毕赤酵母表达知识
- 格式:doc
- 大小:98.50 KB
- 文档页数:21
由于甲醇营养型酵母菌体内无天然质粒,所以携带外源基因的重组体必须整合于染色体中才能实现外源基因的表达。
整合表达的优点在于保持外源基因稳定性并可产生多拷贝基因。
典型的毕赤氏酵母表达载体含有醇氧化酶基因的调控序列,主要的结构包括:5’AOX1启动子片段、多克隆位点(MCS)、转录终止和polyA形成基因序列(TT)、筛选标记(His4或Zeocin)、3’AOX1基因片段,作为一个能在大肠杆菌中繁殖扩增的穿梭质粒,它还有部分pBR322质粒或COLE1序列。
如果是分泌型表达载体,在多克隆位点的前面,外源基因的5’端和启动子的3’端之间插人了分泌作用的信号肽序列。
在这个分泌信号的引导下,外源蛋白在内质网和高尔基体中经修饰和加工后能够由胞内转移至胞外,将成熟的蛋白质分泌到细胞外。
为方便于操作,通常表达载体都是穿梭质粒。
表达载体与酵母染色体有单交换和双交换整合2种方式,单交换整合时,或插入A0X1位点,或插入his位点。
有文献报道,以his4作为整合位点时,染色体突变株与表达盒间存在基因转换,偶而可使Laz表达盒丢失,故AOX1位点更好。
一般认为,单交换转化效率比双交换效率高,且易得到多拷贝整合,其发生机制可能是重复单交换引起的。
携带外源基因的表达载体可通过电穿孔、原生质体生成法或全细胞法转化酵母细胞。
甲醇酵母转化和大肠埃希氏菌转化不同之处是前者较为复杂。
对于大肠埃希氏菌而言,只要把重组表达载体导入细胞体内即可。
因其载体上携带有自身复制原点,可随染色体复制而复制,重组表达载体能够稳定存在。
在甲醇酵母系统中,所有的表达载体均不含酵母复制原点。
这就是说,导入酵母体内的重组表达载体只有和酵母染色体上的同源区发生重组,整合到染色体上,外源基因才能够稳定存在,外源蛋白才能得到稳定表达,这种整合的转化子一旦形成就非常稳定。
如果转化后的重组表达载体未能整合到染色体上,而是以游离的附加体形式存在,这种转化子就不稳定,重组表达载体极易丢失。
毕赤酵母表达知识归纳1a.配制500×BIOTIN stock solution(0.02%)有这么3种方案:1、懒人是将Biotin直接溶在去离子水中,放过夜,基本就能溶;2、急性子是将溶液配成0.02N的NaOH,就很容易溶解了;3、水浴加热,温度不能高于50度。
D-生物素是具有生物活性的生物素,也就是vitaminH。
在毕赤酵母代谢过程中,作为多种酶的辅基起作用。
天然培养基中一般可以不单独添加,因为YNB中、酵母粉、蛋白胨中均含有一定量的生物素,但是做高密度发酵还是必须要添加的。
b.有几个比较迷惑的问题请教大家:(很典型的小问题)1、制感受态细胞,OD多少比较好?pyrimidine 战友的方法:取1mlGS115过夜培养物(OD约6-10) 分装到1.5ml EP管中。
说明书还有一些文献是说在1.3左右效率高,再高了效率会很低2、关于高效转化法,文献说用(LiAc),而invitrogen的说明书说转化毕赤酵母用(LiAc)没用,要用LiCl。
Lithium acetate does not work with Pichia pastoris. Use only lithium chloride.3、YNB到底能高温灭么?有的说能有的说不能。
过滤灭菌的怎么操作?我是把滤器装好膜绑到瓶口用纱布盖上,报纸包上,瓶盖放烧杯里单灭。
然后把配好的溶液用注射器一点点推进去。
4、葡萄糖为什么在YPD里一起灭颜色很深,单灭则不会。
该115度还是121度灭?网上搜了下,都有人用!5、电转化参数用400欧还是200欧?有的用400,有的还专门说不是用400。
都是从园里看到的!电击参数:1.5KV,25uF,200欧姆(不是400)6、电转后,在MD平板上长的应该就是整合了目的基因的重组子了吧?如果不想筛高拷贝的,是否PCR验证一下即可?网友的回答:ynb最好不灭菌,我是0.22um过滤处理的。
invitrogen手册上可以灭菌的。
毕赤酵母表达零碎之相礼和热创作Mut+和Muts毕赤酵母中有两个基因编码醇氧化酶——AOX1及AOX2,细胞中大多数的醇氧化酶是AOX1基因产品,甲醇可紧密调理、诱导AOX1基因的高程度表达,较典型的是占可溶性蛋白的30%以上.AOX1基因调控分两步:抑制/往抑制机制加诱导机制.简单来说,在含葡萄糖的培育基中,即便加入诱导物甲醇转录仍受抑制.为此,用甲醇进行优化诱导时,引荐在甘油培育基中培育.留意即便在甘油中生长(往抑制)时,仍缺乏以使AOX1基因达到最低程度的表达,诱导物甲醇是AOX1基因可辨表达程度所必须的.AOX1基因已被分离,含AOX1启动子的质粒可用来促进编码外源蛋白的目的基因的表达.AOX2基因与AOX1基因有97%的同源性,但在甲醇中带AOX2基因的菌株比带AOX1基因菌株慢得多,经过这种甲醇利用缓慢表型可分离Muts菌株.在YPD(酵母膏、蛋白胨、葡萄糖)培育基中,不管是Mut+还是Muts其在对数期增殖一倍的工夫大约为2h.Mut+和Muts菌株在没有甲醇存在的状况下生长速率是一样的,存在甲醇的状况下,Mut+在对数期增殖一倍的工夫大约为4至6个小时,Muts在对数期增殖一倍的工夫大约为18个小时.菌株GS115、X-33、KM71和SMD1168的区别GS115、KM71和SMD1168等是用于表达外源蛋白的毕赤酵母受体菌,与酿酒酵母相比,毕赤酵母不会使蛋白过糖基化,糖基化后有利于蛋白的溶解或构成正确的折叠结构.GS115、KM71、SMD1168在组氨酸脱氢酶位点(His4)有渐变,是组氨酸缺陷型,假如表达载体上携带有组氨酸基因,可抵偿宿主菌的组氨酸缺陷,因而可以在不含组氨酸的培育基上挑选转化子.这些受体菌自发渐变成组氨酸野生型的概率一样平常低于10-8.GS115表型为Mut+,重组表达载体转化GS115后,长出的转化子可能是Mut+,也可能是Muts(载体取代AXO1基因),可以在MM和MD培育基上鉴定表型.SMD1168和GS115类似,但SMD1168基因组中的Pep4基因发生渐变,是蛋白酶缺陷型,可降低蛋白酶对外源蛋白的降解作用.其中X-33由于是野生型,因而耐受性比较好,假如担心转化率的话可以考虑这种酵母菌,而X33与GS115一样都是属于MUT+表示型,也就是说可以在含甲醇的培育基中快速生长,但是听说会对外源基因表达有影响,KM71的亲本菌在精氨酸琥珀酸裂解酶基因(arg4)有渐变,在不含精氨酸的培育基中不克不及生长.用野生型ARG4基因(约2kb)拔出到克隆的野生型AOX1基因的BamHI(AOX1基因15/16密码子)及SalI(AOX1基因227/228密码子)位点,取代了AOX1基因16-227密码子,此结构转化至KM71亲本菌(arg4his4)中,分离发生KM71 MutsArg+His-菌株,Arg+转化子遗传分析表现野生型AOX1被aox1::ARG4结构所取代,以是KM71全部转化子都是Muts表型.AOX1位点没有被完全缺失,理论上可用你的目的结构经过基因取代方法更换aox1::ARG4结构,这样重组菌株的表型是His+MutsArg-,这意味偏重组菌株生长时需精氨酸.但仅添加精氨酸其实不克不及完全缓和arg4渐变的影响,arg4菌株在含精氨酸的最小培育基中不克不及很好地生长.因而不引荐在KM71中经过取代aox1::ARG4结构来获得His+转化子.一样平常来说,假如是胞内表达,应尽量用Muts细胞,这样得到的蛋白产品中醇氧化酶蛋白量较少而目的蛋白量绝对较多,使卑鄙纯化更易进行.而对于分泌蛋白的表达,无论是甲醇利用慢(Muts)还是甲醇利用快(Mut+)的细胞都可运用.基因重组Pichia.pastoris酵母菌体内无自然质粒,以是表达载体需与宿主染色体发生同源重组,将外源基因表达框架整合于染色体中以完成外源基因的表达,包含启动子、外源基因克隆位点、停止序列、挑选标识表记标帜等.细菌内同源重组被以为是重组质粒构建过程的难点,由于未线性化的环状质粒之间发生同源重组的几率非常低,以是重组转移载体必须用特定的限定性内切酶进行线性化处理.这种处理的目的是防止随机拔出重组时质粒在功能区断开,形成目的基因表达失活,让同源重组以指定的方式发生.表达载体次要分为以下几类:(1)胞内表达载体次要有pHIL-D2、pA0815、pPIC3K、pPICZ、pHWO10,pGAPZ、pGAPZa(Invitrogen)等.该类载体可以将目的基因表达在胞内,可以防止毕赤酵母的糖基化,次要得当于那些不克不及被糖基化相关基因的表达;(2)分泌型表达载体次要有pPIC9、pHIL-S1、pPICZα、pYAM75P等.由于毕赤酵母本人的泌内源蛋白非常少,将外源蛋白分泌到胞外,非常有利于目的蛋白质的纯化及积存.经常运用的分泌的信号序列次要是由89个氨基酸组成的α交配因子(α-factor)的引导;(3)多拷贝拔出表达载体如pPIC9K,pPIC3.5K.在某些状况下,毕赤酵母中重组基因多拷贝整合可添加所需蛋白的表达量.该载体均可用于在体内(pPIC3.5K, pPIC9K)或体外(pAO815)发生并分离多拷贝拔出,同时可检测添加重组基因的拷贝数能否添加蛋白表达量.体内整合可经过高遗传霉素抗性挑选可能的多拷贝拔出,而体外整合可经过连接发生外源基因的串联拔出.在GS115中挑选His+Mut+转化子:用SalI或StuI线性化质粒转化GS115后,大多在His4位点上发生重组,大多数转化子是Mut+表型;但是由于质粒含有AOX1基因序列,有可能在AOX1位点发生重组,毁坏野生型AOX1基因,发生His+Muts转化子,则必要在MD及MM平板上检测可证明His+ Mut+转化子.毕赤酵母表达经常运用培育基10×YNB(13.4%的无氨基酸酵母氮源),134gYNB固体溶于1L蒸馏水,过滤灭菌,4℃保管.YPD完全培育基:酵母提取物10 g/L,蛋白胨20 g/L,葡萄糖20 g/L(固体培育基含1.5%琼脂).转化培育基RDB:每100mL加入山梨醇18g(186 g/L),琼脂糖2g(20g/L)121℃灭菌20分钟,然后待温度降至60℃当前在超净台上加入10×YNB 10mL(13.4 g/L),10×葡萄糖10mL(20 g/L),500×生物素0.2mL(4×10-4g/L),100×AA 1mL.混匀,倒平板(灭菌时只加入80ml水即可).选择培育基MD(最小葡萄糖):配100mL,向80mL水中加入琼脂糖2g(20 g/L)121℃灭菌20分钟,待温度降至60℃当前在超净台上加入10×YNB 10mL(13.4 g/L),10×葡萄糖10mL(20 g/L),500×生物素0.2mL(4×10-4g/L).选择培育基MM(最小甲醇):配100mL,向90mL水中加入琼脂糖2g(20 g/L)121℃灭菌20分钟,待温度降至60℃当前在超净台上加入10×YNB 10mL(13.4 g/L),500×生物素0.2mL(4×10-4g/L),0.5mL甲醇(0.5%).诱导表达培育基BMGY:配1L,酵母提取物10 g/L,蛋白胨20 g/L,3g/L K2HPO4,11.8g/L KH2PO4,加水至890mL,121℃灭菌20分钟,然后待温度降至60℃当前在超净台上加入10×YNB 100mL(13.4 g/L),500×生物素1mL(4×10-4g/L),甘油10mL.诱导表达培育基BMMY:酵母提取物10g/L,蛋白胨20 g/L,3g/LK2HPO4,11.8g/L KH2PO4,加水至895mL,121℃灭菌20分钟,然后待温度降至60℃当前在超净台上加入100×YNB 100mL(13.4 g/L),500×生物素1mL(4×10-4g/L),甲醇5mL.BMGY/BMMY含酵母浸出物及蛋白胨,可波动分泌蛋白,制止或减少分泌蛋白的分解.假如目的蛋白对中性PH蛋白酶敏感的话,可在无缓冲培育基(MGY、MM)中表达.假如没有证据证明你的分泌蛋白对中性PH值蛋白酶敏感,建议开始表达时用BMMY.假如表达蛋白降解了,测验考试在无缓冲培育基中进行表达.假如以上条件仍不克不及无效防止蛋白降解,可将基因转入SMD1168中,该菌株表型是his4pep4,缺失了蛋白酶,转化与表达程序与GS115相反,也可用于大规模发酵.用考马斯亮蓝G-250测蛋白含量。
毕赤酵母多拷贝表达载体试剂盒用于在含多拷贝基因的毕赤酵母菌中表达并分离重组蛋白综述:基本特征:作为真核生物,毕赤酵母具有高等真核表达系统的许多优点:如蛋白加工、折叠、翻译后修饰等。
不仅如此,操作时与E.coli及酿酒酵母同样简单。
它比杆状病毒或哺乳动物组织培养等其它真核表达系统更快捷、简单、廉价,且表达水平更高。
同为酵母,毕赤酵母具有与酿酒酵母相似的分子及遗传操作优点,且它的外源蛋白表达水平是后者的十倍以至百倍。
这些使得毕赤酵母成为非常有用的蛋白表达系统。
与酿酒酵母相似技术:许多技术可以通用:互补转化基因置换基因破坏另外,在酿酒酵母中应用的术语也可用于毕赤酵母。
例如:HIS4基因都编码组氨酸脱氢酶;两者中基因产物有交叉互补;酿酒酵母中的一些野生型基因与毕赤酵母中的突变基因相互补,如HIS4、LEU2、ARG4、TR11、URA3等基因在毕赤酵母中都有各自相互补的突变基因。
毕赤酵母是甲醇营养型酵母:毕赤酵母是甲醇营养型酵母,可利用甲醇作为其唯一碳源。
甲醇代谢的第一步是:醇氧化酶利用氧分子将甲醇氧化为甲醛,还有过氧化氢。
为避免过氧化氢的毒性,甲醛代谢主要在一个特殊的细胞器-过氧化物酶体-里进行,使得有毒的副产物远离细胞其余组分。
由于醇氧化酶与O2的结合率较低,因而毕赤酵母代偿性地产生大量的酶。
而调控产生醇过氧化物酶的启动子也正是驱动外源基因在毕赤酵母中表达的启动子。
两种醇氧化酶蛋白:毕赤酵母中有两个基因编码醇氧化酶-AOX1及AOX2。
细胞中大多数的醇氧化酶是AOX1基因产物。
甲醇可紧密调节、诱导AOX1基因的高水平表达,较典型的是占可溶性蛋白的30%以上。
AOX1基因已被分离,含AOX1启动子的质粒可用来促进编码外源蛋白的目的基因的表达。
AOX2基因与AOX1基因有97%的同源性,但在甲醇中带AOX2基因的菌株比带AOX1基因菌株慢得多,通过这种甲醇利用缓慢表型可分离Muts菌株。
表达:AOX1基因的表达在转录水平受调控。
1.基因的内在特性主要包括mRNA 5’端非翻译区(5’2 U TR)、基因的A +T 组成和密码子的使用频率3 个方面。
由于巴斯德毕赤酵母中乙醇氧化酶的表达量极高(占胞内可溶蛋白的30% 以上) 因此为了有高的蛋白表达量,维持外源基因mRNA 5’-U TR。
尽可能和AOXlmRNA 5’-U TR 相似是必需的, 最好是保持两者一致。
A + T 含量高的基因在巴斯德毕赤酵母中表达时偶尔会造成转录提前终止,这是因为A T 丰富区可能存在转录提前终止信号。
因此对A T 含量丰富的基因最好是重新设计序列, 使其A + T 含量在30%~55% 范围内。
巴斯德毕赤酵母也有特殊的密码子偏好趋向。
(赵翔,霍克克,李育阳. 毕赤酵母的密码子用法分析[J ] . 生物工程学报,2000 ,16(3) :308 - 311.)外源蛋白自身的理化特点也影响其表达和分泌。
外源蛋白的加工修饰都会影响蛋白的表达量。
2.选择强启动子启动子在转录水平上调控基因的表达最常用的启动子是AOXI 启动子。
PGAG(三磷酸甘油醛脱氢酶启动子) 是最近在巴斯德毕赤酵母中克隆到的一个组成型启动子,在它的控制下β- LabZ 基因表达率比甲醇诱导下的PAOX驱动的产量更高,由于该组成型启动子不需要甲醇诱导,发酵工艺应该更简单,同时其产量更高,所以成为代替PAOX1 最有潜力的启动子。
通过分离选择恢复利用甲醇能力的自发突变体, 从AOX1 基因缺陷菌株中分离M ut+ 的自发突变体,从中筛选提高表达量的突变体。
(戴秀玉, 王恂, 周坚1 毕赤氏酵母PAOX2 突变化序列分析〔J 〕1微生物学报, 1999, 39 (6) : 559~5611)3.增加外源基因整合拷贝数(1)Invitrogen 公司最新发展的质粒pPIC9K上带有G418 的抗性基因,可以通过转化子对G418抗性水平快速筛选高拷贝转化子(配合电激法转化的效果更好)。
(2)在体外载体上多次插入目的基因片段。
毕赤酵母多拷贝表达载体试剂盒用于在含多拷贝基因的毕赤酵母菌中表达并分离重组蛋白综述:基本特征:作为真核生物,毕赤酵母具有高等真核表达系统的许多优点:如蛋白加工、折叠、翻译后修饰等。
不仅如此,操作时与E.coli及酿酒酵母同样简单。
它比杆状病毒或哺乳动物组织培养等其它真核表达系统更快捷、简单、廉价,且表达水平更高。
同为酵母,毕赤酵母具有与酿酒酵母相似的分子及遗传操作优点,且它的外源蛋白表达水平是后者的十倍以至百倍。
这些使得毕赤酵母成为非常有用的蛋白表达系统。
与酿酒酵母相似技术:许多技术可以通用:互补转化基因置换基因破坏另外,在酿酒酵母中应用的术语也可用于毕赤酵母。
例如:HIS4基因都编码组氨酸脱氢酶;两者中基因产物有交叉互补;酿酒酵母中的一些野生型基因与毕赤酵母中的突变基因相互补,如HIS4、LEU2、ARG4、TR11、URA3等基因在毕赤酵母中都有各自相互补的突变基因。
毕赤酵母是甲醇营养型酵母:毕赤酵母是甲醇营养型酵母,可利用甲醇作为其唯一碳源。
甲醇代谢的第一步是:醇氧化酶利用氧分子将甲醇氧化为甲醛,还有过氧化氢。
为避免过氧化氢的毒性,甲醛代谢主要在一个特殊的细胞器-过氧化物酶体-里进行,使得有毒的副产物远离细胞其余组分。
由于醇氧化酶与O2的结合率较低,因而毕赤酵母代偿性地产生大量的酶。
而调控产生醇过氧化物酶的启动子也正是驱动外源基因在毕赤酵母中表达的启动子。
两种醇氧化酶蛋白:毕赤酵母中有两个基因编码醇氧化酶-AOX1及AOX2。
细胞中大多数的醇氧化酶是AOX1基因产物。
甲醇可紧密调节、诱导AOX1基因的高水平表达,较典型的是占可溶性蛋白的30%以上。
AOX1基因已被分离,含AOX1启动子的质粒可用来促进编码外源蛋白的目的基因的表达。
AOX2基因与AOX1基因有97%的同源性,但在甲醇中带AOX2基因的菌株比带AOX1基因菌株慢得多,通过这种甲醇利用缓慢表型可分离Muts菌株。
表达:AOX1基因的表达在转录水平受调控。
毕赤酵母表黑系统之阳早格格创做Mut+战Muts毕赤酵母中有二个基果编码醇氧化酶——AOX1及AOX2,细胞中大普遍的醇氧化酶是AOX1基果产品,甲醇可稀切安排、诱导AOX1基果的下火仄表黑,较典型的是占可溶性蛋黑的30%以上.AOX1基果调控分二步:压制/去压制体制加诱导体制.简朴去道,正在含葡萄糖的培植基中,纵然加进诱导物甲醇转录仍受压制.为此,用甲醇举止劣化诱导时,推荐正在苦油培植基中培植.注意纵然正在苦油中死少(去压制)时,仍缺乏以使AOX1基果达到最矮火仄的表黑,诱导物甲醇是AOX1基果可辨表黑火仄所必须的.AOX1基果已被分散,含AOX1开用子的量粒可用去促进编码中源蛋黑的手段基果的表黑.AOX2基果与AOX1基果有97%的共源性,然而正在甲醇中戴AOX2基果的菌株比戴AOX1基果菌株缓得多,通过那种甲醇利用缓缓表型可分散Muts菌株.正在YPD(酵母膏、蛋黑胨、葡萄糖)培植基中,不管是Mut+仍旧Muts其正在对付数期删殖一倍的时间约莫为2h.Mut+战Muts菌株正在不甲醇存留的情况下死少速率是一般的,存留甲醇的情况下,Mut+正在对付数期删殖一倍的时间约莫为4至6个小时,Muts正在对付数期删殖一倍的时间约莫为18个小时.菌株GS115、X-33、KM71战SMD1168的辨别GS115、KM71战SMD1168等是用于表黑中源蛋黑的毕赤酵母受体菌,与酿酒酵母相比,毕赤酵母不会使蛋黑过糖基化,糖基化后有好处蛋黑的溶解或者产死粗确的合叠结构.GS115、KM71、SMD1168正在组氨酸脱氢酶位面(His4)有突变,是组氨酸缺陷型,如果表黑载体上携戴有组氨酸基果,可补偿宿主菌的组氨酸缺陷,果此不妨正在不含组氨酸的培植基上筛选变化子.那些受体菌自收突形成组氨酸家死型的概率普遍矮于10-8.GS115表型为Mut+,沉组表黑载体变化GS115后,少出的变化子大概是Mut+,也大概是Muts(载体与代AXO1基果),不妨正在MM战MD 培植基上审定表型.SMD1168战GS115类似,然而SMD1168基果组中的Pep4基果爆收突变,是蛋黑酶缺陷型,可落矮蛋黑酶对付中源蛋黑的落解效率.其中X-33由于是家死型,果此耐受性比较佳,如果担心变化率的话不妨思量那种酵母菌,而X33与GS115一般皆是属于MUT+表示型,也便是道不妨正在含甲醇的培植基中赶快死少,然而是传闻会对付中源基果表黑灵验率,KM71的亲原菌正在粗氨酸琥珀酸裂解酶基果(arg4)有突变,正在不含粗氨酸的培植基中不克不迭死少.用家死型ARG4基果(约2kb)拔出到克隆的家死型AOX1基果的BamHI(AOX1基果15/16暗号子)及SalI(AOX1基果227/228暗号子)位面,与代了AOX1基果16-227暗号子,此结构变化至KM71亲原菌(arg4his4)中,分散爆收KM71 MutsArg+His-菌株,Arg+变化子遗传领会隐现家死型AOX1被aox1::ARG4结构所与代,所以KM71所有变化子皆是Muts表型.AOX1位面不被真足缺得,表面上可用您的手段结构通过基果与代要领替换aox1::ARG4结构,那样沉组菌株的表型是His+MutsArg-,那表示着沉组菌株死万古需粗氨酸.然而仅增加粗氨酸本去不克不迭真足缓战arg4突变的效率,arg4菌株正在含粗氨酸的最小培植基中不克不迭很佳天死少.果此不推荐正在KM71中通过与代aox1::ARG4结构去赢得His+变化子.普遍去道,如果是胞内表黑,应尽管用Muts细胞,那样得到的蛋黑产品中醇氧化酶蛋黑量较少而手段蛋黑量相对付较多,使下游杂化更易举止.而对付于分泌蛋黑的表黑,无论是甲醇利用缓(Muts)仍旧甲醇利用快(Mut+)的细胞皆可应用.基果沉组Pichia.pastoris酵母菌体内无天然量粒,所以表黑载体需与宿主染色体爆收共源沉组,将中源基果表黑框架调整于染色体中以真止中源基果的表黑,包罗开用子、中源基果克隆位面、末止序列、筛选标记表记标帜等.细菌内共源沉组被认为是沉组量粒构修历程的易面,果为已线性化的环状量粒之间爆收共源沉组的几率非常矮,所以沉组变化载体必须用特定的节制性内切酶举止线性化处理.那种处理的手段是预防随机拔出沉组时量粒正在功能区断开,制成手段基果表黑得活,让共源沉组以指定的办法爆收.表黑载体主要分为以下几类:(1)胞内表黑载体主要有pHIL-D2、pA0815、pPIC3K、pPICZ、pHWO10,pGAPZ、pGAPZa(Invitrogen)等.该类载体不妨将手段基果表黑正在胞内,不妨预防毕赤酵母的糖基化,主要符合于那些不克不迭被糖基化相闭基果的表黑;(2)分泌型表黑载体主要有pPIC9、pHIL-S1、pPICZα、pYAM75P等.由于毕赤酵母自己的泌内源蛋黑非常少,将中源蛋黑分泌到胞中,非常有好处手段蛋黑量的杂化及聚集.时常使用的分泌的旗号序列主假如由89个氨基酸组成的α接配果子(α-factor)的带领;(3)多拷贝拔出表黑载体如pPIC9K,pPIC3.5K.正在某些情况下,毕赤酵母中沉组基果多拷贝调整可减少所需蛋黑的表黑量.该载体均可用于正在体内(pPIC3.5K, pPIC9K)或者体中(pAO815)爆收并分散多拷贝拔出,共时可检测减少沉组基果的拷贝数是可减少蛋黑表黑量.体内调整可通过下遗传霉素抗性筛选大概的多拷贝拔出,而体中调整可通过对接爆收中源基果的串联拔出.正在GS115中筛选His+Mut+变化子:用SalI或者StuI线性化量粒变化GS115后,大多正在His4位面上爆收沉组,大普遍变化子是Mut+表型;然而由于量粒含有AOX1基果序列,有大概正在AOX1位面爆收沉组,损害家死型AOX1基果,爆收His+Muts变化子,则需要正在MD及MM仄板上检测可证据His+ Mut+变化子.毕赤酵母表黑时常使用培植基10×YNB(13.4%的无氨基酸酵母氮源),134gYNB固体溶于1L蒸馏火,过滤灭菌,4℃保存.YPD真足培植基:酵母提与物10 g/L,蛋黑胨20 g/L,葡萄糖20 g/L(固体培植基含1.5%琼脂).变化培植基RDB:每100mL加进山梨醇18g(186 g/L),琼脂糖2g(20g/L)121℃灭菌20分钟,而后待温度落至60℃以去正在超洁台上加进10×YNB 10mL(13.4 g/L),10×葡萄糖10mL(20 g/L),500×死物素0.2mL(4×10-4g/L),100×AA 1mL.混匀,倒仄板(灭菌时只加进80ml火即可).采用培植基MD(最小葡萄糖):配100mL,背80mL火中加进琼脂糖2g(20 g/L)121℃灭菌20分钟,待温度落至60℃以去正在超洁台上加进10×YNB10mL(13.4 g/L),10×葡萄糖10mL(20 g/L),500×死物素0.2mL(4×10-4g/L).采用培植基MM(最小甲醇):配100mL,背90mL火中加进琼脂糖2g(20 g/L) 121℃灭菌20分钟,待温度落至60℃以去正在超洁台上加进10×YNB 10mL(13.4 g/L),500×死物素0.2mL(4×10-4g/L),0.5mL甲醇(0.5%).诱导表黑培植基BMGY:配1L,酵母提与物10 g/L,蛋黑胨20 g/L,3g/L K2HPO4,11.8g/L KH2PO4,加火至890mL,121℃灭菌20分钟,而后待温度落至60℃以去正在超洁台上加进10×YNB 100mL(13.4 g/L),500×死物素1mL(4×10-4g/L),苦油10mL.诱导表黑培植基BMMY:酵母提与物10g/L,蛋黑胨20 g/L,3g/LK2HPO4,11.8g/L KH2PO4,加火至895mL,121℃灭菌20分钟,而后待温度落至60℃以去正在超洁台上加进100×YNB 100mL(13.4 g/L),500×死物素1mL(4×10-4g/L),甲醇5mL.BMGY/BMMY含酵母浸出物及蛋黑胨,可宁静分泌蛋黑,遏止或者缩小分泌蛋黑的领会.如果手段蛋黑对付中性PH蛋黑酶敏感的话,可正在无缓冲培植基(MGY、MM)中表黑.如果不凭证道明您的分泌蛋黑对付中性PH 值蛋黑酶敏感,修议开初表黑时用BMMY.如果表黑蛋黑落解了,测验考查正在无缓冲培植基中举止表黑.如果以上条件仍不克不迭灵验预防蛋黑落解,可将基果转进SMD1168中,该菌株表型是his4pep4,缺得了蛋黑酶,变化与表黑步调与GS115相共,也可用于大规模收酵.用考马斯明蓝G-250测蛋黑含量。
一、引言近年来,研究表明糖基化在生物体内扮演了重要的角色,对于细胞生殖、发育、信号传导等生物功能具有重要影响。
糖基化毕赤酵母是一种广泛应用的表达宿主,其表达系统在研究和工业生产中具有重要的应用价值。
本文将对糖基化毕赤酵母表达体系进行系统介绍,并深入探讨其在生物学和工业领域的应用前景。
二、糖基化毕赤酵母表达体系的构建1.构建原理糖基化毕赤酵母表达体系的构建主要基于毕赤酵母本身的细胞生物学特性和代谢途径。
通过对毕赤酵母细胞进行基因工程改造,使其能够表达特定的糖基化相关酶,从而实现目标蛋白的糖基化修饰。
2.基因工程技术利用CRISPR/Cas9等基因编辑技术,可将糖基化相关基因导入毕赤酵母细胞内,实现对其表达系统的改造。
引入携带目标基因的质粒,使其在毕赤酵母细胞内得到高效表达。
三、糖基化毕赤酵母表达体系的优势1.高效表达糖基化毕赤酵母表达体系具有较高的表达能力,能够在短时间内获得大量的目标蛋白。
2.糖基化修饰由于毕赤酵母细胞内具有完善的糖基化代谢途径,其表达的目标蛋白可以实现多种糖基化修饰,包括N-糖基化、O-糖基化等。
3.生物相容性糖基化毕赤酵母表达体系产生的目标蛋白,在生物学活性和免疫原性上具有良好的生物相容性,适合用于生物学研究和药物生产。
四、糖基化毕赤酵母表达体系的应用前景1.生物学研究糖基化毕赤酵母表达体系为生物学研究提供了良好的工具,可用于合成糖基化修饰的重组蛋白,从而探究其在细胞生物学和生理学上的功能。
2.药物研发许多药物的疗效和副作用与其糖基化状态密切相关,利用糖基化毕赤酵母表达体系可以生产具有特定糖基化修饰的药物蛋白,为药物研发提供了新的途径。
3.工业生产糖基化毕赤酵母表达体系在工业生产中具有重要应用潜力,可用于大规模生产糖基化修饰的工业酶、药物蛋白等。
五、总结糖基化毕赤酵母表达体系作为一种重要的细胞表达宿主,具有较高的表达效率和糖基化修饰能力,其在生物学和工业领域具有广阔的应用前景。
毕赤酵母核酸酶表达一、毕赤酵母核酸酶表达的重要性毕赤酵母核酸酶表达可是个超有趣的事儿呢!你想啊,核酸酶在很多生物过程里都起着关键作用。
就像在细胞里,它可以参与到核酸的代谢过程中。
毕赤酵母作为一种很常用的表达宿主,要是能让它成功表达核酸酶,那就像是给科研或者工业生产找到了一把超棒的钥匙。
在科研方面,我们可以通过研究毕赤酵母表达的核酸酶,更好地理解核酸酶的结构和功能。
在工业上呢,也许能用来生产一些和核酸处理相关的产品。
二、毕赤酵母核酸酶表达的前期准备1. 菌株选择我们得挑选合适的毕赤酵母菌株呀。
这就好比挑选手下的士兵,要强壮、要听话。
不同的菌株可能在表达核酸酶的时候有不同的表现,有的可能产量高,有的可能活性好。
我们得根据自己的需求去选择,比如是想要大量的核酸酶,还是想要活性超强的核酸酶。
2. 核酸酶基因获取要得到核酸酶基因,这就像是找到宝藏的地图。
我们可以从基因库里面找,也可以自己从含有核酸酶的生物里提取。
这可是个技术活,要小心翼翼的,就像走在布满机关的迷宫里,一个不小心就可能拿错基因或者破坏基因。
3. 载体构建构建载体就像是给核酸酶基因打造一个专属的座驾。
这个座驾要能带着基因顺利进入毕赤酵母细胞里,并且还能让基因在里面好好工作。
要选择合适的启动子、终止子之类的元件,就像给座驾配上合适的发动机和刹车一样重要。
三、毕赤酵母核酸酶表达的实际操作1. 转化把构建好的载体转进毕赤酵母细胞里,这就像把货物送到目的地。
有不同的转化方法,像电转化、化学转化之类的。
电转化就像是用闪电的力量把载体“轰”进细胞,化学转化呢就像是用化学魔法把载体偷偷送进去。
不过每种方法都有自己的优缺点,得根据实际情况来选择。
2. 筛选阳性克隆转化之后,毕赤酵母细胞里就有各种各样的情况了。
我们得把那些成功接受了载体并且能够表达核酸酶的细胞找出来,这就像在一群孩子里找出那些有特殊才能的孩子。
可以通过一些特殊的标记,比如抗生素抗性标记之类的来筛选。
毕赤酵母表达经验总结甲醇酵母表达系统有不少优点,其中以Invitrogen公司的Pichia酵母表达系统最为人熟知,并广泛应用于外源蛋白的表达。
虽然说酵母表达操作简单表达量高,但是在实际操作中,并不是每个外源基因都能顺利得到高表达的。
不少人在操作中会遇到这样那样的问题,生物通编者特地收集了部分用户在使用EasySelect Pichia Expression System这个被誉为最简单的毕赤酵母表达的经典试剂盒过程中的心得体会。
其中Xiang Yang是来自美国乔治城大学(Georgetown University)Lombardi癌症中心(Lombardi Cancer Center),部分用户来自国内。
甲基酵母部分优点与其他真核表达系统比较与原核表达系统比较1.属于真核表达系统,具有一定的蛋白质翻译后加工,有利于真核蛋白的表达优点-+2.AOX强效启动子,外源基因产物表达量高,可以达到每升数克表达产物的水平++++3.酵母培养、转化、高密度发酵等操作接近原核生物,远较真核系统简单,非常适合大规模工业化生产。
+++=4.可以诱导表达,也可以分泌表达,便于产物纯化。
=+5.可以甲醇代替IPTG作为诱导物,部分甲醇酵母更可以甲醇等工业产物替代葡萄糖作为碳源,生产成本低+++++ 表示优胜于;- 表示不如;= 表示差不多EasySelect Pichia Expression System产品性能:优点——使用简单,表达量高,His-tag便于纯化缺点——酵母表达蛋白有时会出现蛋白切割问题全面产品报告及心得体会:巴斯德毕赤酵母(Pichia pastoris)是一种能高效表达重组蛋白的酵母品种,一方面由于其是属于真核生物,因此表达出来的蛋白可以进行糖基化修饰,另一方面毕赤酵母生长速度快,可以将表达的蛋白分泌到培养基中,方便蛋白纯化。
毕赤酵母表达载体pPICZ在多克隆位点(MCR)3'端带有his-tag和c-myc epitopes,这些tag有利于常规检测和纯化,而且在MCR5'端引入了alpha factor(α-factor)用以增加表达,并且在表达后α-factor 可以自动被切除。
毕赤酵母表达系统毕赤酵母表达系统前言:所用表达质粒有pPIC3.5K,pAO815用于胞内表达,而pPIC9K用于分泌表达,所有载体均利用AOX1启动子来诱导高水平表达。
抗性选择:最有效的筛选遗传霉素抗性及高抗性克隆的程序需要先对HIS+转化子进行选择,再进行不同水平遗传霉素抗性筛选。
毕赤菌株表型:毕赤酵母菌GS115 及KM71 在组氨酸脱氢酶位点(His4)有突变,因而不能合成组氨酸,所有表达质粒都有HIS4 基因可与宿主进行互补,通过不含组氨酸的培养基来选择转化子。
GS115 及KM71都可在复合培养基如YPD(YEPD)及含组氨酸的最小培养基中生长。
转化之前,GS115 及KM71 都不能在最小培养基中生长,因为它们是His-。
培养温度:毕赤酵母生长温度为28-30度(液体、平板、斜面)。
在32 度以上诱导生长时,对蛋白表达有害,甚至会导致细胞死亡。
贮存:贮存细胞几周或几月,用YPD培养基或YPD 琼脂斜面1 挑取所需菌株单克隆在YPD 平板上划线生长;2 挑取单克隆转移至YPD进行穿刺培养,30 度2 天;3 细胞在4 度可放几周几月或几年,存于-80度1 挑取所需菌株单克隆在YPD 中过夜培养;2 收集细胞,在含15%甘油的YPD 中悬浮至终OD600 为50-100(大约2.5-5.0×109细胞/ml);3 细胞先用液氮或干冰/酒精浴中冰冻再贮存于-80 度。
注意:在4 度或-80 度长期保存后,用之前建议在MM、MD 或MGY 平板上划线培养以检测His+转化子的表型是否正确及其活力。
以质粒pPIC9K,酵母Pichia pastoris GS115为例说明做法。
载体pPIC9K酶切为点线性化质粒DNA:建议使用下列方法线性化载体以获得Mut+及Muts重组子,可能其中一个会比另一个更利于表达多拷贝重组子。
如果只想得到Muts 重组子,使用KM71 菌株。
单个十字交换事件可比双重十字交换更容易、更有效地获得Muts 重组菌(例如:插入AOX1或his4 而不是取代AOX1)。
Pichia Expression KitVersion M01110225-0043Pichia Expression KitA Manual of Methods for Expression of Recombinant Proteins in Pichia pastorisCatalog no. K1710-01tech_service@iiINDIVIDUAL PICHIA EXPRESSION KIT LICENSE AGREEMENTThe Pichia Expression Kit is based on the yeast Pichia pastoris. Pichia pastoris was developed into an expression system by scientists at Salk Institute Biotechnology/Industry Associates (SIBIA) for high-level expression of recombinant proteins. All patents for Pichia pastoris and licenses for its use as an expression system are owned by Research Corporation Technologies, Inc. Tucson, Arizona. Invitrogen has an exclusive license to sell the Pichia Expression Kit to scientists for research purposes only, under the terms described below. Use of Pichia pastoris by commercial corporations requires the user to obtain a commercial license as detailed below. Before using the Pichia Expression Kit, please read the following license a greement. If you do not agree to be bound by its terms, contact Invitrogen within 10 days for authorization to return the unused Pichia Expression Kit and to receive a full credit. If you do agree to the terms of this Agreement, please complete the User Registration Card and return it to Invitrogen before using the kit.INDIVIDUAL PICHIA EXPRESSION KIT LICENSE AGREEMENTInvitrogen Corporation (INVITROGEN) grants you a non-exclusive license to use the enclosed Pichia Expression Kit (EXPRESSION KIT) for academic research or for evaluation purposes only. The EXPRESSION KIT is being transferred to you in furtherance of, and reliance on, such license. You may not use the EXPRESSION KIT, or the materials contained therein, for any commercial purpose without a license for such purpose from RESEARCH CORPORATION TECHNOLOGIES, INC., Tucson, Arizona. Commercial purposes include the use in or sale of expressed proteins as a commercial product, or use to facilitate or advance research or development of a commercial product. Commercial entities may conduct their evaluation for one year at which time this license automatically terminates. Commercial entities will be contacted by Research Corporation Technologies during the evaluation period regarding the purchase of a commercial license.Access to the EXPRESSION KIT must be limited solely to those officers, employees and students of your institution who need access thereto in order to perform the above-described research or evaluation. You must inform each of such officer, employee and student of the provisions of this Agreement and require them to agree, in writing, to be bound by the provisions of this Agreement. You may not distribute the EXPRESSION KIT to others, even those within your own institution. You may transfer modified, altered or original material from the EXPRESSION KIT to a third party following notification of INVITROGEN such that the recipient can be licensed. You may not assign, sub-license, rent lease or otherwise transfer this License or any of the rights or obligation hereunder, except as expressly permitted.This License is effective until terminated. You may terminate it at any time by destroying all Pichia expression products in your control. It will also terminate automatically if you fail to comply with the terms and conditions of the Agreement. You shall, upon termination of the License, destroy all Pichia Expression Kits in your control, and so notify INVITROGEN in writing.This License Shall be governed in its interpretation and enforcement by the laws of the State of California.Product User Registration CardPlease complete and return the enclosed Product User Registration Card for each Pichia Expression Kit that you purchase. This will serve as a record of your purchase and registration and will allow Invitrogen to provide you with technical support and manual updates. It will also allow Invitrogen to update you on future developments of and improvements to the Pichia Expression Kit. The agreement outlined above becomes effective upon our receipt of your User Registration Card or 10 days following the sale of the Pichia Expression Kit to you. Use of the kit at any time results in immediate obligation to the terms and conditions stated in this Agreement.Technical ServicesInvitrogen provides Technical Services to all of our registered Pichia Expression Kit users. Please contact us if you need assistance with the Pichia Expression Kit.United States Headquarters:Japanese Headquarters European Headquarters:Invitrogen Corporation1600 Faraday AvenueCarlsbad, CA 92008 USATel: 1 760 603 7200Tel (Toll Free): 1 800 955 6288 Fax: 1 760 602 6500E-mail:tech_service@ Invitrogen Japan K.K.Nihonbashi Hama-Cho Park Bldg. 4F2-35-4, Hama-Cho, NihonbashiTel: 81 3 3663 7972Fax: 81 3 3663 8242E-mail: jpinfo@Invitrogen Ltd3 Fountain DriveInchinnan Business ParkPaisley PA4 9RF, UKTel (Free Phone Orders): 0800 269 210Tel (General Enquiries): 0800 5345 5345Fax: +44 (0) 141 814 6287E-mail: eurotech@iiiivTable of ContentsMaterials (vii)Purchaser Notification (x)Product Qualification (xii)Introduction (1)Overview (1)Experimental Outline (3)Recombination and Integration in Pichia (7)Methods (11)Pichia Strains (11)E. coli Strains (13)Selecting a Pichia Expression Vector (14)pHIL-D2 (16)pPIC3.5 (17)pHIL-S1 (18)pPIC9 (19)Signal Sequence Processing (20)Cloning into the Pichia Expression Vectors (21)Transformation into E. coli (26)Preparation of Transforming DNA (27)Growth of Pichia for Spheroplasting (30)Preparation of Spheroplasts (32)Transformation of Pichia (34)Screening for Mut+ and Mut S Transformants (36)PCR Analysis of Pichia Integrants (40)Expression of Recombinant Pichia Strains (42)Analysis by SDS-Polyacrylamide Gel Electrophoresis (45)Optimization of Pichia Protein Expression (47)Scale-up of Expression (49)Protein Purification and Glycosylation (51)Recipes (53)E. coli Media Recipes (53)Pichia Media Recipes (54)Appendix (59)Electroporation of Pichia (59)PEG 1000 Transformation Method for Pichia (60)Lithium Chloride Transformation Method (61)Total DNA Isolation from Pichia (62)Detection of Multiple Integration Events (63)Procedure for Total RNA Isolation from Pichia (64)β-Galactosidase Assay (65)Technical Service (67)References (69)vviMaterialsKit Contents Box 1: Spheroplast Module. Store at room temperature.Reagent Amount ComponentsSOS media 20 ml 1 M Sorbitol0.3X YPD10 mM CaCl2Sterile Water 2 x 125 ml Autoclaved, deionized waterSE 2 x 125 ml 1 M Sorbitol25 mM EDTA, pH 8.0SCE 2 x 125 ml 1 M Sorbitol10 mM Sodium citrate buffer, pH 5.81 mM EDTA1 M Sorbitol2 x 125 ml --CaS 2 x 60 ml 1 M Sorbitol10 mM Tris-HCl, pH 7.5;10 mM CaCl240% PEG 25 ml 40% (w/v) PEG 3350 (Reagent grade) in waterCaT 25 ml 20 mM Tris-HCl, pH 7.520 mM CaCl2Stab Vials: Pichia and E. coli stabs. Store at +4°C.Phenotype(Pichia only)GenotypeStrain Amountstab his4Mut+GS115 1stab arg4 his4 aox1::ARG4 Mut S, Arg+KM71 1GS115 Albumin 1 stab HIS4Mut SGS115 β-Gal 1 stab HIS4Mut+stab F´ {pro AB, lac I q, lac Z∆M15, Tn10 (Tet R)} mcr A,TOP10F´ 1∆(mrr-hsd RMS-mcr BC), φ80lac Z∆M15, ∆lac X74,deo R, rec A1, ara D139, ∆(ara-leu)7697, gal U,gal K, rps L (Str R), end A1, nup G λ-.Box 2: Spheroplast Module. Store at -20°C.ComponentsReagent AmountZymolyase 10 x 20 µl 3 mg/ml Zymolyase in water(100,000 units/g lytic activity)1 M DTT 10 x 1 ml 1 M dithiothreitol in watercontinued on next pageviiKit Contents,continuedVector Box. Store at -20°C.Reagent DescriptionpHIL-D210 µg, lyophilized in TE, pH 8.0Vector for intracellular expression in PichiapPIC3.510 µg, lyophilized in TE, pH 8.0Vector for intracellular expression in PichiapHIL-S110 µg, lyophilized in TE, pH 8.0 Vector for secreted expression in Pichia. Uses the PHO1 signal sequencepPIC910 µg, lyophilized in TE, pH 8.0 Vector for secreted expression in Pichia. Uses the α-factor signal sequencePrimer Box. Store at -20°C.5´ AOX1 sequencing primer2 µg (312 pmoles), lyophilized5´-GACTGGTTCCAATTGACAAGC-3´3´ AOX1 sequencing primer2 µg (314 pmoles), lyophilized5´-GCAAATGGCATTCTGACATCC-3´α-Factor sequencing primer2 µg (315 pmoles), lyophilized5´-TACTATTGCCAGCATTGCTGC-3´Media The following prepackaged media is included for your convenience. Instructions for use are provided on the package.Media Amount Yield YP Base Medium 2 pouches 2 liters of YP mediumYP Base Agar Medium 2 pouches 2 liters of YP mediumYeast Nitrogen Base 1 pouch 500 ml of 10X YNBFor transformation of Pichia by spheroplasting, the Pichia Spheroplast Module isavailable separately from Invitrogen (see below for ordering information).Product Reactions or Amount Catalog no.Pichia Spheroplast Module 10 spheroplast preparations(50 transformations)K1720-01continued on next pageviiiRequired Equip-ment and Supplies (not provided) • 30°C rotary shaking incubator• Water baths capable of 37°C, 45°C, and 100°C• Centrifuge suitable for 50 ml conical tubes (floor or table-top)• Baffled culture flasks with metal covers (50 ml, 250 ml, 500 ml, 1000 ml, and 3 L)• 50 ml sterile, conical tubes• 6 ml and 15 ml sterile snap-top tubes (Falcon 2059 or similar)• UVSpectrophotometer• Mini agarose gel apparatus and buffers• Polyacrylamide Gel Electrophoresis apparatus and buffers• Media for transformation, growth, screening, and expression (see Recipes, pages 53-58) • 5% SDS solution (10 ml per transformation)• Sterile cheesecloth or gauze• Breaking Buffer (see Recipes, page 58)• Acid-washed glass beads (available from Sigma)• Replica-plating equipment (optional)• BeadBreaker™ (optional)ixPurchaser NotificationIntroduction The Pichia Expression Kit is based on the yeast Pichia pastoris. Pichia pastoris wasdeveloped into an expression system by scientists at Salk Institute Biotechnology/ IndustryAssociates (SIBIA) and Phillips Petroleum for high-level expression of recombinantproteins. All patents for Pichia pastoris and licenses for its use as an expression system areowned by Research Corporation Technologies (RCT), Inc., Tucson, Arizona. Forinformation on commercial licenses, please see page x.The Nature of the Invitrogen License Invitrogen has an exclusive license to sell the Pichia Expression Kit to scientists for research purposes only, under the terms described below. Use of Pichia pastoris by commercial entities for any commercial purpose requires the user to obtain a commercial license as detailed below. Before using the Pichia Expression Kit, please read the following license agreement. If you do not agree to be bound by its terms, contact Invitrogen within 10 days for authorization to return the unused Pichia Expression Kit and to receive a full credit. If you do agree to the terms of this license agreement, please complete the User Registration Card and return it to Invitrogen before using the kit.Pichia pastoris Patents Pichia pastoris is covered by one or more of the following U.S. patents and corresponding foreign patents owned and licensed by Research Corporation Technologies:4,683,293 4,808,537 4,812,405 4,818,700 4,837,148 4,855,231 4,857,467 4,879,231 4,882,279 4,885,242 4,895,800 4,929,555 5,002,876 5,004,688 5,032,516 5,122,465 5,135,868 5,166,329Individual Pichia Expression Kit License Agreement Invitrogen Corporation ("Invitrogen") grants you a non-exclusive license to use the enclosed Pichia Expression Kit ("Expression Kit") for academic research or for evaluation purposes only. The Expression Kit is being transferred to you in furtherance of, and reliance on, such license. You may not use the Expression Kit, or the materials contained therein, for any commercial purpose without a license for such purpose from Research Corporation Technologies, Inc., Tucson, Arizona.Definition of Commercial Purpose Commercial purposes include:(a) any use of Expression Products in a Commercial Product(b) any use of Expression Products in the manufacture of a Commercial Product(c) any sale of Expression Products(d) any use of Expression Products or the Expression Kit to facilitate or advanceresearch or development of a Commercial Product(e) any use of Expression Products or the Expression Kit to facilitate or advance anyresearch or development program the results of which will be applied to thedevelopment of Commercial Products"Expression Products" means products expressed with the Expression Kit, or with the use of any vectors or host strains in the Expression Kit. "Commercial Product" means any product intended for sale or commercial use.Commercial entities may conduct their evaluation for one year at which time this license automatically terminates. Research Corporation Technologies will contact commercial entities during the evaluation period regarding their desire for a commercial license.continued on next pagexPurchaser Notification, continuedIndividual Responsibilities Access to the Expression Kit must be limited solely to those officers, employees and students of your institution who need access to perform the above-described research or evaluation. You must inform each such officer, employee and student of the provisions of this license agreement and require them to agree, in writing, to be bound by the provisions of this license agreement. You may not distribute neither the Expression Kit nor the vectors or host strains contained in it to others, even to those within your own institution. You may only transfer modified, altered, or original material from the Expression Kit to a third party following written notification of, and written approval from, Invitrogen so that the recipient can be licensed. You may not assign, sub-license, rent, lease or otherwise transfer this license agreement or any of the rights or obligation thereunder, except as expressly permitted by Invitrogen and RCT.Termination of License This license agreement is effective until terminated. You may terminate it at any time by destroying all Pichia expression products in your control. It will also terminate auto-matically if you fail to comply with the terms and conditions of the license agreement. You shall, upon termination of the license agreement, destroy all Pichia Expression Kits in your control, and so notify Invitrogen in writing.This License shall be governed in its interpretation and enforcement by the laws of the State of California.Contact for Commercial Licensing Bennett Cohen, Ph.D.Research Corporation Technologies 101 North Wilmot Road, Suite 600 Tucson, Arizona 85711-3335 Phone: (520) 748-4400Fax: (520)748-0025User Registration Card Please complete and return the enclosed User Registration Card for each PichiaExpression Kit that you purchase. This will serve as a record of your purchase and regis-tration and will allow Invitrogen to provide you with technical support and manualupdates. It will also allow Invitrogen to update you on future developments and improve-ments to the Pichia Expression Kit. The agreement outlined above becomes effectiveupon our receipt of your User Registration Card or 10 days following the sale of thePichia Expression Kit to you. Use of the kit at any time results in immediate obligation tothe terms and conditions stated in this license agreement.xiProduct QualificationIntroduction This section describes the criteria used to qualify the components in the PichiaExpression Kit.Vectors All expression vectors are qualified by restriction enzyme digestion. Restriction digests must demonstrate the correct banding pattern when electrophoresed on an agarose gel.Spheroplast Reagents The spheroplast reagents are qualified by spheroplast preparation of GS115 following the protocol provided in the Pichia Expression Kit manual. At least 70% of the Pichia pastoris cells must form spheroplasts in 30 minutes or less.Pichia Strains The Pichia strains are by demonstrating viability of the culture. Single colonies should arise within 48 hours after streaking on YPD medium from the stabPrimers Sequencing primers are lot tested by automated DNA sequencing experiments.Buffers andSolutionsAll buffers and solutions are extensively tested for sterility.Media All Pichia growth and expression media are qualified by growing the GS115 Pichiastrain.xiiIntroductionOverviewReview Articles The information presented here is designed to give you a concise overview of the Pichia pastoris expression system. It is by no means exhaustive. For further information, pleaseread the articles cited in the text along with recent review articles (Buckholz and Gleeson,1991; Cregg et al., 1993; Sreekrishna et al., 1988; Wegner, 1990). A general review offoreign gene expression in yeast is also available (Romanos et al., 1992).General Characteristics of Pichia pastoris As a eukaryote, Pichia pastoris has many of the advantages of higher eukaryotic expression systems such as protein processing, protein folding, and posttranslational modification, while being as easy to manipulate as E. coli or Saccharomyces cerevisiae. It is faster, easier, and less expensive to use than other eukaryotic expression systems such as baculovirus or mammalian tissue culture, and generally gives higher expression levels. As a yeast, it shares the advantages of molecular and genetic manipulations with Saccharomyces, and has the added advantage of 10- to 100-fold higher heterologous protein expression levels. These features make Pichia very useful as a protein expression system.Similarity to Saccharomyces Many of the techniques developed for Saccharomyces may be applied to Pichia including: • transformation by complementation• genedisruption• genereplacementIn addition, the genetic nomenclature used for Saccharomyces has been applied to Pichia. For example, the HIS4 gene in both Saccharomyces and Pichia encodes histidinol dehydrogenase. There is also cross-complementation between gene products in both Saccharomyces and Pichia. Several wild-type genes from Saccharomyces complement comparable mutant genes in Pichia. Genes such as HIS4, LEU2, ARG4, TRP1, and URA3 all complement their respective mutant genes in Pichia.Pichia pastoris as a Methylotrophic Yeast Pichia pastoris is a methylotrophic yeast, capable of metabolizing methanol as its sole carbon source. The first step in the metabolism of methanol is the oxidation of methanol to formaldehyde using molecular oxygen by the enzyme alcohol oxidase. This reaction generates both formaldehyde and hydrogen peroxide. To avoid hydrogen peroxide toxicity, methanol metabolism takes place within a specialized cell organelle called the peroxisome, which sequesters toxic by-products from the rest of the cell. Alcohol oxidase has a poor affinity for O2, and Pichia pastoris compensates by generating large amounts of the enzyme. The promoter regulating the production of alcohol oxidase drives heterologous protein expression in Pichia.Two Alcohol Oxidase Proteins The AOX1 and AOX2 genes code for alcohol oxidase in Pichia pastoris. The AOX1 gene product accounts for the majority of alcohol oxidase activity in the cell. Expression of the AOX1 gene is tightly regulated and induced by methanol to high levels, typically > 30% ofthe total soluble protein in cells grown with methanol as the carbon source. The AOX1 gene has been isolated and the AOX1 promoter is used to drive expression of the gene of interest (Ellis et al., 1985; Koutz et al., 1989; Tschopp et al., 1987a). While AOX2 is about 97% homologous to AOX1, growth on methanol is much slower than with AOX1. This slowgrowth allows isolation of Mut S strains (aox1) (Cregg et al., 1989; Koutz et al., 1989).continued on next page1Overview, continuedExpression Expression of the AOX1 gene is controlled at the level of transcription. In methanol-grown cells approximately 5% of the polyA+ RNA is from the AOX1 gene. The regulation of theAOX1 gene is a two step process: a repression/derepression mechanism plus an inductionmechanism (e.g. GAL1 gene in Saccharomyces (Johnston, 1987)). Briefly, growth onglucose represses transcription, even in the presence of the inducer methanol. For thisreason, growth on glycerol is recommended for optimal induction with methanol. Pleasenote that growth on glycerol (derepression) is not sufficient to generate even minute levelsof expression from the AOX1 gene. The inducer, methanol, is necessary for detectablelevels of AOX1 expression (Ellis et al., 1985; Koutz et al., 1989; Tschopp et al., 1987a).Phenotype of aox1 mutants Loss of the AOX1 gene, and thus a loss of most of the cell's alcohol oxidase activity, results in a strain that is phenotypically Mut S (Methanol utilization slow). This has in the past been referred to as Mut. The Mut S designation has been chosen to accurately describe the phenotype of these mutants. This results in a reduction in the cells' ability to metabolize methanol. The cells, therefore, exhibit poor growth on methanol medium. Mut+ (Methanol utilization plus) refers to the wild type ability of strains to metabolize methanol as the sole carbon source. These two phenotypes are used when evaluating Pichia transformants for integration of your gene (Experimental Outline, page 3).Intracellular and Secretory Protein Expression Heterologous expression in Pichia can be either intracellular or secreted. Secretion requires the presence of a signal sequence on the expressed protein to target it to the secretory pathway. While several different secretion signal sequences have been used successfully, including the native secretion signal present on some heterologous proteins, success has been variable. The secretion signal sequence from the Saccharomyces cerevisiaeα factor prepro peptide has been used most successfully (Cregg et al., 1993; Scorer et al., 1993).The major advantage of expressing heterologous proteins as secreted proteins is that Pichia pastoris secretes very low levels of native proteins. That, combined with the very low amount of protein in the minimal Pichia growth medium, means that the secreted heterologous protein comprises the vast majority of the total protein in the medium and serves as the first step in purification of the protein (Barr et al., 1992). Note: If there are recognized glycosylation sites (Asn-X-Ser/Thr) in your protein's primary sequence, glycosylation may occur at these sites.Posttranslational Modifications In comparison to Saccharomyces cerevisiae, Pichia may have an advantage in the glyco-sylation of secreted proteins because it may not hyperglycosylate. Both Saccharomyces cerevisiae and Pichia pastoris have a majority of N-linked glycosylation of the high-mannose type; however, the length of the oligosaccharide chains added posttranslationally to proteins in Pichia (average 8-14 mannose residues per side chain) is much shorter than those in S. cerevisiae (50-150 mannose residues) (Grinna and Tschopp, 1989; Tschopp et al., 1987b). Very little O-linked glycosylation has been observed in Pichia.In addition, Saccharomyces cerevisiae core oligosaccharides have terminal α1,3 glycan linkages whereas Pichia pastoris does not. It is believed that the α1,3 glycan linkages in glycosylated proteins produced from Saccharomyces cerevisiae are primarily responsible for the hyper-antigenic nature of these proteins making them particularly unsuitable for therapeutic use. Although not proven, this is predicted to be less of a problem for glycoproteins generated in Pichia pastoris, because it may resemble the glycoprotein structure of higher eukaryotes (Cregg et al., 1993).2Experimental OutlineSelection of Vector and Cloning To utilize the strong, highly inducible P AOX1 promoter for expression of your protein, four expression vectors are included in this kit. pHIL-D2 and pPIC3.5 are used for intracellular expression while pHIL-S1 and pPIC9 are used for secreted expression (see pages 14-19 for more information). Before cloning your insert, you must...• decide whether you want intracellular or secreted expression.• analyze your insert for the following restriction sites: Sac I, Stu I, Sal I, Not I, and Bgl II. These sites are recommended for linearizing your construct prior to Pichiatransformation. If your insert has all of these sites, see pages 28-29 for alternate sites.Transformation and IntegrationTwo different phenotypic classes of His+ recombinant strains can be generated: Mut+ and Mut S. Mut S refers to the "Methanol utilization slow" phenotype caused by the loss of alcohol oxidase activity encoded by the AOX1 gene. A strain with a Mut S phenotype has a mutant aox1 locus, but is wild type for AOX2. This results in a slow growth phenotype on methanol medium. Transformation of strain GS115 can yield both classes of transformants, His+ Mut+ and His+Mut S, while KM71 yields only His+ Mut S since the strain itself is Mut S. Both Mut+ and Mut S recombinants are useful to have as one phenotype may favor better expression of your protein than the other. Due to clonal variation, you should test 6-10 recombinants per phenotype. There is no way to predict beforehand which construct or isolate will better express your protein. We strongly recommend that you analyze Pichia recombinants by PCR to confirm integration of your construct (see page 40).Once you have successfully cloned your gene, you will then linearize your plasmid to stimulate recombination when the plasmid is transformed into Pichia. The table below describes the types of recombinants you will get by selective digestion of your plasmid. RestrictionEnzymeIntegration Event GS115 Phenotype KM71 PhenotypeSal I or Stu I Insertion at his4His+ Mut+ His+ Mut SSac I Insertion at 5´AOX1 regionHis+ Mut+ His+ Mut SNot I or Bgl II Replacement atAOX1 locusHis+ Mut SHis+ Mut+His+ Mut S (notrecommended, see page 11)Expression and Scale-up After confirming your Pichia recombinants by PCR, you will test expression of both His+Mut+ and His+ Mut S recombinants. This will involve growing a small culture of each recombinant, inducing with methanol, and taking time points. If looking for intracellular expression, analyze the cell pellet from each time point by SDS polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE). If looking for secreted expression, analyze both the cellpellet and supernatant from each time point. We recommend that you analyze your SDS-PAGE gels by both Coomassie staining and Western blot, if you have an antibody to your protein. We also suggest checking for protein activity by assay, if one is available. Not all proteins express to the level of grams per liter, so it is advisable to check by Western blotor activity assay, and not just by Coomassie staining of SDS-PAGE gels for production of your protein.Choose the Pichia recombinant strain that best expresses your protein and optimizeinduction based on the suggestions on pages 47-48. Once expression is optimized, scale-up your expression protocol to produce more protein.continued on next page3。
甲醇营养型毕赤酵母表达系统介绍巴斯德毕赤酵母(Pichia pastoris)是近几年发展起来的较为完善的、
被广泛用来表达外源蛋白的甲醇营养型酵母表达系统。
目前通过毕赤
酵母表达了很多种性质不同的蛋白,越来越多的实验室及公司开始搭
建毕赤酵母表达系统的平台,相信随着对毕赤酵母表达系统的研究越
来越深入,会有更多成功表达并进行商业化应用的案例出现。
1.其优点主要为:
1) 具有强有力的乙醇氧化酶(Alochol Oxidase,AOX1)基因启动子,可严格调控外源蛋白的表达;
2) 作为真核表达系统,可对表达的蛋白进行翻译后的加工与修饰,
从而使表达出的蛋白具有生物活性;
3) 营养要求低、生长快、培养基廉价,便于工业化生产; 4) 可高密度发酵培养,在发酵罐中细胞干重甚至可达120g/L以上; 5) 表达量高,许多蛋白可达到g/L以上水平;
6) 在P. pastoris中表达的蛋白既可存在于细胞内,又可分泌到胞外,
自身分泌的蛋白非常少,十分有利于纯化;
7) 糖基化程度低,与S. cerevisiae相比,P. pastoris不产生过度的糖基化。
P. pastoris表达的糖蛋白的糖链长度为8-14个甘露糖,而S. cerevisiae 糖链中甘露糖多达50-150个;S. cerevisiae分泌的糖蛋白的核心寡聚糖具有终端α-1,3糖苷连接,使分泌的糖蛋白的抗原性明
显增强,而P.pastoris的糖基化位点与哺乳类细胞的相同,其所分泌
的糖蛋白的免疫原性较低,更利于临床应用。
一、概述毕赤酵母是一种常见的真菌,它在生物技术和分子生物学领域有着广泛的应用。
在这些领域,研究人员经常需要对蛋白质进行糖基化修饰的研究,而毕赤酵母表达系统正是其中的一种重要工具。
本文将就毕赤酵母表达蛋白糖基化位点的方法进行介绍。
二、毕赤酵母表达系统简介1. 毕赤酵母表达系统的原理毕赤酵母表达系统是指利用毕赤酵母表达载体,将目标蛋白基因导入毕赤酵母中,使其在毕赤酵母中进行表达。
该系统具有高度的复制和表达效率,能够在较短的时间内高效地产生目标蛋白。
2. 毕赤酵母表达系统的优势和应用毕赤酵母表达系统具有许多优势,例如能够进行大规模的表达,提高了蛋白质的产量;同时也能够实现正常的翻译后修饰以及蛋白折叠功能。
在生物技术和分子生物学领域有着广泛的应用,如药物开发、生物能源等领域。
三、毕赤酵母表达蛋白糖基化位点的方法1. 利用质粒表达毕赤酵母表达载体中含有丰富的糖基化因子,对于糖基化位点的研究提供了便利。
研究人员可以将目标蛋白基因克隆至毕赤酵母表达载体中,通过大规模的表达筛选,筛选出糖基化位点进行研究。
2. 利用质粒诱导表达研究人员还可以通过对毕赤酵母进行质粒诱导,使其表达特定的糖基化酶,从而实现对特定蛋白质的糖基化位点的研究。
这种方法能够有效地降低研究成本,是当前常用的研究手段之一。
3. 基因敲除或过表达最近,基因敲除或过表达技术在毕赤酵母的研究中得到了广泛的应用。
研究人员可以通过敲除特定的糖基化酶基因或过表达其基因,从而实现对糖基化位点的研究。
这种方法能够帮助研究人员更深入地了解糖基化位点在蛋白质功能中的作用。
四、毕赤酵母表达蛋白糖基化位点研究的意义1. 为蛋白质功能研究提供重要依据研究糖基化位点能够帮助人们更深入地了解蛋白质的结构和功能。
糖基化位点通常与蛋白质的功能密切相关,通过研究糖基化位点,可以为蛋白质功能的研究提供重要的依据。
2. 为药物研发提供理论支持糖基化位点在药物研发中也有着重要的意义。
许多药物的研发过程中需要考虑蛋白质的糖基化修饰,因此对糖基化位点进行研究能够为药物研发提供理论支持。
巴斯德毕赤酵母及启动子1.1 毕赤酵母表达系统简介随着蛋白异源表达的飞速发展,越来越多的表达系统被建立并得到应用。
酵母作为单细胞真核生物,因具有比较完备的基因表达调控机制和对表达产物的加工修饰能力,仍表现出不可比拟的优势。
以甲醇营养型酵母(Methylotrophic yeast)-毕赤酵母为代表的第二代酵母表达系统,是近年来被公认的最有效的外源蛋白表达系统之一,已有多种外源蛋白在该宿主系统中获得了成功表达[1]。
作为生产外源蛋白的重要宿主菌,依靠其各种不同功能的表达载体,已经得到广泛的应用。
表达的蛋白质包括酶、膜蛋白、抗原、抗体和调节蛋白等[2,3]。
毕赤酵母(Pichia pastoris)表达系统是近年来发展迅速、应用广泛的一种真表达系统。
它是甲醇营养型酵母菌,有两个乙醇氧化酶(alcohol oxidase,Aox)码基因AOX1和AOX2,两者序列相似,AOX1基因严格受甲醇诱导和调控。
当甲醇为唯一碳源时,AOX1启动子可被甲醇诱导,启动乙醇氧化酶的表达,从而用甲醇进行代谢[4]。
含AOX1启动子的质粒可用来促进编码外源蛋白的目的因的表达。
随着Invitrogen公司开发的一系列毕赤酵母表达试剂盒的应用,目前用该统已成功表达出了数以千计的来自细菌、真菌、原生动物、植物、无脊椎动物、包括人在内的脊椎动物以及病毒等的具有生物学功能的外源蛋白或蛋白结构[5,6]。
1.1.1 P.Pastoris表达载体及其元件由于毕赤酵母没有稳定的附加质粒,表达载体需与宿主染色体发生同源重组,外源基因表达框架整合于染色体中以实现外源基因的表达整合表达的优点在于保持外源基因稳定性并可产生多拷贝基因。
典型的毕赤氏酵母表达载体含有醇氧化酶基因的调控序列,主要的结构包括:5′AOX1启动子片段、多克隆位点(MCS)、转录终止和polyA形成基因序列(TT)、筛选标记(His4或Zeocin)、3′AOX1基因片段,作为一个能在大肠杆菌中繁殖扩增的穿梭质粒,它还有部分pBR322质粒或COLE1序列。
很好,需要好好研究一下原文地址:毕赤酵母表达知识01转载于丁香作者:思时尔非a.配制500×BIOTIN stock solution(0.02%)有这么3种方案:1、懒人是将Biotin直接溶在去离子水中,放过夜,基本就能溶;2、急性子是将溶液配成0.02N的NaOH,就很容易溶解了;3、水浴加热,温度不能高于50度。
D-生物素是具有生物活性的生物素,也就是vitaminH。
在毕赤酵母代谢过程中,作为多种酶的辅基起作用。
天然培养基中一般可以不单独添加,因为YNB中、酵母粉、蛋白胨中均含有一定量的生物素,但是做高密度发酵还是必须要添加的。
b.有几个比较迷惑的问题请教大家:(很典型的小问题)1、制感受态细胞,OD多少比较好?pyrimidine 战友的方法:取1mlGS115过夜培养物(OD约6-10) 分装到1.5ml EP 管中。
说明书还有一些文献是说在1.3左右效率高,再高了效率会很低2、关于高效转化法,文献说用(LiAc),而invitrogen的说明书说转化毕赤酵母用(LiAc)没用,要用LiCl。
Lithium acetate does not work with Pichia pastoris. Use only lithium chloride.3、YNB到底能高温灭么?有的说能有的说不能。
过滤灭菌的怎么操作?我是把滤器装好膜绑到瓶口用纱布盖上,报纸包上,瓶盖放烧杯里单灭。
然后把配好的溶液用注射器一点点推进去。
4、葡萄糖为什么在YPD里一起灭颜色很深,单灭则不会。
该115度还是121度灭?网上搜了下,都有人用!5、电转化参数用400欧还是200欧?有的用400,有的还专门说不是用400。
都是从园里看到的!电击参数:1.5KV,25uF,200欧姆(不是400)6、电转后,在MD平板上长的应该就是整合了目的基因的重组子了吧?如果不想筛高拷贝的,是否PCR验证一下即可?网友的回答:ynb最好不灭菌,我是0.22um过滤处理的。
invitrogen手册上可以灭菌的。
glucose和含氮化合物在一起容易产生美拉德反应,这是配制培养基中的禁忌。
颜色很深的话,基本不能使用了。
想请教下关于菌种保存的方法。
我现在是采用斜面保存的方法,但感觉每次接菌都要打开斜面,而且每次的接菌量难免会有不少的误差,所以很想问一下大家都是怎么保存菌种的,特别是甘油菌的保存方法。
我一般吸取300ul的菌液到灭菌的EP管然后加等体积的甘油,混匀.防于-20度.保存长的话最好放-80度冰箱一般OD是2-6,过夜菌在筛选高表达菌种中,我一般有一下步骤,很很多人做的不太一样,和说明书也有点差异,如下:每次转化前,均用多种酶切,BlgII/salI/sacI同时切,然后转化时,用GS115/KM71/KM71H同时转化,转化的条件也和大家一样,即1.5/25/200但是我用的是0.1的杯子,不是0.2的,转化后涂MM及YPD+0.25G,长出菌落后,即进行大规模的表达试验,这里我要重点说明的是,我直接用YPD表达的,一般48h后即进行大量的SDS-PAGE鉴定,鉴定时,样品不用浓缩,直接上样,看到目的带后再做PCR,测序。
我已用这儿方法做了好几个基因出来。
关于酵母表达时BMMY的PH值我也觉得PH7.0-7.5要比PH6.0好,我表达的两个蛋白都是这样,表达量要高一些。
但也不能一概而论,不同目标蛋白表达最适pH不一样,不过表达的pH值最好要远离目标蛋白的pI。
像目前国内外做的最好的rHSA,最适pH大概5-6左右,也有不同的报道,可能和工艺页有关系。
而我自己正在做的一个蛋白pH4较好,3、5表达时上清电泳目标带大量减少,杂带大量增多。
求助一下很棘手的问题,大家在酵母表达过程中控制目标蛋白降解方面有什么高招,小弟最近为这个有点儿焦头烂额。
我试过用酸消解酪蛋白,可是作用并不是很明显。
不知道兄台是胞内表达还是胞外表达,如果是分泌表达,目标蛋白确实容易被降解。
你可以尝试以下几种办法:1、尽可能降低培养液的pH值减少酶活,酵母生长pH值比较广,4~7都可以试一下;2、多试几种蛋白添加剂,充当酶解底物;3、摸索最适下罐(摇瓶也一样),宁可少表达点也别给降解光了。
实在没办法,只好换菌株或做pcr突变酶切位点(当然不能影响表达和蛋白活性)。
Several strategies have been reported as effective in minimizing the proteolytic instability of specific foreign proteins secreted into the P.pastoris culture medium.The first is adding to the culture medium of amino-acid rich supplement such as peptone or casamino acid, which reduce product degradation possibly by acting as execess substrates for one or more problem proteases. The second strategy to minimize proteolytic degradation is to optimize the culture pH between pH 3.0 and pH7.0.The third strategy involves elevating the level ofammonium in the culture broth adequately, which is explained by the hypothesis that portease activity is induced under nitrogen starvation.The forth strategy is let the culture temperature 28 deg instead of 30 deg.如何优化密码子来提高蛋白表达量,具体考虑哪些因素(肯定不是单纯的全部置换为使用频率高的密码子吧)看有些文献优化后的密码子有些都是使用频率不高的,实在很困惑.有没有做过这方面的,急切的想得到你的指导,收取一定的费用也可以。
谢谢了,我在上海。
密码子改造对提高表达量只有有限的作用。
影响外源蛋白在Pichia中表达水平的限速步骤(rate-limiting factors)很多。
涉及到转录,翻译,蛋白在ER和Golgi的合成和折叠,以及分泌信号肽定位和切割,蛋白修饰等很多方面(H. Hohenblum, Biotechnology and Bioenginering, 2004, 85:367-374) 。
关键是根据你要表达的蛋白性质以及DNA序列特性来推测(!)哪个步骤是关键的限速步骤。
实际上,很多分泌表达的蛋白,蛋白在ER中合成和折叠以及信号肽的切割是关键步骤。
现象是很多错误折叠的蛋白在胞内聚集和降解。
密码子作为限速步骤很多时候体现在某些蛋白由于高AT含量或者其他因素转录提前终止,这方面文献在NCBI上有一些。
我用Pichia酵母分泌表达两个不同的蛋白,结果Western Blot的结果显示,两个蛋白均比理论分子量少了20k左右。
难道都是被发酵液中的蛋白酶降解了?大家碰到过这样的情况吗?如果是少了20K左右,肯定要考虑酶解的可能了.你的目的蛋白一级序列是否有Pichia酵母的Kex2酶降解位点.我现在做的蛋白就有这种情况,但是是降解产物和目的蛋白共存,有的蛋白幸免遇难用BglII、SalI、SacI酶切的区别是什么?我是想做蛋白表达,用BglII后转化行么?它们三个是不是哪个可以用了?BglII 好像能把质粒切成两段,与其它两种线性化方法比较,较易生成muts型的转化子,当然比例也是少。
SalI、SacI酶切基本只能产生mut+型的转化子,我看文献介绍,后者的转化效率比前者要高。
我用前者线性化的,感受态也是用常规方法,没有DTT LiCl什么的,板子也是长得满满的。
哪位有毕赤酵母上罐的一些无机培养基配方能提供参考!谢谢!毕赤酵母基因组DNA PCR怎么也p不出来,质粒和线性化后的质粒都能P出来,但是电转化进入毕赤酵母GS115后怎么也p不出来,不知怎么了?以前做的都是小菜一碟呀,那位战友有这方面的经验啊?是不菌株有问题啊?恳求指点一下!非常感谢!电转化后涂在MD平板上的么?应该大部分都是阳性克隆,可能是你提基因组的方法有问题,以前有战友介绍过菌落PCR的方法,我刚试过,效果非常非常好。
2.2kb的片段非常清楚。
退火温度我用的56度1min,72度2min,35个循环。
挑取单菌落均匀涂抹于管底,开盖在微波炉中档加热1min,-80℃5min,再加热一次,然后加入20ul水,取1ul作为PCR模板。
他本来说离心取上清为模板,我就直接取的。
非常非常好用,一般的方法提基因组,比如煮冻煮法等,很难P出2.2kb的AOX1 基因而这个方法就能,还非常明显。
你翻一下前两页吧,我还把自己的图贴出来了。
选5‘aox和3’aox这两个引物,这样还能判断你的转化子是mut+或muts型的。
跑出两条来说明是mut+,其中一条2.2kb的就是aox1基因。
这里不涉及aox2,建议你去invitrogen网站下一本multicopy pichia expression manual,看一遍就很清楚了。
MD平板上的阳性克隆应该比例很大的,我觉得3个就至少有一个是。
万事都没那么觉对的,在整合时,可能仅His4基因整合入了酵母基因组,所以也能生长,但无目的基因。
请教几个问题1. 鉴定重组时候,我煮冻煮方法获取酵母基因组作为模板,用目的基因的引物进行扩增,结果有些产物很强,有些很弱,为什么?2。
是否存在这样情况,线性化载体进入酵母内,没有进入核内进行重组,或者进入核内,仅仅黏附在酵母基因组上,没有发生重组呢?如果有这个情况,该如何区别?3.用烧瓶摇菌的转速对表达有什么影响,听说过高转速使酵母总处于分裂增殖,而表达低?4.大家大规模发酵的步骤是怎么样的,能提供一个方案吗?关于PCR的问题,我觉得你的模板差异大吗?我做很多次PCR鉴定,发觉模板量的差别对PCR的结果会有非常大的影响。
不过我做的PCR鉴定,基本上都是用AOX1引物P的,倒是没用过目的基因引物。
摇瓶的问题我也说不出来,因为我到目前为止都没做出分泌性表达来,汗啊……(都在胞内了)速度我都是按照Protocol上的推荐速度摇的,一般都是250rpm 以上。