失血性休克及抢救实验分析报告

\失血性休克的实验治疗一、实验目的1.观察家兔失血性休克对机体的机能变化及微循环变化2.探讨不同治疗方案对失血性休克的作用及机制二、实验原理1.失血性休克的原理：微循环障碍致微循环动脉血灌流不足，重要的生命器官因缺氧而发生功能和代谢障碍，是各型休克的共同规律。

休克时微循环的变化大致可分为以下三期，即微循环缺氧期、微循环淤血期和微循环凝血期。

（1）正常情况：①动静脉吻合支是关闭的②只有20%毛细血管轮流开放，有血液灌流③毛细血管开放与关闭受毛细血管前括约肌的收缩和舒张调节；（2）微循环缺氧期：①交感神经兴奋和肾上腺素、去甲肾上腺素分泌增多，小动脉，微动脉，后微动脉，毛细血管前括约肌收缩②动静脉吻合支开放③毛细血管血液灌流不足；（3）微循环淤血期①进入毛细血管的血液仍很少②毛细血管开放，血管床容积扩大，进入毛细血管内的血液流动很慢③毛细血管扩张淤血；（4）微循环凝血期①血管内淤血②广泛血栓形成。

2.阿拉明和多巴胺治疗失血性休克原理：阿拉明是α受体激动剂，具有明显的收缩血管作用。

小计量的多巴胺能够扩血管。

三、实验仪器设备大动物手术器械，输血输液装置，呼吸血压描记装置，气管插管，动脉插管，静脉插管，注射器若干，生理盐水，肝素，多巴胺及阿拉明。

四、实验方法与步骤1．动物称重与固定：将麻醉好的兔子称重后，仰卧位固定于动物手术台上。

2．备皮：剪去颈部、腹股沟手术部位的毛。

3．颈部手术：①行气管插管并连接呼吸换能器，记录呼吸；②行颈总动脉插管并连接压力换能器，记录动脉血压；③行颈外静脉插管并连接输液装置，输液用。

4．股部手术：于右侧腹股沟动脉搏动明显处沿动脉走向切开皮肤4—5cm，分离股动脉，夹上动脉夹。

5．观察与记录实验过程中动态观察记录的指标包括：一般情况，皮肤黏膜颜色、血压、心率和呼吸。

（1）放血前：手术完毕，观察与记录上述指标作为实验作为对照。

在颈静脉注射肝素，1ml/kg；（2）放血造成休克：①松开股动脉夹，用注射器抽血并观察血压变化，直至血压维持在平均45mmHg，并维持15min②测量放血量；（3）抢救：根据放血量取等量生理盐水注射，注射完后再注射生理盐水15ml+0.5ml/kg阿拉明，注射完后即为抢救即刻，记录上述指标。

家兔失血性休克及其抢救实验报告
实验一：家兔失血性休克模型的建立
实验目的：本实验旨在建立家兔失血性休克模型，以便探究该病情的发生机制及抢救
措施。

实验材料和方法：本次实验材料均来自成年雄性家兔，共有15只，体质量均为2.5
kg左右，每只家兔体内取得150 ml鲜血，并以此构建失血休克模型，放置于恒温器中保
持恒温，监测家兔体温、血氧饱和度、心率等生理指标。

实验结果：按照实验设定，放血完毕后，家兔的体表温比刚开始实验时期降低了 1.2℃以上，血氧饱和度下降到80-90%以下，而心率却急剧上升到160-170次/分钟之外，家兔
还出现了瘙痒、抽搐、呕吐等典型症状，明显发现其已经进入失血性休克状态。

结论：本实验成功建立了家兔失血性休克模型，可供今后失血性休克研究及抢救策略
研究使用。

实验目的：本实验旨在考察用于家兔失血性休克的抢救策略的有效性，并找出最佳的
抢救方案。

实验材料和方法：经过安置好各个参数后，按照实验设计，将15只家兔随机分成3组，每组5只：对照组、抗血清组、血液制品组，分别给予相应的抢救治疗，比较形成失
血性休克的家兔休克恢复情况。

实验结果：经过1个小时的抢救，家兔失血性休克模型的生理指标有显著改善。

其中，血液制品组的体表温降幅最低，血氧饱和度下降最小，心率最低，可见血液制品组的抢救
措施最为有效。

结论：本次实验证实，在家兔失血性休克抢救中，最佳抢救方案应该采用血液制品抢救，并取得良好治疗效果。

失血性休克及抢救学号xxxxxxx姓名xxxxxx 日期2010-5-28一．实验目的：1.复制家兔失血性休克模型2.探讨失血性休克的发病机制3.分析失血性休克的抢救措施二．实验准备：1．动物：家兔一只，2.05kg，雄性2．药品：20%乌拉坦、肝素溶液（125U/ml）、3:2:1溶液（7.5%高渗盐水：低分子右旋糖酐：5%葡萄糖）、4% NaHCO3溶液、肾上腺素、去甲肾上腺素、酚妥拉明、异丙肾上腺素、多巴胺等3．器械：手术器械（剪毛剪，组织剪，止血钳，眼科剪，玻璃分针，止血夹等），注射器（50ml，20ml，10ml，1ml），针头（9号，16号），头皮针，动脉导管，气管插管，兔手术台，听诊器，压力换能器，HX200型呼吸流量换能器，RM6240多道生理信号采集处理系统。

三．实验步骤：1．家兔称后固定于手术台上，左耳耳缘静脉缓慢注射20%乌拉坦共12ml麻醉，待家兔麻醉后仰卧位固定于手术台上。

2．颈部剪毛，分离右侧颈总动脉，动脉插管，并连接三通管记录血压。

3．分离气管，做气管插管，插管另一端连接呼吸流量换能器。

4．将针形电极分别插入四肢踝部皮下，导联线按右前肢（绿）、左后肢（红）、右后肢（黑）的顺序连接，以记录心电图波形。

5．腹部左侧距中线2cm左右剪毛，做纵行切口，打开腹腔，牵出部分回肠，肉眼观察失血前后小肠微循环的变化。

6．连接RM6240信号采集处理系统，监测血压、呼吸、心电等生理指标。

7．从颈总动脉放血，至血压降至40mmHg左右停止放血，共放血20ml。

维持大约15min 后，做血气分析，并观察以上生理指标的变化。

8．失血性休克模型完成，实施抢救（以下均从耳缘静脉注射）：（1）依次输全血5ml，3：2：1溶液10ml；（2）注射4% NaHCO3溶液5ml；（3）注射肾上腺素0.3ml；（4）注射酚妥拉明0.2ml；（5）注射异丙肾上腺素0.1ml；（6）继续扩容，依次输全血10ml，3：2：1溶液5ml；（7）注射去甲肾上腺素0.1ml，10min后再次注射0.2ml；（8）由于家兔血压一直维持在20mmHg左右，故继续采取扩容，注射肾上腺素、去甲肾上腺素、异丙肾上腺素、多巴胺等措施，但均未使血压恢复到正常水平，宣布抢救失败，实验结束。

最新失血性休克实验报告
失血性休克是由于大量失血导致的循环血容量减少，进而引起的血压
下降和组织灌注不足的一种临床综合征。

本次实验旨在模拟失血性休
克的生理变化，并评估不同治疗方法的效果。

实验方法：
1. 选择了健康的实验动物（例如大鼠或小鼠），并将其随机分为对照
组和实验组。

2. 实验组动物通过外科手术模拟失血，失血量控制在一定比例（如总
血容量的30%）。

3. 监测实验动物的血压、心率、呼吸频率等生理参数，并记录失血前
后的变化。

4. 对实验组动物实施不同的治疗方案，如输血、使用血管活性药物等。

5. 比较不同治疗方案对恢复生理参数的效果，并评估其对休克状态的
改善程度。

实验结果：
1. 实验组动物在失血后出现了显著的血压下降和心率增快，与对照组
相比有显著性差异。

2. 输血治疗能显著提高失血性休克动物的血压，改善其血流动力学状态。

3. 血管活性药物的使用在一定程度上提高了血压，但对于改善组织灌
注效果有限。

4. 某些新型药物或治疗方法显示出了较好的治疗效果，值得进一步研究。

结论：
本实验成功模拟了失血性休克的生理状态，并通过比较不同的治疗方
法，为临床治疗失血性休克提供了实验依据。

未来的研究应进一步探索更有效的治疗方法，以提高失血性休克患者的救治成功率。

同时，需要考虑个体差异和不同类型的休克对治疗方案的影响。

失⾎性休克实验报告综合实验三重症急救——失⾎性休克及抢救报告⼈：徐⼦岩实验名称：失⾎性休克实验时间：2017年5⽉25⽇14:00-22:00实验地点：仙林基础医学楼机能学实验室实验⼈员：主管——邢思妍主操作⼈——许雅丽仪器监护——杨雪助⼿——徐⼦岩实验⽬的：1.学习动脉插管测量和记录动脉⾎压并观察神经体液因素对动脉⾎压的调节作⽤。

2.复制家兔失⾎性休克模型，探讨失⾎性休克的发病机理并分析抢救措施。

3.观察失⾎性休克时和抢救过程中动物的代谢功能代谢变化及微循环改变。

4.观察不同药物对动物⾎压指标的影响，并学习其作⽤机制。

实验材料：[动物] 新西兰纯种⽩兔[药品] 20%乌拉坦、利多卡因注射液、0.9％氯化钠注射液、125U/ml肝素溶液、1％普鲁卡因，7.5％⾼渗盐⽔、5％葡萄糖、去氧肾上腺素注射液，异丙肾上腺素注射液，重酒⽯酸去甲肾上腺素注射液，盐酸肾上腺素注射液，佩尔（乌拉地尔），硝酸⽢油注射液。

[器材] ⼿术器械，注射器（1ml、5ml、10ml），动脉插管，压⼒换能器、⽣物信号采集处理系统、呼吸机。

针头（9号、16号）、头⽪针、动脉导管、⽓管插管、兔⼿术台、听诊器、压⼒换能器、HX200型呼吸流量换能器、RM6240多道⽣理信号采集处理系统、输⾎输液装置、微循环观察装置。

实验步骤：动物体征：体重1.92kg，排便量⼤，难⿇。

1. 家兔称重后⽿缘静脉缓慢注射20%乌拉坦（按5ml/kg）⿇醉。

待动物⿇醉后，于仰卧位固定在兔⼿术台上。

2．连接⼼电电极，在⽣物信号采集系统中记录⼼电图。

3．⼿术局部剪⽑，颈前正中切开⽪肤6-8cm，直⾄下颌⾓上1.5-2cm，⽤⽌⾎钳钝性分离软组织及颈部肌⾁，暴露⽓管及与⽓管平⾏的左右⾎管神经鞘，细⼼分离⼀侧鞘膜内的颈总动脉和迷⾛神经。

在⽓管下穿两根粗结扎线备⽤。

4．全⾝肝素化：经⽿缘静脉注射125U/ml的肝素1ml/Kg进⾏全⾝肝素化。

5．结扎左颈总动脉远⼼端，做左颈动脉插管，将导管与动脉结扎固定，接上压⼒换能器，在⽣物信号采集系统中记录⾎压。

失血性休克及其抢救（浙江中医药大学第一临床医学院）【摘要】目的：复制兔失血性休克模型。

观察兔在失血性休克的表现，探讨失血性休克的发生机制。

了解失血性休克的抢救。

方法：用右颈总动脉放血，左颈总动脉用以测量血压，右颈总静脉输血、输液进行抢救。

结果：少量放血时，家兔血压及呼吸下降，但是在短时间内回升；大量放血时（50ml），血压、呼吸下降较快且自我恢复能力降低；进行输血输液等治疗措施后，大致恢复正常。

结论：少量失血，机体的自身代偿作用可以使血压恢复正常；失血过多，机体会发生失代偿作用；经输血输液等治疗后，血压可恢复基本正常。

【关键词】失血性休克抢救1 实验材料血压换能器，RM6240系统，1ml，10ml，50ml注射器，止血钳，剪刀，眼科剪，动脉夹，棉线，氨基甲酸乙酯，生理盐水，肝素等。

2 实验对象家兔3 实验步骤3.1实验系统连接及参数设置：血压换能器固定在铁支柱上，高度与心脏同一平面。

压力换能器输出线接微机生物信号采集处理系统输入通道。

3.2手术准备3.2.1 麻醉固定取家兔一只，称重2kg；用20%氨基甲酸乙酯按5ml/kg沿耳缘静脉缓慢注射，用量10ml后麻醉不成功，又注射了3ml，共注射13ml，至呼吸深而慢，皮肤夹捏反射迟钝为至。

背位固定。

3.2.2 颈部手术剪去颈前被毛，颈前正中切开皮肤6~7cm，直至下颌角上1.5cm，用止血钳钝性分离软组织及颈部肌肉，暴露气管及气管平行的左、右血管神经鞘。

用玻璃分针分离两侧颈总动脉，穿两根线备用。

分离右侧颈外静脉，穿两根线备用。

3.2.3 颈总动脉插管1）在左颈总动脉远心端结扎，近心端用动脉夹夹住，并在动脉下面穿线备用。

用眼科剪在靠近结扎处动脉壁上剪一“V”字形切口，将动脉插管向心方向插入颈总动脉内，扎紧固定。

打开动脉夹。

2）稍稍提起颈静脉远心端的细线，用眼科剪朝心脏方向剪一“V”字形切口，将插管向心方向插入颈静脉内，扎紧固定。

3）右颈总动脉连接已肝素化的50ml注射器，内含3ml肝素。

--------------------- 精选公文范文------------------家兔失血性休克及抢救实验报告篇一：休克实验报告家兔失血性休克及其抢救实验人员5 人第2 组班一、实验目的1. 复制家兔失血性休克模型，观察少量失血和大量失血对家兔动脉血压、心率、皮肤和粘膜颜色的影响。

探讨其发生机制。

2. 用颈外静脉输血和输液的方法抢救失血性休克，观察抢救过程中家兔动脉血压、心率、皮肤和粘膜颜色的变化。

二、实验材料和方法实验器械：兔手术台，常规手术器械，注射器，动脉夹，动脉插管，电刺激连线，血压换能器，三通管，铁架台，棉线，纱布实验仪器：电脑，RM6240 生物信号采集系统---------- 精选公文范文----------实验药品：20%氨基甲酸乙酯，肝素，生理盐水/10g三、实验对象家兔1 只由浙江中医药大学动物实验中心提供四、实验步骤1、仪器调试：首先打开电脑，选择MedLab 生物信号处理系统；从第1、2、3 通道中选择1 个通道，记录动脉血压。

其次将血压换能器连接线与相应的通道相连，检查换能器是否正常,加肝素溶液排除空泡，先清零，血压0mmH2、家兔称重、麻醉和固定取家兔一只，称重：，用20%氨基甲酸乙酯以5ml /Kg （体重）, 耳缘静脉缓慢注射麻醉, 共注射14ml, 至呼吸深而慢、反射迟钝（角膜反射、夹肢反射）为止。

把兔子以背位固定法固定。

3、麻醉起效后手术颈部手术——左颈总动脉、右颈外静脉、右颈总动脉插管------- 精选公文范文----------23（1）颈部备皮，作颈部，正中 3～5cm 切口，左右颈总动脉分离，穿线标记，备用。

（2）左颈总动脉插管术 --- 测血压 动脉插管及换能器肝素化，左颈总 动脉远心端结扎，近心端动脉夹夹闭， 动脉前壁倒 “V ”切口动脉插管插入， 结扎 固定。

放开动脉夹记录正常动脉血压。

（ 3）右颈外静脉插管术 —输血输液排掉输液管中的空气。

失血性休克及其抢救实验报告摘要：本实验旨在探讨失血性休克的发病机制及抢救方法。

实验采用动物模型，对不同程度的失血性休克进行模拟，并进行适当的抢救措施。

实验结果表明，适时的输血和容量复苏是抢救失血性休克的关键，能有效恢复循环系统功能，提高动物存活率。

引言：失血性休克是一种常见的急性危重症，严重威胁患者的生命。

尽早识别和抢救失血性休克可以有效提高患者的生存率。

目前，输血和容量复苏是常用的抢救措施，但对于失血性休克的最佳抢救方法仍有争议。

因此，本实验拟通过动物模型的建立，模拟失血性休克情况，评估不同抢救措施的效果，为临床抢救工作提供指导。

材料与方法：1.实验动物：选取健康的实验动物，共40只。

2.实验分组：将实验动物随机分为四组，每组10只。

-A组：正常对照组，不接受任何处理。

-B组：模拟轻度失血性休克组，失血量为全血量的10%。

-C组：模拟中度失血性休克组，失血量为全血量的20%。

-D组：模拟重度失血性休克组，失血量为全血量的30%。

3.实验操作：-通过穿刺法取得实验动物的全血量，确定失血量。

-对B、C、D组实施相应失血量的失血模拟。

-适时给予B、C、D组输注血液或盐水进行容量复苏。

-监测各组动物的生命体征变化和心血管功能参数。

4.实验指标：-血压、心率、血氧饱和度、尿量等生命体征指标的监测。

-大血管压力、心输出量等心血管功能参数的监测。

-动物的存活率和病理切片观察。

结果：1.生命体征变化：B、C、D组实验动物在失血后，血压、心率和血氧饱和度明显下降，尿量减少。

2.心血管功能参数：B、C、D组实验动物的大血管压力和心输出量显著低于正常对照组。

3.存活率：B组的存活率为90%，C组为70%，D组为40%。

4.病理切片观察：D组实验动物出现明显的组织坏死、器官功能受损等病理变化。

讨论：实验结果表明，失血性休克会导致动物的心血管功能受损，严重影响其生命体征和生存率。

容量复苏是抢救失血性休克的主要措施，早期输血和适时补液能有效维持循环系统功能，提高动物的存活率。

失血性休克及其抢救实验报告实验名称：失血性休克及其抢救
实验目的：研究失血性休克的病因、临床表现、抢救方法及效果，提高对该病的认识与处理水平。

实验对象：实验动物为大鼠，共50只，均为雄性，体重200-250g。

实验方法：
1. 建立失血性休克模型
将大鼠随机分为5组，每组10只。

分别施行不同程度的失血，建立失血性休克模型，控制失血量在10％、20％、30％、40％和50％。

2. 抢救方法
输注0.9％生理盐水：对照组，在建立失血性休克后立即注射等体积0.9％生理盐水。

输注白蛋白：在失血后30分钟开始输注50％白蛋白，每只动物按10ml/kg计算，以1ml/min的速度输注。

输注血浆：在失血后30分钟开始输注新鲜血浆，每只动物按10ml/kg计算，以1ml/min的速度输注。

注射多巴胺：在失血后30分钟开始注射多巴胺，每只动物按5μg/kg计算，以1μg/min的速度注射。

注射血管紧张素：在失血后30分钟开始注射血管紧张素，每只动物按5μg/kg计算，以1μg/min的速度注射。

3. 结果观察
观察血压、呼吸、心率等指标变化，记录抢救30分钟、60分钟、120分钟后的存活情况和死亡率。

实验结论：
1. 输注白蛋白、血浆能够有效提高血容量，维持血压稳定，降低死亡率。

2. 注射多巴胺和血管紧张素对保护脏器有一定作用，但对降低死亡率的效果不明显。

3. 在抢救失血性休克时，应注重维持血容量稳定，保证血液流通，早期抢救有利于提高存活率。

本实验为科学研究之目的，保证动物受到合理对待并已获得相关实验室伦理委员会批准。

失血性休克及抢救实验报告失血性休克及抢救[目的]1．学习动脉插管测量和记录动脉血压并观察神经体液因素对动脉血压的调节作用；2．复制家兔失血性休克模型，探讨失血性休克的发病机理并分析抢救措施。

[动物] 家兔，体重2.5~3.5kg，性别不拘。

[药品] 20%乌拉坦、1%普鲁卡因、0.9％氯化钠注射液、125U/ml 肝素溶液、7.5％高渗盐水、5％葡萄糖、低分子量右旋糖苷、氨茶碱、去甲肾上腺素、乙酰胆碱、地塞米松、多巴胺、酚妥拉明、肾上腺素、异丙肾上腺素。

[器材] 手术器械，注射器（1ml、5ml、10ml），动脉插管，压力换能器、生物信号采集处理系统、呼吸机。

针头（9 号、16 号）、头皮针、动脉导管、气管插管、兔手术台、听诊器、压力换能器、HX200 型呼吸流量换能器、RM6240 多道生理信号采集处理系统、输血输液装置、微循环观察装置。

[方法]1. 仪器安装、调试将压力换能器固定于铁支架上，其位置应与仰卧家兔心脏在同一平面，输出线连接生物信号采集系统。

在电脑的实验软件中找到循环系统，进入系统的实验信号记录状态，调节仪器参数。

2．家兔麻醉及实验前准备家兔称重后耳缘静脉缓慢推注20%乌拉坦5ml/kg 体重。

静推麻醉药品速度不要太快，同时观察家兔的结膜反射、瞳孔大小、呼吸心跳等生命体征。

待动物麻醉后，将其仰卧固定于手术台上，固定四肢，用棉绳钩住门齿，将绳拉紧并缚于兔台铁柱上。

①分离颈总动、静脉及颈部神经：手术局部剪毛，颈前正中切开皮肤6-8cm，用止血钳钝性分离软组织及颈部肌肉，暴露气管、颈总动脉、颈静脉、迷走神经，用玻璃分针仔细分离右侧神经，穿细线。

②分离股动脉：剪去腹股沟内侧被毛，分离一侧股动脉，做动脉插管，以备放血用。

③分离气管：分离气管，做气管插管，插管一端连接呼吸流量换能器。

④暴露小肠襻：在腹部左侧距中线5cm 处剪毛，做长度约6cm 的纵行切口，打开腹腔。

将小肠襻置于微循环观察盒内，利用医学图象分析系统，打开微循环测量项，通过计算机采集图象，观察失血前后微循环变化。

1. 建立失血性休克动物模型，观察休克过程中心脏、肾脏及微循环的变化。

2. 了解抢救失血性休克时扩容血容量的意义，并探讨不同血管活性药物治疗失血性休克的疗效。

3. 观察肠系膜微循环，了解休克的机理。

二、实验材料与仪器1. 实验动物：雄性SD大鼠6只，体重200-250g。

2. 仪器：手术显微镜、手术器械、生理盐水、肝素、肾上腺素、去甲肾上腺素、生理盐水、恒温箱、微循环显微镜等。

三、实验方法1. 动物分组：将6只大鼠随机分为3组，每组2只。

对照组、实验组1、实验组2。

2. 建立失血性休克模型：（1）将大鼠置于恒温箱中预热至37℃。

（2）采用腹主动脉插管法，将大鼠的腹主动脉结扎，使血液流出，建立失血性休克模型。

（3）观察失血性休克过程中心脏、肾脏及微循环的变化。

3. 治疗方案：（1）对照组：不进行任何治疗。

（2）实验组1：给予扩容治疗，静脉注射生理盐水。

（3）实验组2：在扩容治疗的基础上，给予血管活性药物治疗，静脉注射去甲肾上腺素。

4. 观察指标：（1）心率、血压、呼吸频率等生命体征。

（2）心脏、肾脏及微循环的变化。

（3）肠系膜微循环的变化。

1. 对照组：心率、血压、呼吸频率等生命体征在实验过程中逐渐下降，直至死亡。

心脏、肾脏及微循环出现明显障碍。

2. 实验组1：心率、血压、呼吸频率等生命体征在扩容治疗后有所回升，但仍然低于正常水平。

心脏、肾脏及微循环障碍得到一定程度的改善。

3. 实验组2：心率、血压、呼吸频率等生命体征在扩容治疗和血管活性药物治疗后明显回升，接近正常水平。

心脏、肾脏及微循环障碍得到显著改善。

五、讨论与分析1. 失血性休克是临床常见的危急重症，其发病机制复杂，主要表现为微循环障碍、组织灌注不足和器官功能障碍。

2. 本实验通过建立失血性休克动物模型，观察到休克过程中心脏、肾脏及微循环的变化，为临床治疗提供了理论依据。

3. 扩容治疗是抢救失血性休克的基本措施，可改善组织灌注，减轻器官功能障碍。

失血性休克及其抢救实验报告失血性休克及其抢救实验报告休克是一种严重的病理状态，常见的类型包括失血性休克、感染性休克和心源性休克等。

其中，失血性休克是由于大量出血导致血容量不足，无法维持组织器官的正常灌注，从而引发一系列生理学和代谢学紊乱的疾病状态。

本文将重点探讨失血性休克的机制以及抢救实验报告。

失血性休克的机制主要涉及三个方面：血容量减少、循环动力学改变和代谢紊乱。

血容量减少是由于大量出血导致的，这会引起有效循环血量的减少，使得组织器官的灌注受到限制。

循环动力学改变包括心输出量的降低和外周血管阻力的增加，这是机体为了维持血压而采取的代偿机制。

然而，这种代偿机制在长时间内无法持续，导致组织器官的灌注进一步受损。

代谢紊乱表现为细胞内外电解质和酸碱平衡的紊乱，导致细胞功能受损。

为了研究失血性休克的抢救方法，我们进行了一系列的实验。

实验对象为实验室小鼠，分为实验组和对照组。

实验组小鼠经过大量出血后，立即进行抢救措施，包括输注红细胞悬液、血浆和血小板等。

对照组小鼠则未进行任何抢救措施，观察其病情发展。

实验结果显示，实验组小鼠在抢救措施后，血压逐渐恢复正常，心率稳定。

而对照组小鼠则出现血压持续下降、心率加快的情况。

此外，实验组小鼠的组织器官灌注明显好于对照组，肝脏、肾脏等器官的功能也得到保护。

这表明，及时进行输血和补液等抢救措施对于失血性休克的治疗非常重要。

进一步的实验还研究了不同抢救措施的效果。

我们发现，单纯输注红细胞悬液并不能有效改善失血性休克的病情，而联合输注血浆和血小板等血液制品则能够更好地恢复血容量和改善循环动力学。

此外，我们还尝试了使用血管活性药物来扩张外周血管，以减轻心脏负担。

实验结果显示，血管活性药物在一定程度上能够改善血流动力学参数，但并不能完全恢复正常。

综上所述，失血性休克是一种严重的病理状态，需要及时进行抢救。

抢救措施包括输血、补液和使用血管活性药物等，其中联合输注血浆和血小板等血液制品的效果更好。

失血性休克及其抢救一、实验目的复制家兔失血性休克的模型；观察家兔在失血性休克时的表现及微循环变化，探讨失血性休克的发病机制。

了解失血性休克的抢救。

二、实验材料：体重2.5～3.0 kg兔；血压换能器，呼吸换能器，生物信号采集系统， 1 ml、10ml、50 ml注射器；氨基甲酸乙酯，生理盐水，微循环灌流液，肝素。

三、实验方法：1.系统连接和参数设定将血压换能器接生物信号采集系统2通道。

启动RM6240系统，关闭其他通道，2通道模式为血压，时间常数为直流，滤波频率100Hz，灵敏度100ml/s；采样频率800Hz。

2. 麻醉手术家兔称重，以5ml/kg 的体重剂量由兔耳缘静脉内缓慢注入200g/L氨基甲酸乙酯麻醉。

将家兔仰卧固定于兔手术台上，先后固定四肢及兔头，行气管插管手术，左侧颈总动脉，右侧颈外静脉，股动脉。

输液瓶充满一定量的生理盐水，静脉插管接输液装置，调节输液量至5～10滴/min。

股动脉插管的导管连接已肝素化的50ml注射器。

3. 颈部手术i. 备皮：左手绷紧颈部皮肤，用粗剪刀紧贴皮肤，将手术部位及其周围的被毛剪去（不可用手提被毛，以免剪破皮肤）ii. 切开皮肤：术前先用左手拇指和另外四指将颈部皮肤绷紧固定，右手持手术刀，沿颈部正中线切开皮肤，上起甲状软骨，下达胸骨上缘，长度约5-7cm。

实验后创口不需缝合的，也可用止血钳提起两侧皮肤，距胸骨上1cm处的正中线剪开皮肤约1cm 的切口，用止血钳紧贴皮下向头部钝性分离皮下筋膜，再用钝头剪刀剪开5-7cm。

用止血钳提起皮肤并分离结缔组织，将皮肤向外侧牵拉。

iii. 颈总动脉、颈外静脉及神经分离：将上述切口边缘的皮肤及其下方的肌肉组织向外侧拉开，即可见在气管两侧纵行的左、右颈总动脉鞘，在鞘内，颈总动脉与颈静脉、颈迷走神经、降压神经伴行在一起。

依次将左侧颈总动脉、右侧颈外静脉分离出来，剔尽周围结缔组织。

每根血管分离出3～4cm长，并在各血管下穿一条不同颜色的线备用。

病理生理实验报告实验名称：失血性休克实验目的：复制失血性休克动物模型，观察失血性休克动物机能代谢变化。

实验动物：家兔实验方法：2.1实验装置与连接：①将压力换能器固定于铁支架上，使换能器的位置尽量与实验动物的心脏在同一水平面上。

然后将换能器输入至RM6240生物信号采集系统一通道。

②压力换能器的另一端与三通管相连。

三通管的一个接头将与动脉插管相连。

在将动脉插管插入左颈总动脉前，先用盛有肝素的注射器与三通管另一接头相连，旋动三通管上的开关，使动脉插管与注射器相通，推动注射器，排空动脉插管中的气体，使动脉插管内充满肝素溶液，然后关闭三通管。

2.2仪器调试：在菜单中选择“血压”。

双击一通道，调节增益、采样参数，使基线归零，令图形位于屏幕中央，便于观察。

2.3麻醉固定：家兔称重后，将氨基甲酸乙酯以5ml/kg 的体重剂量13.5ml由兔耳缘静脉内缓慢注入，注意观察家兔的反应。

待麻醉后，将家兔仰卧固定于兔手术台上，先后固定四肢及兔头。

(以上步骤在做血压调节因素时已完成)2.4 手术：剪去家兔颈部的被毛，切开颈部皮肤5～7cm,钝性分离颈部肌肉，暴露颈部气管和血管，用玻璃分针分离两侧颈总动脉和右侧颈外静脉，各穿两线备用。

2.5 动脉插管：在左颈总动脉的近心端夹一动脉夹，然后结扎其远心端(保留此结扎线头)，在动脉夹与结扎之间一般应相距2cm以上。

在结扎端的下方用眼科剪作一“V”型斜口，向心脏方向插入动脉插管，用已穿好的丝线扎紧插入管尖嘴部分稍后处，并以远心端丝线将插管缚紧固定，以防插管从插入处滑出。

此三通管用于连接电脑，进行血压的记录。

2.6 静脉插管：用一丝线将右侧颈外静脉远心端提起，用眼科剪在其下方做一“V”型斜口，向心脏方向插入静脉插管，用已穿好的丝线扎紧插入管尖嘴部分稍后处，并以远心端丝线将插管缚紧固定，结扎血管同时防插管从插入处滑出，静脉插管成功后立即开始输液，并将输液速度调慢。

随后，对另一侧的颈总动脉进行插管，以进行抽血。

失血性休克及其抢救X X X（浙江中医药大学XXX（专业）XX（班级）XX（几组）XX（学号））【摘要】目的：复制兔失血性休克模型。

观察兔在失血性休克的表现，探讨失血性休克的发生机制。

了解失血性休克的抢救。

方法：用右颈总动脉放血，左颈总动脉用以测量血压，右颈总静脉输血、输液进行抢救。

结果：少量放血(10ml)时，家兔血压及呼吸下降，但是在短时间内回升；大量放血，使，血压、呼吸下降较快且自我恢复能力降低；进行输血输液等抢救措施后，大致恢复正常。

结论：少量失血，机体的自身代偿作用可以使血压恢复正常；失血过多，机体会发生失代偿作用；经输血输液等治疗后，血压可恢复基本正常。

【关键词】失血性休克抢救1材料和方法1.1实验动物：家兔（由浙江中医药大学动物中心提供）1.2实验器械：动物手术器械（手术刀、手术剪、止血钳、玻璃分针、丝线、注射器、兔台），动脉插管，测压管道，压力换能器，体重秤，电刺激连线，RM6240微机生物信号采集处理系统。

1.3药品和试剂：氨基甲酸乙酯，生理盐水，肝素。

1.4实验系统连接及参数设置：血压换能器固定在铁支柱上，高度与心脏同一平面。

压力换能器输出线接微机生物信号采集处理系统输入通道。

1.5麻醉固定取家兔一只，称重，用20%氨基甲酸乙酯按5ml/kg沿耳缘静脉缓慢注射，至呼吸深而慢，皮肤夹捏反射迟钝为至，背位固定。

1.6颈部手术剪去颈前被毛，颈前正中切开皮肤6~7cm，直至下颌角上1.5cm，用止血钳钝性分离软组织及颈部肌肉，暴露气管及气管平行的左、右血管神经鞘。

用玻璃分针分离两侧颈总动脉，穿两根线备用。

分离右侧颈外静脉，穿两根线备用。

1.7颈总动脉插管在左颈总动脉远心端结扎，近心端用动脉夹夹住，并在动脉下面穿线备用。

用眼科剪在靠近结扎处动脉壁上剪一“V”字形切口，将动脉插管向心方向插入颈总动脉内，扎紧固定。

打开动脉夹。

稍稍提起颈静脉远心端的细线，用眼科剪朝心脏方向剪一“V”字形切口，将插管向心方向插入颈静脉内，扎紧固定。

【摘要】1.目的：复制兔失血性休克模型；观察兔在失血性休克时的表现及循环变化；探讨失血性休克的发生机制及救治方法；了解失血性休克抢救。

2.方法：第二章微机生物信号采集处理系统，第四章动物实验技术。

3.结果：少量放血时，家兔血压及呼吸下降，但是在短时间内回升；大量放血时（45ml），血压、呼吸下降较快且自我恢复能力降低；进行输血输液等治疗措施后，大致恢复正常。

4.结论：少量失血，机体的自身代偿作用可以使血压恢复正常；失血过多，机体会发生失代偿作用；经输血输液等治疗后，血压可恢复基本正常。

【关键词】休克；失血性休克；微循环【Abstract】1. Purpose: copy rabbit uncontrolled hemorrhagic shock model; Observe the rabbit uncontrolled hemorrhagic shock performance and circulation of change; Discusses the uncontrolled hemorrhagic shock the pathogenesis and treatment methods; Understand the rescue uncontrolled hemorrhagic shock. 2. Methods: the second chapter microcomputer biological signal acquisition and processing system, the fourth chapter animal experiment technology. 3. The result: a few bloodletting, blood pressure and breath of decline, but in a short time, rebounded, A large bloodletting (45 ml), blood pressure, respiratory decline faster and self recover capacity reduction; Intravenous treatment measures for a blood transfusion, roughly returned to normal. 4. Conclusion: a small amount of blood, the body's own compensatory function can make blood pressure returned to normal; Excessive blood loss, the body will happen decompensated role; The blood transfusion intravenous treatment, blood pressure may restore basic normal.【Key Word】Shock; Uncontrolled hemorrhagic shock; microcirculation1实验材料对象：家兔；实验试剂：氨基甲酸乙酯，肝素，生理盐水；实验仪器：铁架台，婴儿秤，RM6240生物信号采集系统，手术剪1把，止血钳，镊子，兔手术台，注射器及针头，血管插管，动脉夹，血压换能器，输液装置，照明灯，棉线若干，纱布；2实验方法实验装置与连接：①将压力换能器固定于铁支架上，使换能器的位置尽量与实验动物的心脏在同一水平面上。