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细菌菌落总数的测定
细菌菌落总数的测定
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5.2x104 2.6x105
3.5x105
4
152
37
10-2,10-3
9.0x104
5 6
26 无法计数
12 568
5 312
10-2 10-4
2.6x103 3.1x106
4、若所有稀释度平板菌落数均<30, 则以最低稀释度的平均菌落数乘稀释倍 数计算。
5、若所有稀释度平板均无菌落生长, 则应按<1乘以最低稀释倍数计算。
菌落总数主要作为判别食品被污染 程度的标志,也可以应用这一方法观察 细菌在食品中繁殖的动态,以便对被检 样品进行卫生学评价时提供依据。
食品中细菌菌落总数越多,则食品 含有致病菌的可能性越大,食品质量越 差;菌落总数越小,则食品含有致病菌 的可能性越小。须配合大肠菌群和致病 菌的检验,才能对食品做出较全面的评 价。
食品微生物学检验 菌落总数的测定
一、 目的
1、 学习并掌握食品中菌落总数测定方 法和原理。 2 、了解菌落总数测定在对被样品进行 卫生学评价中的意义 。
二、原理
细菌数量的表示方法由于所采用的 计数方法不同而有两种:菌落总数和细 菌总数。
1、菌落总数 是指食品检样经过处理,在一定条 件下培养后,所得1g或1mL检样中形成 的细菌菌落总数。以 CFU/g(mL)来 表示。 一定条件包括培养基成分、培养温度 和时间、pH、是否需要氧气等。
3、若所有平板上为蔓延菌落而无法计 数,则报告菌落蔓延。 4、 若空白对照上有菌落生长,则此次检 测结果无效。 5、称重取样以CFU/g 为单位报告,体积 取样以CFU/mL 为单位报告。
注意事项
1、无菌操作
操作中必须有“无菌操作”的概念,所用 玻璃器皿必须是完全灭菌的。所用剪刀、镊子 等器具也必须进行消毒处理。样品如果有包装, 应用75%乙醇在包装开口处擦拭后取样。操 作应当在超净工作台或经过消毒处理的无菌室 进行。
4、每递增稀释一次即换用1支1ml灭菌பைடு நூலகம்吸管。 5、倾注用培养基应在46℃水浴内保温, 温度过高会影响细菌生长,过低琼脂易 于凝固而不能与菌液充分混匀。如无水 浴,应以皮肤感受较热而不烫为宜。
6、倾注培养基的量规定不一,从12~ 20ml不等,一般以15ml较为适宜,平板 过厚可影响观察,太薄又易于干裂。倾 注时,培基底部如有沉淀物,应将底部 弃去,以免与菌落混淆而影响计数观察。
9、为了避免食品中的微小颗粒或培 基中的杂质与细菌菌落发生混淆,不易 分辨,可同时作一稀释液与琼脂培基混 合的平板,不经培养,而于4℃环境中放 臵,以便计数时作对照观察。
六、 结果
1、 将实验测出的样品数据以表格的 方式报告。 2 、对样品菌落总数作出是否符合卫 生要求的结论。
报告方式
样品 稀释液及 菌落数 选择稀 释度 报告(CFU/g,ml)
按国家标准方法规定,即在需氧情况 下, 36 ±1℃培养48±2 h,能在平板 计数琼脂上生长发育的细菌菌落总数。 所以厌氧或微需氧菌、有特殊营养要求 的以及非嗜中温的细菌,由于现有条件 不能满足其生理需求,故难以繁殖生长。
菌落总数并不表示实际中的所有细菌总 数,也不能区分其中细菌的种类,只包括 一群在计数平板琼脂中生长发育、嗜中温 的需氧和兼性厌氧的细菌菌落总数,所以 有时被称为杂菌数,需氧菌数等。
例如:
稀释度 1:100(第一稀释度) 1:1000(第二稀释度) 菌落数 232,244 33,35
232+244+33+35 (2+0.1×2) ×10-2
=544/0.022=24727
四舍五入表示为: 2.5 × 104
试样 例次
稀释度 10-2 10-3 10-4 选定计数稀释度
菌量 /(个/g 或mL)
1 2
3
380
平 均 526 菌 落 435 数 284
52 205
210
18 32
48
10-3 10-3,10-4
10-3,10-4
5.2x104 2.6x105
3.5x105
4
152
37
10-2,10-3
9.0x104
5 6
26 无法计数
12 568
5 312
10-2 10-4
2.6x103 3.1x106
试样 例次
稀释度 10-2 10-3 10-4 选定计数稀释度
菌量 /(个/g 或mL)
1 2
3
380
平 均 526 菌 落 435 数 284
52 205
210
18 32
48
10-3 10-3,10-4
10-3,10-4
5.2x104 2.6x105
3.5x105
4
152
37
10-2,10-3
9.0x104
同时分别取1ml稀释液(不含样品) 加入两个灭菌平皿内作空白对照。
5 、稀释液移入平皿后,将冷却至 46℃琼脂培养基注入平皿约15~20ml, 并转动平皿,混合均匀。
6、 待琼脂凝固后,翻转平板,臵 36±1℃温箱内培养48±2h,水产品 30±1℃温箱内培养72±3h。 如样品中可能含有在琼脂培养基表面弥 漫生长的菌落时,可在凝固后的琼脂表面 覆盖一薄层琼脂培养基(约4毫升),凝固 后培养。
(二) 菌落记录方法 做平板菌落数记录时,可用肉眼观察, 必要时用放大镜检查,以防遗漏。在记 下各平皿的菌落总数后,求出同稀释度 的各平板平均菌落数。 到达规定培养时间,应立即计数。如果 不能立即计数,应将平板放臵于0~4℃, 但不要超过24h。
1、 平皿菌落数的选择 选取菌落数在30~300之间的平板作 为菌落总数测定标准。每一个稀释度应 采用两个平皿,大于300的可记为多不 可计。
7、为使菌落能在平板上均匀分布, 检液加入平皿后,应尽快倾注培养基并 旋转混匀,可正反两个方向旋转,检样 从开始稀释到倾注最后一个平皿所用时 间不宜超过20min,以防止细菌有所死 亡或繁殖。
8、培养温度一般为37℃(水产品的 培养温度,由于其生活环境水温较低, 故多采用30℃)。培养时间一般为48h, 有些方法只要求24h的培养即可计数。 培养箱应保持一定的湿度,琼脂平板培 养48h后,培养基失重不应超过15%。
2、用1 mL灭菌吸管吸取1:10稀释 液1 mL,沿管壁徐徐注入含有9 mL灭 菌生理盐水或磷酸盐缓冲液的试管内, 振摇试管或反复吹打混合均匀,制成 1:100的稀释液。
3 、另取1 mL灭菌吸管,按上项操 作顺序,制10倍递增稀释液,如此每 递增稀释一次即换用1支1 mL吸管。
4、根据标准要求或对污染情况的估 计,选择2~3个适宜稀释度,分别在制 作10倍递增稀释的同时,以吸取该稀释 度的吸管移取1ml稀释液于灭菌平皿中, 每个稀释度做两个平皿。
大肠埃希氏菌cfu/100ml或MPN/100ml :不得检出
《瓶(桶)装饮用纯净水卫生标准》(GB 17324-2003) 细菌菌落总数cfu/ml: ≤20
大肠菌群MPN/100ml: ≤3
致病菌(肠道致病菌和致病性球菌):不得检出
霉菌和酵母菌cfu/ml:不得检出
3、 若所有稀释度的平板菌落数均 >300,则取最高稀释度的平均菌落数乘 以稀释倍数计算。
试样 例次
稀释度 10-2 10-3 10-4 选定计数稀释度
菌量 /(个/g 或mL)
1 2
3
380
平 均 526 菌 落 435 数 284
52 205
210
18 32
48
10-3 10-3,10-4
10-3,10-4
5 6
26 无法计数
12 568
5 312
10-2 10-4
2.6x103 3.1x106
6、若所有稀释度均不在30~300之间, 有的>300,有的又<30,则应以最接近 300或30的平均菌落数乘以稀释倍数计算。
(四) 菌落计数报告方法
1、菌落数在1~100时,按四舍五入报 告两位有效数字。 2、菌落数≥ 100时,第三位数字按四舍 五入计算,取前面两位有效数字,为了缩 短数字后面的零数,也可以10的指数表示。
10-2 10-3 10-4
原始
计算公式
报告
样品 名称
数据
平均
七、思考 1、 什么是细菌菌落总数(cfu)? 2、 影响杂菌总数准确性的因素有哪些? 3、在食品卫生检验中,为什么要以细菌 菌落总数为指标? 4、为什么营养琼脂培养基在使用前要保 持在46±1℃的温度?
酱油(GB/T2717-2003): 细菌菌落总数: ≤30000 CFU/mL
2、采样的代表性 如系固体样品,取样时不应集中一 点,宜多采几个部位。固体样品必须经 过均质或研磨,液体样品须经过振摇, 以获得均匀稀释液。
3、稀释液
样品稀释液主要是灭菌生理盐水,或 磷酸盐缓冲液(或0.1%蛋白胨水),后 者对食品已受损伤的细菌细胞有一定的保 护作用。如对含盐量较高的食品(如酱油) 进行稀释,可以采用灭菌蒸馏水。
2、其中一个平板有较大片状菌落生 长时,则不宜采用,而应以无片状菌落 生长的平板作为该稀释度的菌落数;若 片状菌落不到平板的一半,而其余一半 中菌落分布又很均匀,则可以计算半个 平板后乘以2,以代表一个平板的菌落数。
3、当平板上有链状菌落生长时, 如呈链状生长的菌落之间无任何明显 界限,则应作为一个菌落计,如存在 有几条不同来源的链,则每条链均应 按一个菌落计算,不要把链上生长的 每一个菌落分开计数。
(三)菌落总数的计算
1、若只有一个稀释度平板上的菌落数在 适宜计数范围内,计算两个平板菌落数的 平均值,再将平均值乘以相应稀释倍数, 作为每g(mL)中菌落总数结果。
试样 例次
稀释度 10-2 10-3 10-4 选定计数稀释度
菌量 /(个/g 或mL)
1 2
3
380
平 均 526 菌 落 435 数 284
四、 流程
1、检样
2、做几个适当倍数的稀释液
3、选择2~3个适宜稀释度各1 mL,分别加入 灭菌平皿内 4、平皿内倾注15~20 mL琼脂培养基,混匀 5、36 ±1℃培养48±2小时或(24±2)小 时 6、记录稀释倍数和相应的各平板菌落数量 7、 计算菌落总数 → 报告
五、 步骤
(一) 取样、稀释和培养 1、 以无菌操作取检样25g(mL),放于 225mL灭菌生理盐水或磷酸盐缓冲液 的灭菌玻 璃瓶内(瓶内预臵适量的玻璃珠)或灭菌乳钵内, 经充分振荡或研磨制成1:10的均匀稀释液。 固体和半固体检样在加入稀释液后,最好臵 灭菌均质器中以8000~10000r/min的速度处理 1~2min,制成1:10的均匀稀释液。
2、细菌总数 指一定数量或面积的食品样品.经过 适当的处理后,在显微镜下对细菌进行 直接计数。其中包括各种活菌数和尚未 消失的死菌数。细菌总数也称细菌直接 显微镜数。通常以1 g或1 mL样品中的细 菌总数来表示。
三 、 材料
1、 食品检样 2、 培养基 平板计数培养基,无菌生理盐水或磷酸 盐缓冲液 3、 其它 无菌培养皿,无菌吸管,电炉、恒温培 养箱等。
大肠菌群:
≤30MPN/100mL
肠道致病菌: 不得检出
全脂奶粉、脱脂奶粉(GB5410-1999):
特级
细菌菌落总数:≤20000
一级
≤30000 ≤90
二级
≤50000 ≤90
(CFU/ml)
大肠菌群 (MPN/100g) ≤40
肠道致病菌: 不得检出
不得检出 不得检出
巴氏杀菌乳(GB5408.1-1999)
细菌菌落总数: ≤30000 CFU/mL 大肠菌群: ≤90 MPN/100mL 肠道致病菌: 不得检出
生活饮用水卫生标准(GB5749-2006)
菌落总数cfu/ml: ≤100 总大肠菌群cfu/100ml或MPN/100ml :不得检出 耐热大肠菌群cfu/100ml或MPN/100ml :不得检出
52 205
210
18 32
48
10-3 10-3,10-4
10-3,10-4
5.2x104 2.6x105
3.5x105
4
152
37
10-2,10-3
9.0x104
5 6
26 无法计数
12 568
5 312
10-2 10-4
2.6x103 3.1x106
2、若有两个连续稀释度的平板菌落数在适宜计 数范围内时,按如下公式计算: N=∑C/(n1+0.1n2)d…………(1 ) 式中: N ― 样品中菌落数; ∑C ― 平板(含适宜范围菌落数的平板)菌落 数之和; nl ― 第一个适宜稀释度平板数; n2 ― 第二个适宜稀释度平板数; d ― 稀释因子(第一稀释度)。
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