细胞迁移和侵袭实验
实验准备：
细胞，24孔板，transwell小室（8µm，24孔板专用），ECM Gel，10%FBS+培养基，无血清培养基，10 µ、200 µL、1000 µL移液器及配套枪头，1.5 mL EP 管，冰盒
实验设计：
实验分组一般分为阴性组（上下层均没有趋化因素），实验组（按照实验需要，上层或者下层加入趋化因素），对照组（趋化因素与实验组中的相反）。如果有特别需要，可以再加上阳性组（上下层都有趋化因素）。
实验操作（请细读注意事项）：
一、细胞侵袭实验
1.ECM Gel原液提前1 h放在4 ℃冰箱中解冻，实验前转移到冰盒中。
2.将1.5 mL EP、枪头盒、transwell放在24孔板里面后，置于冰上预冷。
3.根据自己的使用量，按照ECM Gel : 无血清培养基=1 : 7.5在冰上稀释成使
用液。
4.把枪头剪去一小段（约3 µm）后在冰上吸取40 µL/孔ECM Gel使用液轻轻
加入transwell上室中，加入时慢慢移动枪头，保证液体平铺在底部。
5.放在37 ℃孵箱15 min，让胶凝固。
6.消化、离心、计数细胞后，按照2.5x104 / mL用无血清培养基稀释细胞，
制成细胞悬液（如果细胞很多，这一步可以提前，在4、5之前做）。
7.按照每孔200 µL，将细胞悬液加入transwell上室，同时在transwell下室加
入10%FBS+培养基500 µL，放入37 ℃孵箱培养。
8.若干小时后取出，吸去transwell上室多余液体，用PBS清洗两次，用棉棒
在上室中轻轻转动，吸干水分并擦去膜内侧的细胞。
9.在上室中加入结晶紫染液，染色5 min，回收染液，用流水缓缓冲去染液，
再次用棉棒在上室中轻轻转动，吸干水分。
10.在正置显微镜上放置一块载玻片，将transwell小孔倒置放在上面，拍照。
11.在100倍视野下，对膜的上下左右及中间计数，做平均数。
12.清洗transwell，可以反复使用。
二、细胞侵袭实验
细胞迁移实验不需要ECM Gel包被，其余步骤一致。
实验原理：
多孔膜是聚碳酸酯膜
（polycarbonate membrane），膜带有
微孔，孔径大小有0.1－12.0 µm。
将Transwell小室放入对应的培养
板中，小室内称上室，培养板内称下室，上室内盛装上层培养液，下室内盛装下层培养液，上下层培养液以聚碳酸酯膜相隔。将细胞种在上室内，由于聚碳酸酯膜有通透性，下层培养液中的成分可以影响到上室内的细胞，从而可以研究下层培养液中的成分对细胞生长、运动等的影响。
细胞迁移和侵袭实验常用8.0µm膜，上室种肿瘤细胞，
下室加入FBS或某些特定的趋化因子，肿瘤细胞会向营养
成分高的下室运动，从而从多孔膜一侧穿过，贴壁于多孔
膜的另一侧，计数其细胞量可反映肿瘤细胞的迁移或者侵
袭能力（圆形透明小孔为微孔）。
（注：迁移和侵袭是两个概念，迁移是指细胞的运动能力，而侵袭是细胞在运动的同时会分泌出消化ECM的蛋白，清除运动障碍，这个实验更能模拟人体内环境）
注意事项
1.ECM Gel（货号：E1270）由Sigma公司生产，来源于大鼠肉瘤的细胞外基
质提取物，保存在-20℃，由于在室温中会快速凝固，不可逆，因此需要在冰上溶解和操作，同时一切要与ECM Gel接触的耗材也需要预冷，避免俩
者接触时温差较大引起ECM Gel凝固粘附，造成浪费。
2.本组常用的Transwell是Millipore公司生产
的8um悬挂式millicell（货号：Millipore
PIEP12R48 Millicell Hanging Cell Culture 24
well PET 8um）。每次使用完后用0.25%胰酶
浸泡膜底10 min去除贴底细胞，清洗，棉
签温柔擦拭，75%乙醇浸泡24h，晾干，
使膜上粘附的细胞和染液完全洗脱，下次使用前紫外照射正反两面，各30 min，通常可以反复用3-5次
3.制作ECM Gel使用液时，先加入培养基，再加入ECM Gel；同时在使用量
的基础上多配置5-20 uL（使用量多就多配点），避免液体挂壁造成最后一次加样不够。
4.加胶时，胶的量以刚好把胶浸湿为最好（24孔的millicell需要35-40uL），
过厚细胞侵袭变慢，过少则失去侵袭实验的意义；完成后可轻轻地，均匀地拍打培养板四个侧面，让液体完全平铺，这样可以避免因为胶的厚薄不均而引起的误差。
5.凝固时间可以适当延长，但最好不要超过30min，防止液体挥发使gel凝
固得过硬。
6.通常先根据细胞的侵袭能力估计每孔小室加入的细胞数量，侵袭能力强的
细胞（如231，CAF）每孔加入5,000个，那最后的细胞悬液应该制备成2.5x104 / mL，而侵袭能力弱的细胞（如MCF-7）可以提高细胞数量，达到10,000个，那最后的细胞悬液应该制备成5x104 / mL。上层加入细胞悬液后可轻轻地，均匀地拍打培养板四个侧面，让液体完全平铺，避免细胞分布不均而引起细胞计数时中间多两边少。
7.加入下室中的10%FBS是作为趋化因子诱导细胞运动，24孔板下室一般加
入500µl含FBS的培养基，不同的培养板加的量有不同要求，具体请参考说明书。这里要特别注意的是，下层培养液和小室间常会有气泡产生，一旦产生气泡，气泡处的趋化作用就减弱甚至消失了，在种板的时候要特别留心，小室在放入时倾斜缓慢放入（注意小室中的液体不要流出），可以
