单)↓组织切片、染色(病理医生与技术人员核对签字备案)↓病理医师阅片,记录免疫组化实验质量,如有问题填写改进意见,交免疫组化实验室↓免疫组化实验技术人员与诊断医生讨论,提出改进措施↓↓(免疫组化实验人员与诊断医生核对签字备案)(免疫组化检测的主要目的有两个方面:①确定肿瘤的组织发生和肿瘤分型:主要用于一些疑难疾病的确认,如胃肠道平滑肌瘤与间质瘤、神经鞘膜细胞瘤、间皮瘤的鉴别,恶性淋巴瘤的组织学分型。
病理组织切片制作技术病理组织切片制作技术病理组织切片常用的制作方法有三种。
即石蜡切片法,冰冻切片法和火棉胶切片法。
以石蜡切片法为代表,切片的基本制作过程是:组织取材→固定→冲洗→脱水→透明→浸蜡→组织包埋→组织切片→展片附贴→切片脱蜡→染色→脱水→染片透明→封固。
以上基本过程是互相联系的,任何一环节出现问题,都将使整个切片制作归于失败。
因此应细致、耐心、认真负责,并事先做好计划安排。
一、取材采取病料,要刀剪锐利,剪切时不可挤压,扯拉病料,以防人为损伤。
切取的工具要清洁。
采取病料越新鲜越好,一般不超过死后24小时。
应选择病变部与可疑病变部切取,切取时要由表及里,有浅入深并包括周围正常组织一部分。
特殊病料应根据器官的结构特点切取。
管状,囊状和皮肤组织应注意垂直切取(横切)。
带有薄膜的组织,要防止切时薄膜分离和脱落。
切取组织块大小,以1.5×1.5×0.3厘米为宜,最厚不宜超过0.5厘米。
组织块病变一面应平整光滑,另一面可不平整,以便包埋时辨认。
切取后,放入事先准备好的装有固定液的磨口玻璃广口瓶中,并做好标记。
二、固定固定的目的是迅速将组织细胞杀死,使细胞中的蛋白质,糖,脂肪等凝固,从而保持与活组织相似的结构状态。
材料取下后,应迅速固定。
固定液数量应为病理组织块的5到20倍。
由于一般把组织块浸入固定液后数小时,固定液渗入组织液的深度只达2到3厘米。
因此,可以放置冰箱内固定,使组织内酶失去作用,细菌也能停止滋生。
最常用的固定液是10%的福尔马林溶液:使用时,用40%的甲醛饱和水溶液10毫升,加水90毫升配成。
三、冲洗固定后的组织块,应将固定液洗去。
一般均用流水(自来水)冲洗12到24小时左右。
及时冲洗尚有停止固定的作用,防止固定过度,有利于制片染色。
冲洗时如不方便用流水冲洗,也可用较大容器盛装水浸洗,每隔相当时间换水一次。
整个浸洗时间比流水冲洗应稍长一些。
酒精固定的组织材料不需冲洗。
病理科标本从接收到发放报告的主要流程下载温馨提示:该文档是我店铺精心编制而成,希望大家下载以后,能够帮助大家解决实际的问题。
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病理科主要工作流程标本接收流程图负责人:标本处理流程图组织病理检查与快速病理诊断工作流程组织病理检查包括病灶局部穿刺、咬取、切取活检和手术切除标本,通过活检为临床提供定性诊断。
活检组织从患者病灶处取下后,到获得最后病理诊断结果过程中,主要工作流程如下:病灶处取下组织标本↓临床医师详细填写病理诊断申请单(包括病史、体征、术中所见、其它辅助检查结果、申请要求等)↓临床支持中心送达病理科↓病理标本的接收与确认(送检人与接收人核对签字备案)↓病理医师取下检测组织块(取材医生与技术人员核对签字备案)↓组织固定、脱水、透明、浸蜡、包埋↓石蜡组织切片、染色(病理医生与技术人员核对签字备案)↓病理医师阅片,分析病变特征,确定诊断结果↓采集病理改变特征性图象,描述病变特征,填写病理诊断报告↓上级病理医师审核病理报告后签发↓(病理收发人员与临床人员核对签字备案)免疫组织化学(免疫组化)检查流程病理诊断医师详细填写免疫组化工作单(包括病理号、组织块号码、检查项目、检查要求等)↓免疫组化工作单的接收与确认(送检人与接收人核对签字备案)↓技术人员准备组织块(再次核对检查项目,实验者填写工作记录单)↓组织切片、染色(病理医生与技术人员核对签字备案)↓病理医师阅片,记录免疫组化实验质量,如有问题填写改进意见,交免疫组化实验室↓免疫组化实验技术人员与诊断医生讨论,提出改进措施↓↓(免疫组化实验人员与诊断医生核对签字备案)(免疫组化检测的主要目的有两个方面:①确定肿瘤的组织发生和肿瘤分型:主要用于一些疑难疾病的确认,如胃肠道平滑肌瘤与间质瘤、神经鞘膜细胞瘤、间皮瘤的鉴别,恶性淋巴瘤的组织学分型。
②肿瘤预后评估与治疗方案相关免疫组化检测:免疫组化检查可用于疾病的预后评估、治疗方案的选择、可能出现的肿瘤耐药基因,如P53、Ki-67检测评价恶性肿瘤的预后,PR、ER、Her-2、VEGF检测选择治疗方案,gp100、GST-π检查是否表达肿瘤耐药基因。
病理制片技术——常用特殊染色一、六胺银染色1.第一步准备工作:配制六胺银染液,将10%硝酸银2.5ml倒入干净的染色缸内,加入2%硼砂5ml,液体呈乳白色,再加入3%乌洛托品40ml,染液逐渐呈透明状。
2.第二步染色过程:事先把温箱调至60℃备用,切片经脱蜡至水,用1%过碘酸氧化10 min,水洗,然后切片放人六胺银染液放置60℃温箱1 h,染真菌时间要相对短一些,一般情况下肉眼看到染液变色,切片呈棕色时从温箱取出染色缸,倒掉染液,自来水冲洗1min,用0.25%氯化金调色1 min,水洗后,用3%硫代硫酸钠染5min,水洗,用苏木精染液浅染,水洗、分化、冲水返蓝,伊红染10 s,最后经脱水、透明、封固。
3.图示结果:基底膜与毛细血管间质性物质、真菌呈棕黑色,核呈蓝色。
4.注葸事项(1)掌握染色温度和时间,如60℃染1 h,80℃染30~40 min。
(2)真菌类染色时间相对要短,染色时间过长,切片染色过深,可用分色剂处理。
二、黏液卡红染色1.第一步准备工作:配制黏卡染液,将称好的胭脂1 g、氢氧化铝1 g倒入瓶内,加入5 0%L醇100 rnl混合摇匀,再加入氯化铝0.5g,水浴加温逐渐煮沸并搅动液体,使其充分溶解(注意染液容易外溅),数分钟后,染液由红色变成透明深紫红色,冷却后将液体倒入量筒,再加入50%乙醇至原量,过滤,放人冰箱备用。
2.第二步染色方法:染液使用时原液与蒸馏水比例为1:4稀释.切片厚5 um,脱蜡至水,经苏木精染色2 min、水洗、分化、返蓝后进人黏卡液染色2 h以上,染液可以重复使用多次,但要适当延长染色时间.切片水洗后,脱水、透明、封固。
3.图示结果:黏液为红色,胞核为蓝色.4.注意事项(1)染液使用时比例为1份黏卡原液,4份蒸馏水。
(2)用酶消化对照染色特异性很大,消化时间为20 min。
(3)配制黏卡染液时要防止液体溅出。
三、石碳酸品红染色1.第一步准备工作(1)配制盐基性品红饱和液:盐基性品红溶于乙醇内。
甲状腺穿刺细胞学液基制片流程甲状腺穿刺细胞学液基制片是一种常见的病理学检查方法,可用于评估甲状腺细胞的形态学特征和诊断甲状腺疾病。
以下是制片流程的详细描述:1.患者进入手术室,取患者的甲状腺穿刺液样本。
The patient enters the operating room, and a sample of thyroid aspiration fluid is taken from the patient.2.将甲状腺穿刺液样本倒入培养皿中。
Pour the thyroid aspiration fluid sample into a culture dish.3.加入液基固定液,使细胞固定在载玻片上。
Add liquid-based fixative to immobilize the cells on a glass slide.4.载玻片放置在离心机中,进行离心处理。
Place the glass slide in a centrifuge for centrifugation.5.注射已离心的细胞沉淀,形成细胞颗粒在载玻片上。
Inject the centrifuged cellular sediment, formingcellular particles on the glass slide.6.将载玻片在特定的温度和湿度条件下干燥。
Dry the glass slide under specific temperature and humidity conditions.7.用甲状腺穿刺细胞蘸液染色,增强形态学特征的观察。
Stain the thyroid aspiration cells with a dye to enhance observation of morphological characteristics.8.在显微镜下观察载玻片,注意细胞的形态学特征。
Observe the glass slide under a microscope, paying attention to the morphological characteristics of the cells.9.检查细胞的大小、形状、核仁及细胞浆等细胞学指标。
苏木素-伊红染色(HE)切片制作HE制片是病理实验室最基本的方法,是各种制片技术最基础的部分。
它包括组织固定、脱水、透明、包埋、切片、漂片、烤片、脱蜡、染色、脱水、透明和封固等程序。
HE染色是既基本又是十分重要的工作。
HE染色的好坏直接影响病理医生的正确诊断,而HE染色质量好坏与HE制片的每一步骤关系都十分密切。
任一步骤出问题都会直接影响最终的染色结果。
现将方法介绍如下:(一)组织处理(全封闭自动组织脱水机处理程序):(1)福尔马林Ⅰ:30min(2)福尔马林Ⅱ:30min(3)70%乙醇:30min(4)85%乙醇:30min(5)95%乙醇:1h(6)95%乙醇:1h(7)无水乙醇Ⅰ:1.5h(8)无水乙醇Ⅱ:1.5h(9)二甲苯Ⅰ:30min(10)二甲苯Ⅱ:45min(11)石蜡Ⅰ:30min(12)石蜡Ⅱ:30min(13)石蜡Ⅲ:1h(14)石蜡Ⅳ:1h程序中除二甲苯外余试剂处理中均加温至37摄氏度并加压。
石蜡选用熔点为58摄氏度的硬蜡。
组织包埋:包埋时将60℃的石蜡倒入纸盒内,然后用小镊子将各组织块按一定的顺序排列好,使切面朝下。
(二)切片切片厚约4~8μm,通常厚约4μm,细胞小而密的组织如淋巴结,可以切3μm,而细胞疏的组织,如脑组织可切5-8μm。
将切片在45℃左右水浴中展开,展开程度以组织完全摊平为准。
切片至65-75℃烘箱中烤片10min,一般时间越长效果越好,以切片紧贴于载玻片上呈半透明状为佳。
常规组织块捞片1-2张,胃肠镜小组织以3×3排列共捞9个。
(三)染色步骤:(1)环保液脱蜡5min(2)环保液脱蜡5min(3)无水乙醇2min(4)95%乙醇2min(5)85%乙醇2min(6)流水冲洗切片10min(7)抖干切片水分入苏木素10min(8)流水稍洗(9)2%盐酸乙醇分化10-30秒,根据组织不同选择不同的分化时间(10)流水返蓝15min或稀氨水返蓝30秒(11)流水稍洗(12)入伊红20-60秒(13)流水稍洗(14)75%乙醇脱水兼分色数秒(15)85%乙醇脱水兼分色数秒(16)95%乙醇脱水5min(17)无水乙醇脱水5min(18)无水乙醇脱水5min(19)等量乙醇环保液脱水5min(20)环保液二甲苯3min(21)环保液二甲苯5min(22)中性树胶封片(四)对HE切片的质量要求:(1)切片完整、贴片恰当;(2)切片较薄和均匀;(3)无皱折;(4)无刀痕;(5)染色清晰、核浆分明、透明度好;(6)无固缩、龟裂、污染;(7)封胶适当、玻片清洁;(8)标签号码清楚,字体端正。
组织病理切⽚制作流程(完整版)组织病理切⽚的制作流程1.取材组织取材的⽅法是制作切⽚的⼀个重要程序,根据教学、科研及外检的具体要求取⾃⼈体(外科⼿术切除标本、活检标本、⼫检标本)或动物,并确定取材的部位和⽅法。
取材者需要掌握解剖学、组织学、病理学的基本理论知识,还要掌握实际操作技术,每个组织器官的取材都有⼀定的部位和⽅法,不能任意切取组织作为制⽚材料,不然,⽆法达到教学、科研和临床诊断的⽬的,具体要求如下:(1) 材料新鲜:取材组织愈新鲜愈好,⼈体组织⼀般在离体后,动物组织在处死后迅速固定,以保证原有的形态学结构。
⑵组织块的⼤⼩:所取组织块较理想的体积为2.0cm X 2.0cm X 0.3cm,以使固定液能迅速⽽均匀地渗⼊组织内部,但根据制⽚材料和⽬的不同,组织块的较理想体积也不同,如制作病理外检、科研切⽚,其组织块可以薄取0.1?0.2cm即可,这样可以缩短固定脱⽔透明的时间,若制作教学切⽚厚取0.3?0.5cm,这样可以同⼀蜡块制作出较多的教学切⽚。
(3) 勿挤压组织块: 切取组织块⽤的⼑剪要锋利,切割时不可来回锉动。
夹取组织时切勿过紧,以免因挤压⽽使组织、细胞变形。
(4) 规范取材部位: 要准确地按解剖部位取材,病理标本取材按照各病变部位、性质的不同,根据要求规范化取材。
(5) 选好组织块的切⾯: 根据各器官的组织结构,决定其切⾯的⾛向。
纵切或横切往往是显⽰组织形态结构的关键,如长管状器官以横切为好。
(6) 保持材料的清洁: 组织块上如有⾎液、污物、粘液、⾷物、粪便等,可⽤⽔冲洗⼲净后再放⼊固定液中。
(7) 保持组织的原有形态: 新鲜组织固定后,或多或少会产⽣收缩现象,有时甚⾄完全变形。
为此可将组织展平,以尽可能维持原形。
2.固定(1) ⼩块组织固定法:这是最常⽤的⽅法,从⼈体或动物体取下的⼩块组织,须⽴即置⼊液态固定剂中进⾏固定,通常,标本与固定液的⽐例为1:4?20,但组织块不宜过⼤过厚,否则固定液不能迅速渗透。
组织病理切片的制作流程1.取材组织取材的方法是制作切片的一个重要程序,根据教学、科研及外检的具体要求取自人体(外科手术切除标本、活检标本、尸检标本)或动物,并确定取材的部位和方法。
取材者需要掌握解剖学、组织学、病理学的基本理论知识,还要掌握实际操作技术,每个组织器官的取材都有一定的部位和方法,不能任意切取组织作为制片材料,不然,无法达到教学、科研和临床诊断的目的,具体要求如下:(1)材料新鲜:取材组织愈新鲜愈好,人体组织一般在离体后,动物组织在处死后迅速固定,以保证原有的形态学结构。
(2)组织块的大小:所取组织块较理想的体积为2.0cm×2.0cm×0.3cm,以使固定液能迅速而均匀地渗入组织内部,但根据制片材料和目的不同,组织块的较理想体积也不同,如制作病理外检、科研切片,其组织块可以薄取0.1~0.2cm即可,这样可以缩短固定脱水透明的时间,若制作教学切片厚取0.3 ~0.5cm,这样可以同一蜡块制作出较多的教学切片。
(3)勿挤压组织块: 切取组织块用的刀剪要锋利,切割时不可来回锉动。
夹取组织时切勿过紧,以免因挤压而使组织、细胞变形。
(4)规范取材部位: 要准确地按解剖部位取材,病理标本取材按照各病变部位、性质的不同,根据要求规范化取材。
(5)选好组织块的切面:根据各器官的组织结构,决定其切面的走向。
纵切或横切往往是显示组织形态结构的关键,如长管状器官以横切为好。
(6)保持材料的清洁:组织块上如有血液、污物、粘液、食物、粪便等,可用水冲洗干净后再放入固定液中。
(7)保持组织的原有形态:新鲜组织固定后,或多或少会产生收缩现象,有时甚至完全变形。
为此可将组织展平,以尽可能维持原形。
2.固定(1)小块组织固定法:这是最常用的方法,从人体或动物体取下的小块组织,须立即置入液态固定剂中进行固定,通常,标本与固定液的比例为1:4~20,但组织块不宜过大过厚,否则固定液不能迅速渗透。
故取组织块的大小一般为2.0cm×2.0cm×0.3cm。
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组织病理切片的制作流程1.取材组织取材的方法是制作切片的一个重要程序,根据教学、科研及外检的具体要求取自人体(外科手术切除标本、活检标本、尸检标本)或动物,并确定取材的部位和方法。
取材者需要掌握解剖学、组织学、病理学的基本理论知识,还要掌握实际操作技术,每个组织器官的取材都有一定的部位和方法,不能任意切取组织作为制片材料,不然,无法达到教学、科研和临床诊断的目的,具体要求如下:(1) 材料新鲜:取材组织愈新鲜愈好,人体组织一般在离体后,动物组织在处死后迅速固定,以保证原有的形态学结构。
⑵组织块的大小:所取组织块较理想的体积为2.0cm X 2.0cm X 0.3cm,以使固定液能迅速而均匀地渗入组织内部,但根据制片材料和目的不同,组织块的较理想体积也不同,如制作病理外检、科研切片,其组织块可以薄取0.1〜0.2cm即可,这样可以缩短固定脱水透明的时间,若制作教学切片厚取0.3〜0.5cm,这样可以同一蜡块制作出较多的教学切片。
(3) 勿挤压组织块: 切取组织块用的刀剪要锋利,切割时不可来回锉动。
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(4) 规范取材部位: 要准确地按解剖部位取材,病理标本取材按照各病变部位、性质的不同,根据要求规范化取材。
(5) 选好组织块的切面: 根据各器官的组织结构,决定其切面的走向。
纵切或横切往往是显示组织形态结构的关键,如长管状器官以横切为好。
(6) 保持材料的清洁: 组织块上如有血液、污物、粘液、食物、粪便等,可用水冲洗干净后再放入固定液中。
(7) 保持组织的原有形态: 新鲜组织固定后,或多或少会产生收缩现象,有时甚至完全变形。
为此可将组织展平,以尽可能维持原形。
2.固定(1) 小块组织固定法:这是最常用的方法,从人体或动物体取下的小块组织,须立即置入液态固定剂中进行固定,通常,标本与固定液的比例为1:4〜20,但组织块不宜过大过厚,否则固定液不能迅速渗透。
病理制片过程? ? 在临床病理科和组织学实验室,切片是最重要的技术之一。
切片的质量不好,就无法对标本进行观察。
好的切片机只是整个样品制备过程中的一个环节。
要制备一张好的切片,必须要将技术、知识和技巧进行完美的结合。
如果固定不充分,样品的质量就会有欠缺。
组织必须在选定的固定剂中浸泡足够长的时间,使大分子保持固有形态。
正确的固定可以防止样品在脱水剂中发生变性以及后期处理步骤对于样品造成的损害。
固定不充分可能增加切片的困难,表现出过度收缩,并且会导致细胞核染色不足和/或胞核呈现“泡沫”状。
1.2巨检? ? 样品需要修切成薄片,并尽可能做到均匀,否则很难在切片机上切出好的片子。
如果样品太厚以至于无法渗透充分,则必须经过再次处理才能进行切片。
这样会影响样品的质量,更浪费时间。
从最初的步骤开始就正确处理会使后面的工作更简单,因此在大体取材的时候多花些功夫会为以后的步骤节省大量时间和精力。
备注:包埋盒塞满组织且组织过厚就无法很好的固定,后续的处理步骤也会效果欠佳。
1.3脱钙? ? 为了后期进行石蜡包埋切片,骨组织需要进行脱钙,钙必须被完全去除才能确保切片的完整,并且可以防止刀具的损坏。
在用酸溶液进行脱钙之前,骨组织必须经过彻底的固定,这样其中的软组织成分才能够被保护,且防止细胞核在酸的作用下被破坏,比如蛋白质水解作用。
处理步骤:(一)脱水:脱水的关键就是将样品置于脱水试剂中足够长的时间,其中的游离水分子被除去,但是脱水时间也不宜过长,否则结合水分子也会被除去,会导致结构的变化。
而脱水时间过短致使水分还残留在样品中,就会导致包埋介质无法很好渗透入样品。
但是,脱水过度会导致样品的皱缩变脆。
从过度脱水的组织块上切到的切片,一旦放入水中,切片就会膨胀最后破碎。
如果将整个组织块浸入水中,则组织的表面会因为水化而膨胀,这样再进行切片,虽然片子的性状会有所改善,但是形态学会发生改变,而且染色后会发生色彩偏淡,对比度较弱。
最常用的脱水剂是乙醇和变性酒精。
甲基酒精有毒性,会破坏肝脏中的甲醛,因此不太单独使用。
异丙醇是乙醇最佳替代物,常规在微波处理中使用。
丁醇,剧毒,适用于较慢的组织处理过程,,而且多用在植物和动物组织。
无水酒精往往会含有水分,因此最好能检测一下试剂的纯度。
可以用液体比重计来测定,也可以将几毫升酒精滴入几毫升二甲苯或甲苯,如果混合液出现混浊就表示酒精中至少含有2%的水分。
(二)透明:石蜡是石油裂解物的提取物,属于惰性的碳氢化合物的混合物。
在脱水机中使用石蜡,温度最好设定在熔点以上2°-4°,在最后一步石蜡渗透完成后,脱水缸必须用透明剂彻底清洗,不能有任何石蜡的残留。
负压可以增强渗透的效果,但是在处理活检样本的时候,负压和加热都必须慎用。
另外还需要注意,即便有些脱水机增加到了4个蜡缸,总的渗透时间不能延长。
在确保渗透效果的基础上,组织在石蜡中停留的时间越短越好。
1.5石蜡包埋包埋是将正确定位的组织包裹在一种介质中(此处以石蜡为例)然后固化。
每个实验室都会创建一套特有的处理方法,这就决定了样品在处理后的硬度。
用来包埋的石蜡必须能够和样品的硬度相匹配,这样才能确保进行切片的蜡块质地尽可能均匀。
另外有两点对于切片也至关重要:温度和样品的定位。
组织包埋机已被广泛使用,机器最大的优点就是能够在每个步骤上都达到确的温控。
石蜡熔化并保持熔化状态的这个温度非常重要,必须确保一些添加剂完全溶解入石蜡。
模具,样品和石蜡之间的温和以往的观点相反,将石蜡设定在高温(大约85°C)持续数星期,反而是无害的。
尽管石蜡中添加了稳定剂,在氧化作用下,石蜡仍然会变质。
最初的征兆就是颜色转变为草黄色直到黄色。
随后可能有异味产生。
选择尺寸恰当的模具,确保样品的四周都被石蜡包围,样品置于中心。
用压平装置或者弯头镊子的背部轻柔地将样品展平(易碎样品可能会被压碎)。
不要让样品在模具中撑太满。
大或硬的样品必须按照一定角度放置在模具中。
如果同一个样品包含多种不同密度的成分,则包埋的时候要确保样品最硬的部分必须最后接触到锋利的刀刃。
皮肤往往带有毛发,则包埋的时候必须保证毛发最后才被切到。
动物样本中,如果组织的来源不同但是切片的性状相似则可以包埋在同一个塑料-增加硬度,对硬组织起到很好的支撑作用,得到更薄的切片DMSO(二甲基亚砜)-增强渗透(警告!-腐蚀性)1.5.3熔点和凝固点:绝大多数用于组织学的石蜡是多种石蜡的混合物,这样可以确保的硬度和指定的凝固点。
“凝固点”是制造商使用的术语,其实相当于“ 熔点”。
这个温度是指在石蜡中插入小木棒后,石蜡开始在木棒上凝固的那个温度。
凝固点和熔点温度往往是同一个温度或者在两个温度之间。
市售石蜡的特性往往根据其添加物和熔点的不同而有一定差异。
56°C 到58°C这个范围被常规实验室中普遍应用。
较低熔点的石蜡(50°C 到53°C)往往有其特殊的应用。
一般情况,低熔点的石蜡往往比较柔软,因此更适合包埋较软的组织。
进行较薄的切片比较困难,但是很容易连片。
(可以选购质地较硬但是熔点较低的埋的一批组织块不需要对表面进行调节或仅需要很小的调节。
环行模具也偶尔会用到,其中必须充填足够的包埋剂,而且不能夹持太紧。
圆形的支撑物经常在塑料包埋时使用。
木块:这是廉价的包埋盒替代物。
尽可能使用硬质木材(避免使用松软的松木)并进行切割以适合夹具的形状。
木块的表面可以开槽,从而增加黏附力。
注意:木制的支撑物在水中浸泡后会膨胀,导致在样品夹上固定效果欠佳。
金属:金属支撑物在塑料包埋时使用较多。
金属支撑物可以重复使用,但是相对比较贵,在使用时需要进行X/Y向的定位调节。
而且调节这个平面有一定的难度。
如果组织块附着恰当,这种夹具的稳定性非常好。
使用切片机必须遵从最佳的工作秩序,无论使用钢刀还是一次性刀片,切缘2.2切片机常见的功能回缩功能:无回缩功能:没有回缩功能的切片机,当样品头下降的时候,组织块就经过刀锋,随后沿同一平面上返回到起始位置,然后样品头按照指定的厚度前进重复下进行下一个动作。
有回缩功能:带回缩功能的切片机,当样品头向下移动时和无回缩切片机的动作完全一样,但是在样品头上升时,样品头会离开原来的平面,朝刀刃的反向移动,从而防止样品表面和刀锋接触。
这个功能有很大的好处,因为首先可以延长刀的使用寿命,还可以减少样品表面可能的摩擦(从而降低热膨胀),并且防止碎屑积聚在的刀刃背面并确保切片的一致性。
安全功能:手轮锁:切片机一般都配备手轮锁,可以将手轮锁定于任意位置,防止机器闲置期间意外触及手轮,导致人员意外伤害样或品头撞击刀具。
更人性化的切片机往往还配备第二手轮锁,手轮把手只能被锁定于最高点,便于在切片过程中随时更换样品或刀具。
刀架护刀器:无论钢刀刀架还是一次性刀片架,都应当配有牢固的护刀器,在更换样品观察,斜边笔直,不会出现锥形。
斜边上出现锥形会使刀刃发生弯曲,导致刀刃只在某个点上贴近蜡块,而其余部分相对远离。
所以减小斜面很重要,否则刀刃更多的区域就需要进行打磨以避免刀对样品的刮擦。
刀刃上的擦痕显然会影响切片的质量。
放大100倍对刀刃进行观察,应该看到一道很细的反光,呈笔直、不间断的明亮的细线。
不理想的刀刃看上去是不规则并有中断的线条。
刀的角度:刀刃上用来进行切片的区域是由两个相交的平面组成,叫做切面。
在这两个平面之间形成的夹角叫做斜角,(通常27°-3 2°),这个角度通常大于楔角(通常15°-18°)在切片机上进行角度的调节:当刀安装到切片机的刀架上时,必须呈一定角度,这样才能在刀刃接触组织平面的那个小平面和组织块平面之间形成一个间隙。
这个角度就是间隙角。
在切片机上都一个数字刻度表示间隙角的大小,这个读数在不同的切片机上可能会有差别。
更换了不同的切片刀后,这个数值可能需要调节。
寻找合适角度的方法,最好采取试错法。
刀片的宽度同样会影响到间隙角。
经过多次磨刀后,刀的宽度会变窄,为了和样品有一个正确的切入点,刀必须被抬高。
刀架必须经过调节,这样被磨过(变窄)的刀的刀锋必须处在和新(宽的)的刀锋一样高低的位置。
不同的剖面:在一次性刀片,采用优质的不锈钢,由于其便利性和经济性,在绝大多数实验室里作为重复使用型刀的替代品。
大多数的切片机都带有集成的刀片刀架,但是一次性刀片也可以插入安装在标准钢刀刀架上的刀片夹内使用。
宽型和窄型刀片:一次性刀片通常区分为宽型和窄型,这就表明了刀的宽度。
大多数窄型刀宽度为1/4英寸(约6mm),厚度为0.010英寸(约0 .23mm);也有制造商采用厚度为0.012英寸(约0.27mm)的规格。
宽型刀大约宽度为1/2英寸(约11.4mm),常规的刀片厚度通常在0.012英寸(约0.27mm),重力刀片(硬组织切片专用)厚度可达0.033英寸(约0.75mm)。
实际的尺寸可能因为不同的制造商会有很大的差别,其中可能有些刀片在宽度和厚度上无法适应刀架。
请确保刀片和刀架之间兼容性。
无涂层vs.带涂层:一次性刀片的表面可以带有很薄的镀层或涂层。
不同制造商可能采用不同的涂层,但是几乎所有的涂层中都会含有聚四氟乙烯(PTFE )类聚合物中的一种,这是一种类似Teflon的环保型涂层。
涂层的好处在于可以防止刀刃氧化,延长刀片的使用寿命并且可以降低摩擦力从而减少切片压力。
但是如果涂层过厚也会有坏处,最初的几张切片可能卷曲或者打卷,给人造成刀片“过于锋利”的感觉。
当刀片切过数张片子后,涂层被磨去部分,则卷曲的现象会有所改善。
在一些物体的表面摩擦刀片这种方法不是很值而压板的作用是将一次性刀片固定在恰当的位置,因此压力板必须保持清洁,也不能有任何损坏。
如果在压板表面有明显可见的弧度,而这部分又会和刀片接触,并导致刀片发生弯曲。
因此刀刃会以一种不正常的方式接触阻止块的表面。
同样,刀片上的碎屑也会导致同样的效果。
刀夹的夹力:作用在刀片上的压力必须均匀分布在刀片被覆盖的全部长度。
力度必须足够大以确保刀片的稳定,防止任何可能的振动。
但是也不能夹持过紧,否则会导致刀片弯曲而切出不规则的切片。
为了达到这种微妙的平衡,需要在反复实践中提高技巧。
3.正确的切片技术:3.1人体工程学和因工造成的肌肉骨骼损伤:工作习惯合并日常生活方式很可能导致职业相关的肌肉骨骼损伤,比如腕管综合症,肌腱炎和腱鞘炎。
不恰当使用切片机完全可以造成潜在的伤害。
在这里,我们会介绍一些实用的小诀窍:a.添置一把符合人体工程学的座椅。
调节座椅高度,保证手可以轻松够到手轮,且不占用搁置腿脚的空间。
如果脚不能踏到地板,请使用脚凳。
b.将水浴缸放置在切片机区域旁L型的延伸段,这样只需要稍微转动身体和椅子就可以够到水浴缸,不必频繁倾斜身体。