技术文件
页码：第1页共4页
标本采集、运送、保存程序
1.目的
规范标本采集程序，保证实验室检测前标本质量。
2.检验程序的原理和方法
无
3.性能特征
无
4.样品类型
微生物标本。
3.职责
3.1医护人员和检验人员负责指导病人如何正确留取标本。
3.2标本运输人员负责收取标本和运输标本至微生物室。
4.程序
4.1采集标本前，采样人员根据检验申请单检验项目的要求，确认采样计划并进行适当的准备工作，包括核对医嘱、打印条形码、选择合适的标本容器、粘贴条形码及指导病人做好采样前的准备工作等。
4.2认真核对病人、标本容器和榆验申请是否一致，严防差错。
4.3标本送到微生物室，标本运输人员必须与微生物室标本接收人员对标本进行核收登记。
4.4所有标本必须立即送检．一般不得超过2h。
5.采集方法
5.1血液及骨髓
5.1.1采血-时间：在抗菌药物治疗前，于发热初期或高峰时抽血。采血频率：对于怀疑菌血症的成年病人，推荐同时在不同部位采集2～3套（每套包括一瓶需氧瓶、一瓶厌氧瓶或者2套需氧瓶）；对于感染性心内膜炎和真菌血症则应多次采集；对于婴幼儿病人，推荐同时在不同部位采集2套。采血量：以培养基的1/10为宜，成人一次采血5-10ml，婴幼儿为1-2ml。
5.1.2骨髓标本用骨髓穿刺针从骼骨采集。
5.1.3标本保存：采集标本后立即送刭实验室，不能及时送检可置于室温，切勿放人冰箱。冬季血培养瓶在送检过程中应采取一定的保暖措施。
5.2脑脊液标本：由临床医师以无菌要求做腰椎穿刺，抽取脑脊液2～3ml，盛于无菌容器中送检。脑膜炎奈瑟菌离体后能产生自溶酶，会迅速自溶，肺炎链球菌及流感嗜血杆菌离体后也易死亡．因此，脑脊液无论涂片或培养，必须于采集后立即送检。
5.3上呼吸道标本
5.3.1鼻咽标本：将鼻咽拭子缓缓地伸进鼻孔直至鼻咽喉部（注意：不可用力），轻轻转动，并于该深部停留20～30s，然后迅速地抽（注意：避免受口或咽喉中细菌的污染）。
5.3.2喉标本：用压舌板压舌，用无菌拭子从咽后、扁桃体和发炎区采样。喉拭子培养不能用于会厌发炎的病人。将转运管安全封口，注明标识和日期，将标本尽快送到实验室。
技术文件
页码：第2页共4页
5.4下呼吸道标本
54.1痰
5.4.1.1采集标本以晨痰为好。支气管扩张症病人清晨起床后进行体位引流，可采集大量痰标本。
5.4.1.2自然咳痰法：在留取痰之前，用清水反复漱口，从气管深部咳出痰，吐入无菌容器内。
5.4.1.3支气管镜下采集法：在病灶附近用导管吸引或用支气管刷直接取得标本。
5-4.1.4气管穿刺法：在环甲膜下穿刺抽取痰液，收集标本，适用于厌氧菌培养。
5.4.1.5棉拭采集法：用无菌棉拭子轻轻擦拭病人鼻咽部黏膜，留取标本，置无菌试管内送检，放置时间不应超过2h。
5.4.2支气管灌洗液：用不少于140ml无菌生理盐水灌洗小支气管和肺泡，40--80ml 回收的灌洗液中包含约1ml支气管末梢和肺泡中的分泌物；弃去前段可能污染的部分，收集其余部分后立即送检。
5.4.3保护毛刷(PSB)：保护毛刷因有双层套管保护，不易污染上呼吸道和口腔定植菌。用无菌剪刀剪断毛刷，置于含1ml坐理盐水的无菌容器中（仅供需氧培养），快速送检。
5.5穿刺液标本
5.5.1采用无菌方法采集体内可疑感染部位的液体约2ml，注入无菌试管，或抽取穿刺液1--2ml注入多功能体液培养瓶，或抽取穿刺液2--5ml注入血培养瓶，混匀，立即送检。
5.5.2标本保存：采集标本后立即送到实验室，若不能及时送检可置于室温，放置时间不应超过2h。
5.6生殖器来源
5.6.1阴道：经过阴道口(introitus)，将拭子插入约5cm，轻轻转动10--30s。确保拭子触及阴道壁，小心退出，不要触及皮肤，将拭子转移到Aptima采集管。拭子必须置于运输管中，尽快送抵实验室。梅毒螺旋体标本从外生殖器的硬下疳处蘸取渗出液，置于载玻片上，加盖玻片后立即送检。
5.6.2前庭大腺：不要在黏膜部位使用乙醇。皮肤准备参见一般部位，吸取前庭大腺脓肿，使用厌氧转运培养基送至实验室。
5.6.3用于培养的子宫颈（宫颈管）标本
5.6.3.1准备阴道窥器，除温水外，避免使用润滑剂，插入阴道窥器，见到子宫颈，用棉拭子拭去多余的黏液，将涤纶拭子插入子宫颈，轻轻转动，并停留10--30s，取出拭子，置于细菌转运培养基。
5.6.3.2一般情况下，阴道标本培养不会产生有意义的结果，所以除B群链球菌筛检外，不推荐阴道标本培养。阴道标本不能用于厌氧培养。
5.6.4羊膜腔穿刺术：通常由医生经超声定位留取样本，置于封口的注射器或厌氧转运培养基送抵实验室。
5.7前列腺：用肥皂和水清洗阴茎头，经直肠前列腺按摩获取前列腺液，用无菌拭子采集前列腺液，在室温下运送标本，选择前列腺按摩前和最近时刻的尿液同时送去培养。
5.8尿
5.8.1女性：先以肥皂水清洗外阴部，再以无菌水冲洗，用无菌纱布擦拭，以手指将阴唇分开排尿，弃去前段尿，留取中段尿5～7ml于无菌试管内。
技术文件
页码：第3页共4页
5.8.2男性：翻转包皮，用肥皂水清洗尿道口，用清水冲洗，留取中段尿。
5.8.3儿童、婴儿：先以无菌生理盐水棉球洗净其外阴部或外生殖器，将无菌试管或瓶口对准尿道口，以胶布固定于皮肤上，待尿排出后送检。
5.8.4两侧肾盂尿：由专科医师采集，左右侧标本必须标明，避免混淆而误诊。
5.8.5膀胱穿刺：此法用于厌氧菌培养。耻骨上皮肤经碘酊消毒后，再以75%乙醇擦拭，用无菌注射器行膀胱穿刺，吸取尿液后排去注射器内的空气，针头插于无菌橡皮塞上及时送检，2h内进行接种。
5.9粪便标本
5.9.1自然排便采集：自然排便后，挑取其脓血、黏液部分2～3g，液体粪便取絮状物2～3ml，盛于灭菌容器内，或置于保存液（运送培养基）、增菌培养基中送检。
5.9.2直肠拭子：如不易获得粪便时，或排便困难病人及婴儿，可用直肠拭子采取，即以无菌棉拭用保存液或生理盐水湿润后，插入肛门内4--5cm（幼儿2--3cm）轻轻转动取出，插入卡布(Cary-Blair)运送培养基内或无菌容器内送检。
5.9.3粪便标本应该立即送检，室温保存不能超过2h，如不能及时送检可以放入磷酸盐甘油(pH7.0))或转运培养基，但不能超过24h。培养艰难梭菌的标本保存于20℃以下。培养沙门菌和志贺菌的标本应放置磷酸盐盱油溶液中保存。保存弯曲杆菌和弧菌的标本，需加CaCl2(100mg/L)试剂。
5.10脓及创伤标本
5.10.1封闭性脓肿消毒局部皮肤或黏膜表面后，用无菌注射器抽取，用无菌手术刀切开粟粒状脓肿(miliary absccss)，使用无菌注射器和针头采集露出的标本。
5.10.2将脓液注人多功能培养瓶或无菌试管内送检。疑为厌氧菌感染时，应做床边接种或置厌氧运送培养基内送检。
5.10.3开放性脓肿和脓性分泌物用无菌盐水或75%乙醇擦去表面渗出物，用拭子深入溃疡深处采集2支拭子，1支为涂片检查用，1支为培养用。
5.10.4大面积烧伤的创面分泌物用灭菌棉拭取多部位创面的脓液或分泌物，置灭菌试管内（注明采集部位）送检。
5.10.5对未引流脓肿：使用无菌注射器和针头，按无菌操作技术，从中采集脓性物。用无菌手术刀切开粟粒状脓肿，使用无菌注射器和针头采集露出的标本。
5.10.6疑为放线菌属、奴卡菌属感染时，在检查单上注明需要排除放线菌属、奴卡菌属。
5.11褥疮溃疡：用无菌盐水清洗表面后如得不到活检标本或抽吸物，则用拭子用力采集损伤底部。由于褥疮溃疡拭子临床价值不大，一般选择组织活检或针头抽吸标本。
5.12大疱、蜂窝组织炎、小疱：皮肤消毒同血液培养，用无菌针头和注射器抽吸液体或化脓性物质，如果获得了抽吸物，将之置于合适细菌转运培养基。如果没有得到抽吸物，将小疱或大疱性病变打开，使用棉拭子采集病变部位，置于转运培养基中。
5.13中心静脉导管标本：用无菌镊子将5cm导管尖端或近心端送至实验室。
5.14耳部标本
5.14.1内耳：穿刺前用肥皂水清洗外耳道再行消毒程序．最后用注射器穿刺鼓室抽吸脓液。对鼓室破裂者，用专用采样管中配备的细头软杆拭子采集脓液，脓液量大的也可采用注射器抽吸。
技术文件
页码：第4页共4页
5.14.2外耳：先用润湿的棉签清洁外耳道，再用专用采样管中配备的毛刷状采样拭子在外耳道内用力旋转摩擦取样。
5.15眼部标本
5.15.1结膜：采样前先用无菌盐水润湿拭子，再绕结膜取样，最好两眼各采集2支拭子；其中1支用于涂片。建议在床边接种。采集时，须小心地避免感染蔓延至眼部邻近区域。注意，须标明左眼、右眼的标本。
5.15.2角膜：由眼科医生采用刮取法采集标本；采集前先滴2滴局部麻醉液，再用角膜上皮刮铲刮取病变角膜组织，将刮擦物用少许生理盐水洗下，置无菌杯中送检。
5.16组织标本采集：表浅的感染组织和各种窦道标本可用棉签擦拭、小刀刮取、穿刺抽吸或手术切除，对窦道和瘘管应深部刮取，获得部分管壁组织。深部组织标本可在手术过程中或采取穿刺活检或抽取分泌物送检，也可使用相应的内镜采集活检标本。标本置无菌容器中并加入少量生理盐水以保持湿度，或置肉汤增菌液中送检。如怀疑为军团菌感染，肺组织切片不要滴加生理盐水（能抑制军团菌生氏）。如果怀疑为厌氧菌感染，应把组织放人厌氧的传输系统内立即送检。
5.17引流液：用70%乙醇消毒导管采集部位，用注射器从引流管无菌采集2～3ml。标本不能直接从引流袋放出，因引流液在袋中潴留时间太长容易滋生细菌。
5.18胃活检标本：仅用于幽门螺杆菌培养。需用适当的转运培养基-采集后1h内送抵微生物学实验室。
6.环境和安全控制
参见《质量管理》。
7.校准程序
无
8.参考文献
［1］中国合格评定国家认可委员会．CNAS-CL42：医学实验室质量和能力认可准则在临床微生物学检验领域的应用说明．2014．
［2］周庭银．临床微生物学诊断与图解．第3版．上海：上海科学技术出版社，2012．
编写者：审核者：批准者：
时间：2017/6/9时间：2017/12/30时间：2017/1/1
31 血液标本采集流程 注意点： 1、根据医嘱采集标本，根据检验目的与要求确定采集时间、方法和试管，并通知患者准备。 2、落实双人核对检验项目、检验时间、试管、电子条形码上的科室、床号、姓名、年齡、 住院号。标本容器准备：应根据真空采血对照表准备核对试管。 3、应严格执行无菌操作，严禁在正在输液或输血的肢体或针头、输液或输血穿刺点上方、 皮管内采血标本，应在对侧肢体采血。 4、如同时采多个项目的标本，采血顺序：血培养→不含添加剂的试管→凝血标本管→其他 标本管，需抗凝的试管拔出后按要求轻轻摇匀。 5、凝血功能障碍患者拔管后按压时间延长至10 min.。 1、 采血的目的和配合方法。 2、 采血前后的注意事项。 需空腹采血应提前通知患者，避免因进食而影响检验 1、 核对床号、姓名、检验单检验项目、采血量、试管。 2、 选择合适的静脉、穿刺点，上止血带，常规消毒皮肤，嘱患者握拳。 3、 載手套→穿刺→固定头皮针→接采血真空试管→根据目的采集所需血量→反折针头，拔/换采血管→松止血带、松拳→迅速拔出头皮针→用干棉签按压穿刺点1~2min.→脱手套。 操作前准备 试管准备 1、 核对医嘱/执行本，检验单、患者。 2、 根据检查项目准备核对试管、检查试管质量并贴好试管上的标签，不能遮挡试管中的刻度。 1、 操作者着装整洁、洗手、載口罩，掌握正确采集血液标本的方法。 2、 操作用物准备齐全，环境符合操作要求。 1、 查对床号、姓名。 2、 患者病情、意识状态、生命体征、正在进行的治疗。 3、 肢体活动情况和静脉充盈情况。 4、 穿刺部位皮肤情况：有无水肿、结节、疤痕、伤口等。 5、 患者的心理状态，沟通、理解及合作能力，需求等。 1、 再次认真查对，询问并观察患者反应，交代注意事项。 2、 整理床单位及用物，医疗废物按有关规定处置。 3、 标本及时送检。 采血 评估 告知 整理送检
微生物标本采集解读 微生物标本采集时机 ( ) A. 尽早采集：使用抗生素前 B. 抗生素停止用药1-2天后 C. 抗生素下次用药前 D. 抗生素血药浓度较低时采集。 微生物标本运送时机： A.要关注温度和时间。 B. 通常应在留取标本后2小时内送达检验科 C. 对一些温度敏感的细菌（脑膜炎奈瑟军、淋病奈瑟菌、流感嗜血杆菌等）应保温立即送检。 D.不必过于强调晨痰晨尿，更重要的是确保用药前采集和2小时内送检。 微生物标本保存（） A.如在2小时内不能送检，应将标本4度保存且不超过24小时（血培养室温保存） B.深部标本如需厌氧菌培养时，应床边接种或置于厌氧菌专用培养基运送。 C.检体来自无菌区域者：宜放室温或温箱保存；并加入营养的培养基中； D.检体来自有菌区域者：宜放冰箱保存；不可加入营养的培养基中； 血培养的规范采集的采血指征是什么 A.怀疑患者有血流感染 B.不明原因的发烧(＞38℃)或体温过低(＜36℃) C.白细胞增多（＞10,000/ul），粒细胞减少（＜1,000ul） D.休克，寒颤，僵直 E.严重的局部感染(脑膜炎，心内膜炎，肺炎，肾盂肾炎，腹部术后感染，…) F.心率异常加快，低血压或高血压，呼吸频率加快。 血流感染时血培养采血时机 A.尽可能在寒战或开始发热时采血 B.在接受抗生素治疗前 C.抗生素停止用药1-2天后 D.采血如已经应用抗菌药物进行治疗，应在下一次用药之前采血培养。 E.坚决不能从静脉滴注侧取血；应该采几套血液标本?
A.每位患者每次采血最少2套，3套更好 B.儿童类似于成人，应在24小时内采2－3次血培养 C.初发患者，绝不能只采1套标本 D.越多越好 血培养标本须间隔多久采集? A.急性败血症或骨髓炎、脑膜炎、肺炎等需同时或短时间内采集2套血培养，因为体内巨噬细胞吞噬系统会在15～30min内清除掉进入人体内的细菌。 B.可疑急性感染性心内膜炎患者要立即取血作血培养，1-2h内完成3套血培养的采集，采集后立即进行抗菌药的经验治疗。如果24小时内报告阴性，则继续采集2套血培养。 C.不明原因发热，可疑的亚急性心内膜炎或菌血症、真菌血症患者每间隔30分钟至1h采集1套，连续采集3套标本。如果24小时内报告阴性，则继续采集2套血培养。 微生物标本如何留取痰液（ABD） A.咳痰：咳痰前，患者用无菌生理盐水漱口。用力咳出深部痰，勿将唾液和鼻后分泌物当作痰咳出。 B.诱导痰：患者咳痰困难，可先清洁口腔黏膜、舌头和牙龈，再用无菌水或生理盐水漱口后，用超声雾化器，患者吸入20-30ml3%的NaCl，用无菌容器收集送检。 C.痰标本留少于1ml，2h内送检，4℃保存≤24h。 D.痰标本至少留1ml，2h内送检，4℃保存≤24h。 下列哪项是合格的痰标本，可以做痰培养：（） 细胞数/低倍视野 分类白细胞扁平上皮细胞__________________________________________ 5 >25 <10 4 >2 5 10~25 3 >25 >25 2 10~25 >25 1 <10 >25 有下列哪一种症状指征，可进行尿液培养（）
临床标本采集与运送规范 检验标本包括血液标本和其他各种体液标本。检验标本的采集是保证检验结果准确的前堤，要求规范采集并正确送检，特制定本规范。一、尿液标本的采集规范 (一)尿常规检查标本 1、使用清洁干燥容器，住院病人以清晨第一次尿为主，门、急诊患者可随时留取新鲜尿液约20ml送检。 2、尿标本应避免经血、白带、类使等混入。 3、标本留取后及时送检，不得超过1小时，以免细菌在尿中生长繁殖。 (二)尿培养标本 1.需留取清洁中断尿，注意无菌操作，避免污染。 2.病人先清洗外阴部，自行排尿，排尿过程中尿液不要中断，弃前段尿，用无 菌管接中断尿，塞好瓶塞后立即送检。 3.患者应停用抗生素三天后作尿培养检查。 4.尿中应加入防腐剂。 (三) 24小时尿标本 1、准备清洁干燥带盖的广口容器，容量为3000-5000mL。 2、病人于晨7时将尿全部排尽弃去，然后开始留尿，将24小时内历次所排尿液均留于容器中，包括次日晨7时所排最后一次尿。 3、测量尿液总量(mI)并记录，将全部尿液充分混均后，取出20- 50m1，
置于清洁干燥有盖容器中立即总检。 4、若天气炎热，可根据检验要求放入适量的防腐剂。 二、血液标本采集规范 1、理想的采集血标本的时间是早晨7: 00~8 : 00。 2、采集血液标本的真空采血管与容器注射器应干燥，针头不能过细， 3、血培养标本应在发热初期或发热高峰期采血。一般要求选择在应用抗生素治疗前采血，对已用药而不能终止的患者，也应在下次用药之前采血。 4.采血部位和数量成人首选肘部血管:正中静脉、贵要静脉、头静脉等，婴幼儿可采用大隐静脉、颈外静脉、股静脉等。 5、禁止在静脉输液的同侧肢体采集血标本。 6、采集血液标本时应根据检验日的及要求，准确采集标本量。 7、分装血液标本时应取下针头，将血液沿试管壁缓慢推入试管或其他相应容器。 8、对于抗凝的标本，要温和地使血液与抗凝剂混匀，防止剧烈摇动使细胞损伤。 9、标本送检:血液标本采集后应及时送检，血气分析应在30min内检测，慢则会因为全血中RBC的代谢，不断地耗02产生CO2，致使pHPO2降低PCO2 升高，而影响结果的准确性 血标本采集后应尽快送检，时问最好不超过2 h ①建立标本传送系统，加强对送检人员的培训、教育及监督。
[目的] 规范标本采集保证实验室检测前标本质量。 [范围] 微生物实验室所有标本. [职责] 采集、运送微生物标本的临床各科室工作人员. [标准操作程序] 1.血液、骨髓标本 1.1采集指征 对可疑血流感染患者未进行抗菌药物治疗前应及时进行血液培养可疑血流感染的患者出现以下一项或几项体征时应及时采集血培养： 1)发热(≥38℃)或低温(≤36℃)。 2)寒战。 3)白细胞增多(计数大于10,000X1 O9/L 特别有 “核左移’‘未成熟的或带状的白细胞)。 4)粒细胞减少(成熟的多核白细胞小于 1000X109/L)。 5)血小板减少。 6)皮肤粘膜出血。 7)昏迷。 8)多器官衰竭。 9)血压降低。 10)呼吸加快 11)降钙素原升高(PCT) 12) C 反应蛋白升高(CRP) 在评估可疑新生儿败血症时除发热或低烧夕卜很少培养出细菌应该补充尿液和脑脊液培养肺炎链球菌与流感嗜血杆菌菌血症的患儿(特别是2岁或以下的幼儿)一般出现于门诊,常伴有明显发热(>38.5 C)和白细胞增多(总数互20,OOOx 1 O 9/L )。老年菌血症患者,可能不发热或低体温，如伴有身体不适肌痛或中风可能是感染性心内膜炎的重要信号。 1.2血培养次数和采血时间 采血应该尽量在使用抗菌药之前进行推荐同时采集2-3套(不同部位)血培养以助于提高阳性检出率，区别病原菌与污染菌。(一套血培养为一瓶需氧培养加一瓶厌氧培养。一次静脉采血只能注入到1套培养瓶中)。尽可能选用可中和或吸附抗菌药物的培养基。临床对可疑菌血症患者应立即采集血培养标本，对间歇性寒战或发热可在寒战时或体温高峰到来之前0.5-1 h 进行采血。 除特殊情况之外（如怀疑细菌性心内膜炎），采集血培养后的2至5天内，无需重复采血培养。 1.3特殊的全身性和局部感染患者采集血培养的建议: 1.3.1急性心内膜炎:对于可能的心内膜炎患者必须在经验使用抗菌药物前30min 之内抽取血培养起始采集3套血培养，如果在24h 内仍报告为阴性则继续采集2套血培养，全部培养一共为5套。 1.3.2亚急性心内膜炎:需在24h 之内连续从不同部位抽取3套血培养，间隔30-60min 。如24h 内为阴性，则继续采集2套血培养，全部培养一共为5套。 1.3.3对于亚急性心内膜炎的评估皮肤消毒尤为重要，因为其主要的病原菌为皮肤定植菌如凝固酶阴性葡萄球菌。因此，血培养必须取自外周静脉而非留置的静脉导管。取自导管的血培养会伴有很高的污染风险从而导致错误的心内膜炎的结论。建议采用正确的皮肤消毒，从不同的外周静脉部位分别采集血培养不能从留置的导管采血。 1.3.4急性脓毒症:10min 内从不同的部位采集2-3套血培养。 1.3.5可疑菌血症但血培养持续阴性，应改变血培养方法如延长培养时间或增加特殊培养基以获得罕见的或苛养的微生物(真菌、结核菌等)。 1.3.6不明原因发热，如隐性脓肿、伤寒热和波浪热从不同体位先采集2一3套血标本24-36h 后估计体温升高之前(通常下午)再采集2套以上 4皮肤消毒剂: 1.4.1推荐使用碘酊、次氯酸和洗必太或碘伏。 1.4.2碘酊、次氯酸和洗必太的消毒效果要优于碘伏。 1.4.3消毒剂需要有足够的作用时间以保证消毒效果 (碘酊作用30s;碘伏作用1.5--2 min)。 1.4.4洗必泰的作用时间和碘酊一样但是没有过敏反应，因此不必擦去，但不能用于小于2个月的婴儿。 1.5静脉穿刺点皮肤消毒程序: 1.5.1 70%酒精消毒皮肤(以采血点为中心，螺旋式用力由内到外直径5cm 以上)，作用60秒; 1.5.2用碘伏消毒皮肤(以采血点为中心螺旋式用力由内到外直径5cm 以上)作用1.5-2min 或用碘酊消毒皮肤作用30秒； 1.5.3再用70%酒精脱碘(以采血点为中心，螺旋式用力由内到外直径5cm 以上)； 1.5.4静脉穿刺采血。 注:血液培养须特别注意消毒因许多微生物，尤
临床检验标本采集、运输、保存操作规程 目录 第一章、体液标本的采集、运输、保存操作规程 一、尿液标本采集、运输、保存 二、阴道分泌物标本采集、运输 三、精液标本采集、运输、保存 四、粪便采集、运输、保存 第二章、血液一般检验的标本采集、运输、保存操作规程 一、未梢血标本采集 二、静脉血采集、运输、保存 第三章、生化检验标本采集、运输、保存操作规程 前言 在临床工作中，检验标本的分析结果是临床医生诊断疾病、制订治疗方案的重要依据，而标本采集及送检工作的合格与否直接影响检验结果的真实性，进而影响疾病的诊治工作。为了进一步提高检验结果的准确性和可靠性，除了要求检验科提高检验质量水平外，还要求临床医护人员正确采集标本。为确保标本的正确采集、运输和保存，检验科特编写了临床检验标本采集、运输、保存操作规程，要求医护人员严格按操作规程采集、运输和保存标本。 第一章体液标本的采集、运输、保存操作规程 一、尿液标本采集、运输、保存 （一）检查项目 1．尿液干化学测定：尿液比重、pH 值、尿胆原、胆红素、潜血、酮体、蛋白质、白细胞、亚硝酸盐、葡萄糖、抗坏血酸。 2．尿液有形成份检测：包括红细胞及白细胞形态等。
3．其它：尿HCG、尿液红细胞显微镜形态分析。 （二）标本采集 【容器及采样量】 门诊病人由检验科提供专用塑料尿杯，采样量20-30ml。住院病人使用清洁容器取尿，再将尿液倒入专用的试管内，量约5-10ml。24小时尿液收集于清洁容器中，如小的带盖的塑料桶。 【标本种类及适用人群或项目】 （1）晨尿 即清晨起床后的第一次尿标本，为较浓缩和酸化的标本，血细胞、上皮细胞及管型等有形成分相对集中且保存得较好。门诊患者可采集清晨第二次尿标本。适用：住院病人、可疑或已知泌尿系统疾病的动态观察及早期妊娠试验等。 （2）随机尿（随意一次尿） 即留取任何时间的尿液。本法留取方便，但易受饮食、运动、用药等影响，可使低浓度或病理临界浓度的物质和有形成分漏检，也可能出现饮食性糖尿或药物如维生素C等的干扰。适用：门诊和急诊病人。 （3）其他 包括留取中段尿（女病人易受阴道分泌物污染，应采集中段尿）、导尿、耻骨上膀胱穿刺尿等。 【注意事项】 （1）避免阴道分泌物、月经血、粪便等污染，女性病人应采集中段尿，尽量避免经期做尿常规检查； （2）避免干扰化学物质（如表面活性剂、消毒剂）混入； （3）住院病人送检的标本要标上病人姓名，门诊病人的标本和检验申请单放在指定的标本收集盘上。
微生物常见标本的采集规范 一、血液、骨髓、胸腹水标本的采集 1、最好用药前采集，在发热高峰前1h内或发热高峰时采血最为理想。 2、采血量在5-10ml为宜，成人必须左右手各一套瓶（需氧+厌氧）、并标明左右手，儿童左右手各一瓶需氧。 3、轻轻颠倒混匀以防凝固，立即送检（2小时之内），禁止4℃冷藏保存。 4、骨髓和胸腹水标本或其他穿刺液标本，抽取后将5-10ml直接打入一套血培养瓶内（需氧+厌氧），并注明标本种类。 二、尿液标本的采集 1、清洁中段尿的采集： 通常以晨起第一次尿液、未服用抗生素前送检以提高阳性率。留取标本后尽快送检，不得超过1小时。 女性患者应用清水和肥皂或清洁剂清洗外阴，男性应清洗龟头。排出前段尿后，打开无菌尿杯或无菌管留取中段尿。 2、插管尿的采集: 直接插管或称临时插管尿标本采集： 用夹子钳夹插管约30 分钟，以获取足够尿液。乙醇消毒插管的取样端口或导尿管的适当部位后，应用注射器抽吸留取尿标本，将获取的尿标本转至带盖的无菌管中。尿路插管不做培养，拒收！ 3、以下是不适于尿培养的尿标本： 1）自留置导尿管内获取的尿液标本可能有定值菌的污染。
2）集导尿袋内获取的尿液标本，可能有定值菌及环境微生物的污染。3）导管尖因为不可避免地受到尿道菌群的影响而不适合作为尿培养标本。 三、粪标本的采集： 1、直肠拭子法：先将肛门周围洗净，用无菌拭子蘸生理盐水，放入 直肠旋动取出放入拭子转运管送检。 2、自然排便法：清洁便盘内排便，挑取脓血或粘液部分，放入无菌 粪杯送检。 四、下呼吸道标本的采集（痰、肺泡灌洗液） 1、咳痰：患者清晨清水漱口3次后，深咳自下呼吸道痰液，量≥1ml， 避免不合格的口水痰。 2、诱导性痰：清洁口腔后用水漱口，用喷雾器吸入约25ml 3%-10%生理盐水诱导痰。 3、气管抽吸痰：病区医生采样。 4、支气管肺泡灌洗液：（做支气管镜检查）采集量10ml。 五、上呼吸道标本的采集 1、鼻：用无菌拭子生理盐水湿润后，插入鼻孔2cm，用力旋转 2、鼻咽：用无菌湿润拭子经鼻腔插入鼻咽后部（约2.5cm），旋转拭子5圈或停留10秒吸收分泌物。 3、咽部；采集前清水反复漱口，将舌向外拉，将棉拭子通过舌根到咽后壁或腭垂的后侧，涂抹数次，但拭子要避免接触口腔和舌粘膜。 4、常温2小时内送检
静脉血标本采集操作规程 1. 目的 抽取静脉血标本以做各项检验。 2. 适用范围 适用于本科做生化、免疫、血常规等项目所需血液标本的采集。 3. 物品准备：止血带、一次性垫巾、无菌棉签、复合碘消毒液、一 次性采血针、负压真空管（数量和种类根据要求选取后检查灭菌日期、有效期及有无漏气）、试管架、编号笔、口罩。 4. 检验申请单填写要求： 4.1 检验申请单用钢笔填写，使用正楷字，字迹清楚，填写完整。 4.2 填写内容包括：受检者姓名、性别、年龄、临床诊断、送检标本、检验项目、标本采集年月日时、申请医生及采样者签名。 5. 操作步骤： 5.1 查对检验申请单、受检者姓名及是否已按医嘱准备，向受检者解释操作目的，以取得合作。在采血管上贴好与检验申请单相对应的标签。 5.2 选择血管，常用肘窝静脉、肘正中静脉、前臂内侧静脉，小儿可采用颈外静脉、大隐静脉。 5.3 在穿刺部位肢体下放一次性垫巾、止血带。 5.4 用复合碘棉签消毒穿刺部位。
5.5 在静脉穿刺部位上方4-7厘米处扎止血带，嘱受检者握紧拳头，使静脉充盈显露。 5.6 穿刺:推荐使用真空采血技术。摘掉静脉穿刺针上的保护套，进行静脉穿刺，穿刺成功后，用贴好标签的负压真空管采集静脉血，松开止血带，受检者松拳，用棉签压住进针处，拔出针头，嘱采血对象按压2-3分钟。 5.7 为受检者整理衣袖。 5.8 采血完毕后，产生的医疗垃圾按规定分类处理。 6. 注意事项 6.1 采血前应核对好姓名和检验项目，明确标本要求。 6.2抗凝管收集血标本后，立即将试管轻轻颠倒5～6次，使血液与抗凝剂充分混匀。 6.3 一般生化、免疫检验用干燥非抗凝管收集标本，采样量3-5ml。若检验项目较多，应适当增加采样量。 6.4 血常规检验用EDTAK2抗凝管收集标本，采样量0.5-1毫升。 6.5 凝血四项、血红蛋白电泳、3P试验用枸橼酸钠（0.2ml）抗凝管收集标本，采样量必须准确，为1.8ml。血沉用枸橼酸钠0.4ml抗凝，抽血1.6ml。 6.6 高铁血红蛋白还原试验（G6PD）以枸橼酸钠0.2ml抗凝，另加入葡萄糖20mg，抽静脉血1.8ml，混匀。 6.7 糖化血红蛋白测定需用肝素管抗凝。 6.8 血液粘度测定需同时抽取血常规、血沉和肝素抗凝血（5ml）三份样本。 6.9 餐后，血糖、血脂可增加而影响测定结果，故一般应空腹抽血。有些食物成分：高蛋白、高脂及饮食可引起血中蛋白、血脂、尿酸增高；香蕉、咖啡等可引起尿中儿茶酚胺代谢产物的测定等。 6.10 药物影响：如异菸肼、庆大毒素、氨芐青毒素可使谷丙转氨酶活性增高、咖啡因
病原微生物检验标本采集、运送操作规程正确的标本采集，运送，保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要，为了准确检出病原菌，避免漏检与误诊，临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本的选择，采集，运送，保存及处理的一般原则。 一、标本采集的一般原则 1.早期采集 采集时间最好在病程早期，急性期，且必须在使用抗菌药物之前采集，确保病原菌的检出。 2.无菌操作 采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正常菌群的污染，使病原菌与正常菌群混淆，造成临床误诊。采集的标本应存放在无菌容器内，容器不能使用消毒剂处理，标本中也不能添加防腐剂，以免降低病原菌的检出。 3.适量的标本 标本量过少可能导致假阴性结果。 4.适当的采集方法 对于厌氧菌，需氧菌或兼性厌氧菌的采集方法是不同的，用于厌氧菌培养的标本应尽量用注射器采集抽取物，室温保存，不能冷藏和冷冻。 5.盛放标本的容器 采集标本应存放在无菌，防漏，应带有螺旋盖的容器内。 二、标本的运送 1.标本采集后立即送检，若有延迟也应在2小时内送到实验室，否则会影响病原菌的检出，一般性的细菌培养标本若需延迟送检时，应置于4度冰箱保存，且不能超过24小时。 2.临床标本最佳运送时间取决于标本的量，少量液体（小于1ml）或组织（小于1cm3）应在15~30分钟内送到实验室，较多量的标本置于运送培养基中可放12~24小时，厌氧培养标本原则上是床边接种，如延迟送检，需保存在厌氧运送培养基中，室温保存，不得超过24小时。 三、不同标本的采集，运送 （一）血液标本采集，运送
1.血培养指针征 当患者出现：发热（大于38度）或低温（小于36度），寒战，白细胞增多,皮肤黏膜出血，休克，多器官衰竭，血压降低，c反应蛋白升高及呼吸加快，血液病患者出现粒细胞减少，血小板减少等，具备上述一种或几种体征时，临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养，对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前，及时做血培养。 2.对怀疑菌血症、真菌血症的患者，在考虑使用抗菌药物之前，应立即采集血培养标本。必须同时或间隔短时间内采集２套以上血培养标本。成年患者：推荐同时采集２－３套（不同部位）血培养标本（即双瓶双臂同时采集血培养标本），采血量每瓶不少于5ml;婴幼儿患者：推荐同时采集２次（不同部位）血培养标本,采血量每瓶不少于2ml。（少于病人总血容量的1%）.在采取血培养后的2—5天内，无需重复采取血培养。两个例外：细菌性心内膜炎和金黄色葡萄球菌菌血症。? 3.血标本采集的量是影响检出率的最重要的因素。 检出率与采血量成比例增长，每增加1ml的血液，病原菌的检出率就会相应增加。儿童患者血液中病原菌浓度较高，血培养量无需等同于成人。采用一对（需氧瓶+厌氧瓶）组合，比采用二个需氧瓶的组合可检出更多的葡萄球菌、肠杆菌科细菌和厌氧菌。采血量不能满足推荐的量时，应首先满足需氧瓶的需要。? 推荐从外周静脉采集血液标本,不推荐静脉留置导管，因其常伴有高污染率。如果必须从留置导管内采血，也应同时从外周静脉采集另外一个血培养标本以帮助阳性结果的判读。 4.血标本采集的注意事项 在采血之前，血培养瓶的橡皮塞需使用75%酒精消毒并干燥。然后再进行穿刺部位的皮肤消毒。严格按照“酒精、含碘消毒剂、酒精”的消毒步骤操作，并等待足够的消毒时间。严格无菌操作，不允许在皮肤消毒后用手接触静脉，除非带有无菌手套.不推荐采血和接种血培养瓶更换注射器针头;采集后的血培养瓶应在1小时之内送往实验室,血培养瓶在接种前和接种后均不得冷藏或冷冻。 (二)痰培养标本采集，运送 1.痰培养指征 上呼吸道感染包括咽炎，喉炎，会咽炎等都可采集鼻，鼻咽，口咽拭子标本培养。下呼吸道感染：凡是咳嗽，咳痰，痰呈脓性，粘稠或血性等都可采集痰标本。
临床常见微生物标本的采集与运送 唐玉英 正确的标本采集，运送，保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要，为了准确检出病原菌，避免漏检与误诊，临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本的选择，采集，运送，保存及处理的一般原则。 一标本采集的一般原则 1.早期采集采集时间最好在病程早期，急性期，且必须在使用抗菌药 物之前采集，确保病原菌的检出。 2.无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正 常菌群的污染，使病原菌与正常菌群混淆，造成临床误诊。采集的标本 应存放在无菌容器内，容器不能使用消毒剂处理，标本中也不能添加防 腐剂，以免降低病原菌的检出。 3.适量的标本标本量过少可能导致假阴性结果。 4.适当的采集方法对于厌氧菌，需氧菌或兼性厌氧菌的采集方法是不 同的，用于厌氧菌培养的标本应尽量用注射器采集抽取物，室温保存， 不能冷藏和冷冻。 5.盛放标本的容器采集标本应存放在无菌，防漏，应带有螺旋盖的容 器内。 二标本的运送 1.标本采集后立即送检，若有延迟也应在2小时内送到实验室，否则会 影响病原菌的检出，一般性的细菌培养标本若需延迟送检时，应置于4 度冰箱保存，且不能超过24小时。 2.临床标本最佳运送时间取决于标本的量，少量液体（小于1ml）或组织
（小于1cm3）应在15~30分钟内送到实验室，较多量的标本置于运送培养基中可放12~24小时，厌氧培养标本原则上是床边接种，如延迟送检，需保存在厌氧运送培养基中，室温保存，不得超过24小时。 三不同标本的采集，运送 （一）血液标本采集，运送 1.血培养指针当患者出现：发热（大于38度）或低温（小于36度），寒战，白细胞增多,皮肤黏膜出血，休克，多器官衰竭，血压降低，c反应蛋白升高及呼吸加快，血液病患者出现粒细胞减少，血小板减少等，具备上述一种或几种体征时，临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养，对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前，及时做血培养。 2.对怀疑菌血症、真菌血症的患者，在考虑使用抗菌药物之前，应立即采集血培养标本。必须同时或间隔短时间内采集２套以上血培养标本。成年患者：推荐同时采集２－３套（不同部位）血培养标本（即双瓶双臂同时采集血培养标本），采血量每瓶不少于5ml;婴幼儿患者：推荐同时采集２次（不同部位）血培养标本,采血量每瓶不少于2ml。（少于病人总血容量的1%）.在采取血培养后的2—5天内，无需重复采取血培养。两个例外：细菌性心内膜炎和金黄色葡萄球菌菌血症。 3. 血标本采集的量是影响检出率的最重要的因素。检出率与采血量成比例增长，每增加1ml的血液，病原菌的检出率就会相应增加。儿童患者血液中病原菌浓度较高，血培养量无需等同于成人。采用一对（需氧瓶+厌氧瓶）组合，比采用二个需氧瓶的组合可检出更多的葡萄球菌、肠杆菌科细菌和厌氧菌。采血量不能满足推荐的量时，应首先满足需氧瓶的
标本采集、运送、保存成序 1.目的 规范标本采集程序，保证实验室检测前标本质量。 2. 范围 微生物标本。 3. 职责 3.1 医护人员和检验人员负责指导病人如何正确留取标本。 3.2 标本运输人员负责收取标本和运输标本至微生物室。 4. 程序 4.1 采集标本前，采样人员根据检验申请单检验项目的要求，确认采样计划并进行适当的准备工作，包括核对遗嘱、打印条形码、选择合适的标本容器、粘贴条形码及指导病人做好采样前的准备工作等。 4.2 认真核对病人、标本容器和检验申请单是否一致，严防差错。 4.3 标本送到微生物室，标本运输人员必须与微生物室标本接收人员对标本进行核收登记并签名 4.4 所有标本必须记录采样时间并立即送检，一般不得超过2h. 5 采集方法 5.1 血液及骨髓 5.1.1 血液 5.1.1.1采血时间：①在抗菌药物治疗前；②尽可能在患者寒战开始时、发热高峰前30-60分钟内采血；③如患者已经应用抗菌药物进行治疗，应在下一次用药之前采血培养；④同时或短时间内完成几套血
培养采集，除非怀疑存在持续性菌血症时（如亚急性感染性心内膜炎1-2小时从不同部位采集3套标本） 5.1.1.2采血量：成人一次采血5～10ml,儿童2～5 ml婴幼儿为1～2ml。（附注：儿童的采血量不能超过其总血容量的1%）。 5.1.1.3采血方法：①成年病人，推荐同时在不同部位采集2～3套（每套包括一瓶需氧瓶、一瓶厌氧瓶）；对于感染性心内膜炎和真菌血症则应多次采集；对于婴幼儿病人，推荐同时在不同部位采集2～3瓶。因为儿童患者很少见厌氧菌感染，因此推荐仅使用需氧瓶而不常规推荐同时做厌氧培养。②采血量充足时，应先注入厌氧瓶，后注入需氧瓶；采血量不足时，应先注入需氧瓶，后注入厌氧瓶。 5.1.2 骨髓标本用骨髓穿刺针从髂骨采集。 5.1.3 标本保存：采集标本后立即送到实验室，不能及时送检可置于室温，切勿放入冰箱。冬季血培养瓶在送检过程中应采取一定的保暖措施。 5.2 脑脊液标本：由临床医师以无菌要求做腰椎穿刺，抽取脑脊液2～3ml,盛于无菌容器中送检。脑膜炎奈瑟菌离体后能产生自酶，会迅速自溶，肺炎链球菌及流感嗜血杆菌离体后也易死亡，因此，脑脊液无论图片或培养，必须于采集后立即送检。 5.3 上呼吸道标本 5.3.1 鼻咽标本：将鼻咽拭子缓缓地伸进鼻孔直至鼻咽喉部（注意：不可用力），轻轻转动，并于该深度停留20～30s,然后迅速地抽出（注意：避免受口或咽部中细菌的污染）。
微生物标本采集、送检及处理原则 一、标本采集的一般原则： 1、病程早期、急性期或症状典型时，使用抗生素前。 2、无菌采集应无污染，严格进行无菌操作。 3、根据目的菌的特性用不同的方法采集适量标本，采集量不应过少。 4、注意在不同病程采集不同部位标本。 5、采集标本时要防止传播和自身感染。 二、标本的处理： 1、标本保存在4℃环境中，在2h之内送检。脑脊液则要在25 ℃保存，用于细菌培养的标本保存时间不应超过24h。对环境敏感的细菌应保温并立即送检。 2、标本中可能含有致病菌，必须注意安全防护。切勿污染环境。对于烈性传染病标本运送时更要由专人运送，严格按规定包装。 3、厌氧性标本应放在专门的运送瓶或试管内运送，有时可直接用抽取标本的注射器运送。 Ⅰ血液及骨髓标本： 血液标本的细菌培养是诊断菌血症或败血症的基本方法。如从患者血液中检出细菌，一般应视为病原菌。 常见的病原菌主要有金黄色或表皮葡萄球菌、链球菌（A、B群、肺炎链球菌等）、肠球菌、产单核细胞李斯特菌、脑膜炎奈瑟菌、伤
寒及副伤寒沙门菌和厌氧菌等。 1、采血时间及次数 2、抽血部位及抽血量 3、报告方式：培养5d无菌生长者报告“培养5d无菌生长”。 查见细菌报告菌名和药敏结果。 4、菌血症、败血症的诊断标准：1）两次培养均出现同一种细菌（可排除污染）； 2）发病星期后血中抗体滴度上升。 Ⅱ脑脊液标本： 脑脊液的细菌学检查对于细菌性脑膜炎的诊断有重要价值。正常人的脑脊液是无菌的，检出细菌提示有细菌性（急性化脓性、结核性等）脑膜炎。 常见的病原菌主要有脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、链球菌（A、B群和肺炎链球菌）、葡萄球菌、产单核细胞李斯特菌、结核分枝杆菌等。 1、涂片检查： (1) 一般细菌涂片检查：例如：革兰阴性、凹面相对的球菌，可能是脑膜炎奈瑟菌；链状排列的革兰阳性球菌；长丝状等多形态性的革兰阴性杆菌，可能是流感嗜血杆菌。 (2)结核分枝杆菌涂片检查 (3)新生隐球菌涂片检查
病理标本采集及送检标准操作程序 一、目的 规范标本的采集和送检，保证送检标本的质量，从而确保病理诊断的准确性，为病人的诊断及治疗提供正确指导 二、适用范围 组织学、细胞学标本的采集、固定、包装运输，申请单填写。 三、操作人 临床医师 四、工作流程 （一）组织活检标本 1、病人知情同意:所有为了疾病的诊断而采取的有创组织活检，在活检前均应向患者和或其家属说明活检病理诊断的必要性。特别向其说明，病理诊断并不是万能的，有时病理活检并不能得出明确诊断，使患者和/或其家属了解病理诊断的局限性，使其对活检不能明确诊断表示理解，必要时（根据各自医院的相关规定）和患者签署知情同意书 2、申请单填写:根据检测要求填写金域检验中心相应的专用申请单，病人信息对病理诊断非常重要，临床医师应认真、详细填写申请单各项内容（包括医生姓名、联系电话），特别要填写有意义的阳性体征、影像学检查及其它检验结果，以前做过病理学检查（包括细胞学和组织学）的，应填写检查结果。妇科标本应填写月经史、妊娠史。字迹应清晰可辨。
3、样本获取 （1）组织样本获取 ①对于病理诊断来说，组织越多，诊断成功率越高，因此临床医师在切取组织时，在病人状况允许的情况下，尽量多取组织。 ②取材时应尽量获取未坏死组织，较大肿瘤中央区域常常坏死，做穿刺时应避开坏死区域。 ③取材动作应轻柔，尽量避免挤压组织。 ④肿瘤切除标本应标记标本的方位，并在申请单中记录清楚，以便在发报告时报告各切缘情况，建议对下述标本进行方位标记。 A.带皮肤的肿瘤在标本的十二点位用缝线标记。 B.不带皮肤的软组织肿瘤、乳腺肿瘤、甲状腺肿瘤切除标本分别在十二点位和前面用长度明显不同的缝线标记。 C.宫颈环切术标本在12点位用缝线标记； D.肠管切除标本于近断端用缝线标记 E.肾切除标本分别用长度明显不同的缝线标记输尿管与肾血管切缘。 F.膀胱切除标本分别用长度明显不同的缝线标记左、右输尿管及尿道切缘。 G.子宫全切、次全切标本可在子宫前壁用缝线标记。 H.其它部位肿瘤以方便病理医师识别切缘为原则进行标记。 （2）组织标本固定 ①标本应完整送检，尽量不要将同一份标本分开，分送不同单
临床细菌检验标本的采集、运送、保存和处理 正确的标本采集、运送、保存和处理对于保证临床细菌室的工作质量非常重要，应予高度重视。实验室有责任将标本选择（包括时间和解剖部位）、收集、保管、运送、接受和安全等 关键性信息，用户里手册的形式提供给各临床部门参考。 一、标本管理的安全警示 1．所有标本的采集、运送和处理应在无菌操作，防止污染的原则下认真进行。 2．已采集原始标本都应置于防漏、密封的无菌容器中运送。 3．带针头的注射器运送标本时用无菌试管或防护装置套住注射针，再置于防漏塑料袋中运送至检验科。 4．采集足够量标本，材料不足可能导致假阴性。 5．每份标本都应标记患者姓名、送检号码、标本来源、具体部位、日期、时间及相关临床信息。 6．常规性细菌学检验的标本，采集后不能超过１小时送至检验科，4℃保存也不能超过24小时，怀疑厌氧菌感染的标本应在半小时内送至检验科（不能及时运送组织标本必须在 厌氧环境中25℃不超过24小时）。 7．脑脊髓液、生殖道、眼睛、内耳标本应立即送检，绝不可冷藏。 二、标本的处理和要求 1．血液和骨髓： 1）急性脑膜炎、骨髓炎、关节炎、细菌性肺炎、肾盂肾炎发热患者，应在抗生素治疗或更换前，从不同部位采集血液标本，做2次血液培养，分别接种于各种培养瓶中 立即送检置于孵箱内培养 2）疑似心内膜炎患者：急性病例在抗生素治疗或更换前1—2小时，从不同部位采集血液标本，做3次血液培养 3）亚急性病例：第一天24小时内，相隔1小时连续采集3次血液做培养，若24—48小时全部阴性，再采集2—3次血液做培养 4）若已经抗生素治疗患者，连续3天，每天取2次血液做培养 5）严格无菌技术采集血液血培养瓶后立即送检，切不可放冰箱暂存。 2．脑脊液： 脑脊液采集后，置于无菌试管中，15分钟内送检，绝不可冷藏。每种检验最小需 要量：细菌培养≥1ml,真菌≥2ml,抗酸杆菌≥2ml. 3．尿液： 1）中段尿采集：清洁外阴及尿道口周围，自然排尿，让尿流不间断，截留中段尿，，置于无菌尿杯中立即送检。尿量不少于1ml. 2）直接插导管采尿：一般插入导管后先让尿流弃15ml再留取培养标本。尽量不采用此法，极易将尿道细菌丛进入膀胱增加医源性感染危险。 3）滞留导管采集尿：用75%酒精消毒导管口，用针筒抽取5—10ml尿置于无菌容器中立即送检，滞留导管会使膀胱带有细菌，尽可能不采用。 4）尿液采集后2小时内必须送检，立即处理。规定每日一次。 5）若同一份标本检到3种以上不同细菌则认为标本污染。一般认为革兰氏阴性杆菌菌落计数大于105cfu/ml,革兰氏阳性球菌菌落计数大于104cfu/ml,方有诊断意义。 4．痰液： 1）先用冷开水漱口清洗咽喉，用力咳出痰液置于无菌容器中立即送检，2小时内接种。 2）符合要求的痰液应在低倍镜视野中鳞状上皮≤10个，白细胞≥25个。
检验标本的采集与运送规范（护理） 一、血液常规采集与运送规范 （一）、常用真空采血管的种类 1、促凝管／分离胶促凝管（橙色／黄色）：用于医学检验中生化学、免疫学、 血清学、各种病毒检测及血库检查血液标本的采集与盛装。管壁经特殊处理，防止挂壁及溶血现象。 2、枸橼酸钠１:９（蓝色）管：用于凝血机制等检查，按抗凝剂与血样体积比为 1：9设定的真空采血管，具有准确的血液量与抗凝剂总量，配比精度较高。 3、肝素钠／锂（绿色／墨绿色）管：用于急诊生化、血液流变学、全血铅测定 的血液标本采集。对血液成份干扰少，不影响红细胞体积，不引起溶血。具有血浆分离速度快，与血清标本指标兼容性强等优点。 4、EDTA（紫色）管：抗凝剂为乙二胺四乙酸（EDTA，分子量292）及其盐， 适用于一般血液学检验，不适用于凝血试验及血小板功能检查，亦不适用于钙离子，钾离子，钠离子，铁离子，碱性磷酸酶，肌酸激酶和亮氨酸氨基肽酶的测定及PCR试验。 （二）多管采样时采集次序 多管采血时一般按下列顺序：凝血试验→血沉→血常规→其它。以防止凝血因子活化，或者血小板聚集而影响检验结果。 多项检测同时采血时应按下列顺序采血：①血培养；②无添加剂管或促凝管；③凝血管；④有添加剂管的顺序为：a．橼酸盐管；b．肝素管；c．EDTA管；d．草酸盐/氟化钠管。 （三）各种血标本的采集及注意事项 1、血常规检验标本 一般用EDTA-2K(EDTA-K2?2H2O) 1.5～2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管,紫色帽）采血。 采血注意事项： 1)应按抗凝管刻度准确采静脉血至2ml。 2)采血后立即上下颠倒混匀（5～10次，不可用强力震荡,以免造成溶血。）；
第六节交叉配血标本的采集 【护理目标】 遵循无菌操作原则,患者、标本、送检准确。 【操作重点步骤】 1．严格执行查对制度、无菌技术操作原则、标本采集原则。 2．需两人共同核对医嘱,患者的血型必须与用血申请单、交叉配血申请单、血型 检验报告单、医嘱上的血型相符。 3．告知患者/家属交叉配血的目的和配合方法及采血后的注意事项。 4．按静脉采血法评估患者的静脉、皮肤情况并进行采血。 5．根据申请用血量决定交叉配血标本的量，若申请用血为200 mL则标本量为2 ｍL，申请用血量每增加20０mL标本量增加1 mL。 ６.床旁采血前再需两人同时在床旁再次核对医嘱、患者(按采血容器标签上内容)、患者血型、用血申请单、交叉配血申请单。 ７.采血完毕，标本连同输血申请单马上送输血科（或检验科)。 8．医疗废物按“感染性医疗垃圾”处理。 【结果标准】 1.患者／家属对所做的护理操作和解释表示理解和满意。 2.采血准确、送检及时。 【操作流程及要点说明】 与静脉采血法流程图同。
第七节血培养标本的采集 【护理目标】 标本采集时间及容器符合检查要求，标本无污染,患者安全。 【操作重点步骤】 1．严格执行查对制度、无菌技术操作原则、标本采集原则、标准预防原则。 2．评估患者的病情、抗生素使用情况，准备血培养基。 3.告知患者/家属采血的目的、方法及采血后的注意事项。 4.根据医嘱、评估结果选择恰当的血培养基和采血量。 5．采血过程中严格无菌技术操作,防止污染。 ６．在申请单上准确记录采血量、采血时间、操作者姓名。 7.采血后,标本马上送检验室，防止标本变质、被污染。 ８．医疗废物按“感染性医疗垃圾”处理。 【结果标准】 1.患者／家属对所做的解释和护理表示理解和满意。 2．采取标本方法正确，标本符合检验要求。 3.标本送检和异常结果回报及时，异常情况得到及时处理。
标本采集与运送知识考试题 一、填空（20分，每空格1分） 1、采集血培养要从不同的部位获得＿2~3套＿套血培养，最好在＿5＿分钟内采集 2、从静脉取血不宜从静脉导管或静脉留置口取血，除非怀疑＿导管相关血流感染＿；若从导管取血，必需同时 从＿静脉＿取血 3、尿液标本尽量采集晨起第一次尿，且应在膀胱内停留＿6~8＿小时以上，所以夜间最好＿少＿饮水。尿液培 养标本宜立即送检，＿2＿小时内接种。 4 管者20号＿号针头 5 6 7 8 9 二、 1 A、1套 B、2 2 A、1% B、2%C 3、75% A、20秒 B、 4、血培养标本延迟上机的时间不能超过几小时？（D） A、2小时 B、4小时 C、10小时 D、20小时 5、留置导尿管吸取尿液可先夹住导尿但不能超过（C） A、10分钟 B、20分钟 C、30分钟 D、60分钟 6、怀疑肾结核时应连续几天采集晨尿？（B） A、2天 B、3天 C、5天 D、7天 7、以下那份尿标本可以做培养？（D） A、导尿管接口处脱开收集的尿 B、24小时尿 C、尿袋里的尿 D、用无菌方法抽取导尿管前端的尿
8、肛拭子采集大便标本需将棉签插入肛门约几厘米并轻轻旋转（B） A、3 B、5 C、8 D、10 三、是非题（10分，每题1分） 1、成人每次只采一瓶血培养标本（×） 2、每套血培养标本采血量为5~10ml(×) 3、婴幼儿一般不做厌氧瓶，所以只需采一瓶血培养标本（√） 4、血培养标本抽好后可以放入冰箱或温箱内（×） 5、尿液培养标本最好直接导尿留取（×） 6 7 8 9 10 1 检验目的 2 3 答：75% 4 答：推荐在更换新管时留取尿标本；集尿袋里的尿液不能作培养；导尿管末端的尿液也不能用于培养；长期留置导尿管病人的尿培养没有临床意义；标记尿液来源于留置导尿管。
《微生物标本采集与运送规范》培训试卷科室姓名职业得分 一、单选题50分（每题5分） 1. 微生物实验室误差最大的影响因素为: ( ) A. 实验前误差 B. 实验误差 C 验后误差 D. 随机误差 2. 血培养必须在( )内送检 A. 30min B. 1h C. 2h D. 4h 3 血培养的阳性检出率与( )成正比例的关系 A. 温度和时间 B. 采血量和采血时间 C. 采血量和采血套数 D. 采集方法和采血量 4. 某患者采血培养1套,培养结果为“表皮葡萄球菌”,判断这是污染菌还是致病菌,需要( ) A. 增加消毒次数 B. 增加采血量 C. 增加采血套数 D. 延长培养时间 5. 血培养瓶接种前和接种后,放置的最佳温度为( ) A. 0℃ B. 4℃ C. 室温(15~25℃) D. 35℃ 6. 下呼吸道感染患者最佳的送检标本为( ) A. 痰液 B. 支气管肺泡灌洗液(BALF) C. 咽拭子 D.唾液(口水) 7. 下呼吸道感染患者,除了做痰培养以外,还应该做( ) A. 血培养 B. 咽拭子 C. 厌氧菌 D. 分泌物 8. 下列申请单中标本采集部位不确定,检验目的不明确,属于不合格申请单的是( ) A. 中段尿培养 B. 痰培养 C. 分泌物培养 D. 脑脊液培养 9. 中段尿标本最常见的影响因素是( ) A. 容易受污染 B. 喝水过量 C.喝水过少 D. 无影响 10. 下列尿液标本中适合做厌氧菌培养是( ) A. 清洁中段尿 B. 留置尿管导尿 C. 耻骨上膀胱穿刺 D. 24h尿 二、多选题25分（每题5分） 1. 下列标本类型中, ( )属于有价值的标本,有重要的临床意义,鼓励送检 A. 血液 B. 骨髓 C. 胸腹水 D.脑脊液 E. 关节液 2 常用的拭子标本不适合作为送检标本的原因有( ) A. 使用方便 B. 标本量太少 C. 容易干燥 D. 不易接种到培养基中 E. 木(竹)签中含有抑菌物质 3. 下列关于痰液标本采集和运送的做法正确的有( ) A. 采样前应刷牙（不用牙膏）或用冷开水漱口,以避免口腔正常菌群污染 B. 采取晨痰第一口痰最佳,咳痰时应咳取深部痰液 C. 做结核分支杆菌检查时,痰液量应增加 D. 肺部感染患者中有25%~50%可能会有菌血症,因此应同时做血培养 4. 下列关于血培养标本采集和运送的做法正确的有( ) A. 在使用抗菌药物治疗前采集 B. 如患者已经使用抗菌药物的,应在下次使用抗菌药物之前采集 C. 应在患者寒战开始时,或发热初起时采集 D. 血培养标本应按“套”采集,采集套数为2~3套,不能采集单一瓶数 E. 必须严格执行无菌操作,避免污染,采集后应快送检,如未能及时送检,应放置4℃冰箱保存 5.下列痰培养标本属于不合格标本,应予拒收的有( ) A. 24h内重复采集的痰样本 B. 唾液(口水) C. 咽拭子 D.. 痰液做厌氧菌培养 三、简答题25分 简述微生物样本采样基本原则