植物生理学实验课程
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《植物生理学》课程教学大纲课程名称:植物生理学课程类别:专业基础课适用专业:园艺考核方式:考试总学时、学分:48学时3学分其中实验学时:学时一、课程教学目的植物生理学是生物学的重要分支学科,理论性和实践性都很强。
课程教学的目的主要是:使学生掌握植物生命活动的基本生理过程及各生理过程相互依赖和相互制约的关系;植物各生理过程的机理及其研究最新动态;植物与环境的协调、统一关系。
在不同逆境条件下,对植物生长发育的影响以及植物对逆境的适应。
植物生理学理论是指导农业生产、林业生产的理论基础,使学生明白只有紧密结合生产实践,才能赋予本学科强大的生命力。
二、课程教学要求通过本课程的学习,要求学生了解植物生理学概念的基本内涵及其所研究的主要内容;了解植物体内的物质代谢与能量代谢的基本情况和过程及这些代谢过程之间的相互关系;掌握植物生长发育的基本规律,理解外界条件对植物生长发育进程的影响;了解植物逆境种类及其对植物的危害,理解植物抗逆性的生理基础,掌握提高植物抗逆性的原理、途径和方法;理解植物生理学是一门实验科学,通过实验教学,使学生掌握研究植物生命活动的基本方法和基本技能,培养学生观察问题和分析问题的能力,以及提高理论联系实际、掌握解决生产实践中的实际问题的途径和方法,为现代农业、林业、园艺及资源植物的开发和利用服务。
由于植物生理学涉及植物生命活动过程的各个方面,学时少,内容多,在教学上力求深入浅出,突出重点,及时反映生产过程中出现的新问题、新情况及植物生理学研究的新进展。
在重视植物生理学基本理论、基本知识和基本技能教学的同时,加强学生创新思维、实践能力和科学素质的培养。
三、先修课程植物学、物理、生物化学四、课程教学重、难点植物生理学的教学重点应放在植物的水分代谢、光合作用、呼吸作用、有机物质运输、植物的生长物质、生长生理以及开花结实生理等方面。
植物生理学的教学难点是植物的渗透作用吸水、植物对矿物质的主动吸收、光合作用机理以及植物激素的作用机理等方面。
实验报告课程名称:植物生理学及实验实验类型:探索、综合或验证实验项目名称:植物NR活力测定——体内法(活体法)一、实验目的和要求掌握体内法测定植物组织中的硝酸还原酶原理和方法,明确诱导酶含义。
二、实验内容和原理实验原理:硝酸还原酶是植物氮元素代谢过程中的关键酶,与作物的吸收和利用氮元素有关,他们作用于硝酸根,使之还原为亚硝酸根:NRNO3-+NADH++H+ NO2-+NAD++H2O测定原理:根产生的亚硝酸根可以从组织内渗入到外界溶液中,从而测定溶液中亚硝酸根的含量的增加。
磺胺先与亚硝酸钠形成重氮盐,再与α-奈氨偶联形成紫色物质。
反应液的酸度和温度都会对反应产生影响。
三、主要仪器设备1.材料:在20℃蒸馏水培养一周小麦苗,实验前一天分两组,一组加KNO3,一组加0.5 mM CaCl2,在白天置光照下处理。
2.试剂:磺胺试剂、萘基乙烯二胺溶液,酶促反应液(PBs+KNO3)3.器材:分光光度计、注射器、试管、天平、烧杯、移液管、恒温箱四、操作方法与实验步骤1. 事先制作好NO 2-标准曲线。
2. 在20℃蒸馏水培养一周小麦苗,实验前一天分两组,一组加KNO 3,一组加0.5 mM CaCl 2,在白天置光照下处理。
3. 取各组苗地上部约0.5 g 左右,切成合适长度(1cm 左右),放入50mL 注射器中。
4. 加酶促反应液10ml,抽气直到材料完全下沉(一只手戴上手套,用戴手套的食指封住注射器头,另一只手反复推拉抽气减压,将叶片中的空气赶尽,直到材料完全下沉)。
5. 置恒温箱30℃ 20min ,取出后将反应液注射入烧杯中。
6. 取4ml 反应过的液体,加磺胺溶液2ml+萘基乙烯二胺溶液2ml,室温放置5min 后测540 nm OD 。
五、实验数据记录和处理1. NO 2-标准曲线2.六、实验结果与分析NO 2-标准曲线为: y = 0.0062x + 0.0283 (R 2 =0.9962)对照组NO 2-(nmol )= (0.115-0.0283)/0.0062 = 13.98处理组NO 2-(nmol )= (0.280-0.0283)/0.0062 = 40.60NR 活力(NO 2-生成nmol/(鲜重g.h ))= NO 2-(nmol )×3×(10/4) /实际重量g对照组NR 活力 = 13.98 * 3 * 2.5 /0.52 = 201.63(nmol/g.h ) 取苗上部重量 OD540值 对照组 0.52g 0.115 处理组 0.51g 0.280处理组NR活力 = 40.60 * 3 * 2.5 /0.51 = 597.06(nmol/g.h)七、讨论、心得1.比较KNO3诱导和加NH4Cl的NR活力大小,诱导时如用NaNO3替代KNO3结果会如何,为什么?如不进行光照,结果会怎么样,为什么?A.如用NaNO3替代KNO3,那么光合呼吸作用减弱,酶的活力降低,从而影响硝酸根转化为亚硝酸根,实验中可能两组紫红色的颜色差别很小,使测得的还原酶活力偏低。
《植物生理学实验》实验教学大纲课程名称:植物生理学课程类别:专业主干课适用专业:生物技术考核方式:考查实验学时、学分:16 学时0.5学分所属实验室:植物生理学实验室一、实验教学目的植物生理学是一门实践性与综合性很强的科学,对农业生产、作物栽培、花卉园艺栽培等实践性工作有重要的指导意义。
《植物生理学实验》是《植物生理学》的配套课程,要求学生学完本课程后能够对课堂教学内容即:课堂讲授的基本理论、基础知识有深刻的理解,而且要使学生掌握植物生理学的基本实验方法和技能,并在科学态度、实验技能技巧、独立工作能力、理论联系实际能力等方面获得基本的训练。
为未来的教育教学、科研和生产实践打下坚实的基础。
通过本课程的学习,使学生具备以下素质和能力:1. 通过植物生理学实验课的学习,使学生具备基本的实验操作能力。
2. 使学生能够应用植物生理学实验中的基本技术:无土栽培技术、组织培养技术等,发展现代农业、现代园林、设施农业、现代植物工厂等的创新意识和创新能力。
3. 掌握植物生理学实验中的一些基础性实验,获得相关的教育教学能力,进一步的科研工作能力。
4. 通过实验中开展的设计性试验等培养学生的实验设计能力、综合应用能力。
二、实验教学要求通过本实验课程的教学,要使学生学会植物生理学的基本实验方法、技术和设计思路,掌握植物生理学基本原理的验证方法和定量测定植物体内发生的生理生化变化,并初步具有完成综合性、设计性实验的能力。
三、对学生的指导和要求1.要求学生对每个实验的原理、方法有深刻的认识和理解2.要求学生在实验前预习实验内容,实验过程中从玻璃仪器的洗涤、药品的配制、称量及仪器的操作都要严格规范,实验后认真分析实验结果。
四、实验考核方式考查:平时,期末五、实验教学内容实验项目(一):植物组织渗透势的测定(1) 项目类别:必做■选做□(2) 项目性质:基础性■验证性■设计性□综合性□(3) 项目主要目的要求:一、质壁分离法:掌握用质壁分离法测定植物组织渗透势的原理,学会观察质壁分离现象并进行细胞渗透势的计算。
植物生理学与生物化学实验课程植物生理学与生物化学实验是大学生命科学类专业必修的一门实验课程。
通过这门课程的学习和实践,学生将深入了解植物的生理特征和生物化学过程。
本文将从实验内容、实验方法和实验意义三个方面,阐述植物生理学与生物化学实验课程的重要性。
一、实验内容1. 光合作用实验光合作用是指绿色植物能够将光能转化为化学能的过程。
通过观察水蕨植物光合作用的速率和光强之间的关系,学生能够了解到光合作用过程中光能的转化效率。
2. 呼吸作用实验呼吸作用是指植物将有机物转化为能量的过程。
通过实验观察不同环境条件下植物呼吸速率的变化,学生可以了解到温度、氧气浓度等因素对植物呼吸作用的影响。
3. 叶绿素含量测定实验叶绿素是植物进行光合作用的关键物质。
通过测定不同植物叶片中的叶绿素含量,学生可以了解不同物种和生长环境下植物的光合作用能力和适应性。
4. 酶活性测定实验酶是生物体内调控生物化学反应速率的关键因素。
通过实验测定不同温度和pH值下酶的活性变化,学生可以了解到酶的反应特性及其在植物生理过程中的重要作用。
二、实验方法在进行植物生理学与生物化学实验课程时,需要遵循科学的实验方法,确保实验结果的准确性和可靠性。
以下是一些通用的实验方法:1. 实验前准备包括仪器仪表的检查、试剂的准备和实验操作的演示等。
学生需要熟悉实验流程和操作步骤,以确保实验能够顺利进行。
2. 数据采集在实验过程中,学生需要记录实验现象和数据,如光合作用速率、呼吸速率、酶活性数值等。
注意实验数据的准确性和可比性。
3. 数据处理学生需要对采集到的实验数据进行统计和分析,比较不同组之间的差异,以得出准确的实验结论。
三、实验意义植物生理学与生物化学实验课程对于学生的专业成长具有重要意义:1. 培养科学精神和实验技能通过实际操作,学生能够培养科学精神,提高实验设计、操作和数据分析的能力,培养科学研究和实验工作的态度。
2. 加深对植物生理过程的理解通过实验的观察和实践,学生能够深入了解植物的生理过程、代谢特征和适应性,为进一步的研究和应用提供基础。
《植物生理学实验》课程大纲一、课程概述课程名称(中文):植物生理学实验(英文):Plant Physiology Experiments课程编号:18241054课程学分:0.8课程总学时:24课程性质:专业基础课前修课程:植物学、生物化学、植物生理学二、课程内容简介植物生理学是农林院校各相关专业的重要学科基础课,是学习相关后续课程的必要前提,也是进行农业科学研究和指导农业生产的重要手段和依据。
本实验课程紧密结合理论课学习内容,加深学生对理论知识的理解。
掌握植物生理学的实验技术、基本原理以及研究过程对了解植物生理学的基本理论是非常重要的。
本大纲体现了植物生理学最实用的技术方法。
实验内容上和农业生产实践相结合,加强学生服务三农的能力。
实验手段和方法上,注重传统、经典技术理论与现代新兴技术的结合,提高学生对新技术、新知识的理解和应用能力。
三、实验目标与要求植物生理学实验的基本目标旨在培养各专业、各层次学生有关植物生理学方面的基本研究方法和技能,包括基本操作技能的训练、独立工作能力的培养、实事求是的科学工作态度和严谨的工作作风的建立。
开设植物生理学实验课程,不仅可以使学生加深对植物生理学基本原理、基础知识的理解,而且对培养学生分析问题、解决问题的能力和严谨的科学态度以及提高科研能力等都具有十分重要的作用。
要求学生实验前必须预习实验指导和有关理论,明确实验目的、原理、预期结果,操作关键步骤及注意事项;实验时要严肃认真专心操作,注意观察实验过程中出现的现象和结果;及时将实验结果如实记录下来;实验结束后,根据实验结果进行科学分析,完成实验报告。
四、学时分配植物生理学实验课学时分配实验项目名称学时实验类别备注植物组织水势的测定3学时验证性叶绿体色素的提取及定量测定3学时验证性植物的溶液培养及缺素症状观察3学时验证性植物呼吸强度的测定3学时设计性红外CO2分析仪法测定植物呼吸速率3学时设计性选修植物生长物质生理效应的测定3学时验证性植物种子生活力的快速测定3学时验证性1果实、蔬菜中有机酸含量测定3学时设计性植物抗逆性的鉴定3学时设计性改良半叶法测定植物的光合速率6学时综合性选修植物生理综合演示实验3学时综合、设计性演示合计36学时注:本实验课程总计0.8学分,合24学时,安排8次实验,其中验证性实验占62.5%,综合性、设计性实验占37.5%。
浙江大学实验报告课程名称:植物生理学及实验实验类型: 验证型实验实验项目名称:植物生理学实验理论学生姓名:专业:学号:同组学生姓名:无指导老师:实验地点:实验日期:年月日一、实验目的和要求:1. 认识实验学习的重要性2. 掌握常用数据处理的技术3. 了解影响光合作用的因素二、实验内容和原理:对所给的数据进行处理,作图得到水稻抽穗期不同叶位叶片光照强度与光合作用强度关系图,比较两曲线的差别,求出光饱和点和光补偿点,并分析差异产生的原因。
三、主要仪器设备:计算机、excel软件四、操作方法与实验步骤:1. 分别计算第1叶与第3叶在不同光强下光合作用速率的平均值和误差2. 绘制带方差的折线图。
3. 以植物光合作用生理原理为依据分析折线图,分别找到光饱和点和光补偿点。
五、实验数据记录和处理:水稻抽穗期不同叶位叶片光强和光合速率关系图(如下)六、实验结果与分析:1.由上图可得:虽然第一叶和第三叶曲线的的曲率与渐近值有着明显的差异,但是它们的总趋势都是上升的,因此无法判断其光饱和点,仅能判断在光强小于100μmol photon m-2 s-1范围,第一叶曲线的曲率比第三叶小,相对光合速率低在光强大于100μmol photon m-2 s-1范围,第一叶曲线的曲率比第三叶大,相对光合速率高而光强较大的情况下第一叶曲线的曲率比第三叶大,其光饱和点会可能相对大。
2.由上图可得:第一叶的光补偿点约在光强为30μmol photon m-2 s-1范围第三叶的光补偿点约在光强为20μmol photon m-2 s-1范围3.曲线差异产生的原因水稻抽穗期不同叶位叶片利用光强进行光合作用的效率不同,第一叶自身呼吸作用较强,因此在光照较弱阶段,其光合速率低于呼吸作用较弱的第三叶,而当光强逐步增强时,第一叶以其对光能的高效吸收和利用,在光合作用效率上远远超过第三叶,由曲线趋势可知其光饱和点也高于第三点。
可知不同叶位叶片叶龄对其光合作用有着影响。
植物生理学实验课程教学大纲课程名称:植物生理学实验(Experimentation of plant physiology)课程编号:1313015225课程类别:专业课总学时数:38 实验时数:38学分:1开课单位:生命科学学院生物综合教研室适用专业:生物科学适用对象:本科(四年)一、课程的性质、类型、目的和任务植物生理学实验是高等院校生物科学专业开设的一门必修的专业课程,该实验是植物生理学发展的基础和重要环节,是植物生理学理论通向农业生产实践的桥梁。
实验课的主要任务是培养学生动手能力、观察能力、分析问题和解决问题的能力,促进创造性思维,同时培养学生科研意识及实事求是的科学态度和严谨的科学作风,为后续课程学习以及将来科研工作奠定坚实的基础。
二、本课程与其它课程的联系与分工本课程开设之前要求学生必须先修数学、物理学、无机化学、有机化学、分析化学、生物化学及植物学实验等相关课程,具有这些课的基础,方可开设此门专业必修课。
三、课程内容及教学基本要求实验一植物细胞渗透势的测定植物细胞渗透势的测定原理[3];测定方法[2];撕表皮[3];制片[3]。
实验二 TTC法测定植物根系活力植物根系活力测定的原理[2];测定方法[3];分光光度计的使用[3]。
实验三叶绿体色素的提取、分离和性质叶绿体色素的提取、分离和性质原理[2];测定方法[2];提取要点[3];层析要点[3];性质观察[1]。
实验四叶绿素的定量测定叶绿素定量的测定的原理[2];基本技术方法[3];含量计算[2]。
实验五植物呼吸速率的测定呼吸速率的测定原理[2];基本技术方法[3];滴定技术[3];呼吸作用的意义[1]。
实验六生长素类物质对根、芽生长的影响生长素类物质对萌发种子根、芽生长的影响实验原理[2];实验方法[2];测量[3];分析[3];生长素及其类似物质的生理效应[2]。
实验七种子生活力的快速测定种子生活力快速测定的原理[3];测定方法[2];种子死活判定[3]。
《植物生理学实验》课程大纲一、课程概述课程名称(中文):植物生理学实验(英文):PlantPhysiology Experiments课程编号:18241054课程学分:0。
8课程总学时:24课程性质:专业基础课前修课程:植物学、生物化学、植物生理学二、课程内容简介植物生理学就是农林院校各相关专业得重要学科基础课,就是学习相关后续课程得必要前提,也就是进行农业科学研究与指导农业生产得重要手段与依据。
本实验课程紧密结合理论课学习内容,加深学生对理论知识得理解。
掌握植物生理学得实验技术、基本原理以及研究过程对了解植物生理学得基本理论就是非常重要得。
本大纲体现了植物生理学最实用得技术方法、实验内容上与农业生产实践相结合,加强学生服务三农得能力。
实验手段与方法上,注重传统、经典技术理论与现代新兴技术得结合,提高学生对新技术、新知识得理解与应用能力。
三、实验目标与要求植物生理学实验得基本目标旨在培养各专业、各层次学生有关植物生理学方面得基本研究方法与技能,包括基本操作技能得训练、独立工作能力得培养、实事求就是得科学工作态度与严谨得工作作风得建立。
开设植物生理学实验课程,不仅可以使学生加深对植物生理学基本原理、基础知识得理解,而且对培养学生分析问题、解决问题得能力与严谨得科学态度以及提高科研能力等都具有十分重要得作用。
要求学生实验前必须预习实验指导与有关理论,明确实验目得、原理、预期结果,操作关键步骤及注意事项;实验时要严肃认真专心操作,注意观察实验过程中出现得现象与结果;及时将实验结果如实记录下来;实验结束后,根据实验结果进行科学分析,完成实验报告、四、学时分配植物生理学实验课学时分配实验项目名称学时实验类别备注植物组织水势得测定3学时验证性叶绿体色素得提取及定量测定3学时验证性植物得溶液培养及缺素症状观察3学时验证性植物呼吸强度得测定3学时设计性红外CO2分析仪法测定植物呼吸速率3学时设计性选修植物生长物质生理效应得测定3学时验证性植物种子生活力得快速测定3学时验证性果实、蔬菜中有机酸含量测定3学时设计性植物抗逆性得鉴定3学时设计性改良半叶法测定植物得光合速率6学时综合性选修植物生理综合演示实验3学时综合、设计性演示合计36学时注:本实验课程总计0。
《植物生理学实验》教学大纲课程名称(中文/英文):植物生理学实验(Plant physiology experiments) 课程编号:1805102课程类别:专业方向选修教材名称:《植物生理学实验》实验教学大纲与指导学时学分: 学时 21 学分 1 实验学时 21应开实验学期:二~三 年级 四~五 学期先修课程:植物生理学适用专业:环境科学,生物技术一、课程性质及要求本课程为环境科学、生物技术专业本科生开设的专业教育选修课,是《植物生理学》理论课教学的补充。
本课程教学要求:通过实验操作,让学生深入认识、巩固和扩充植物生理学的基本概念、基本原理、重要生理代谢机制等理论知识,学习植物生理学基本的研究方法和实验技术,培养学生进行科学研究的基本技能,提高学生动手能力以及分析问题、解决问题的能力,养成严谨的科学态度。
二、内容简介《植物生理学》是植物学科方向的高级课程,《植物生理学》实验课是充实课堂理论知识,锻炼学生动手操作能力,培养学生实验基本技能的辅助课程。
该课程通过实践操作,使学生掌握组成植物体各部分的组织学特征及根、茎、叶等器官的细胞学特征,以及掌握植物生理中水分代谢、光合作用、抗性生理、有机物质转化等基本概念和操作技能,更加熟悉植物生理学基础知识,为学生学习后续课程及日后参加生产、科研等工作打下基础。
三、主要仪器设备:普通显微镜,水浴锅,可见分光光度计,托盘天平四、教学方法与基本要求1.必须在所有化学,生物化学等课程完成后才能开设本课程;2. 一般是在理论课教授完成后才进行实验课程的教学;3. 教学方法主要是学生自己操作,授课教师边讲解边示范。
五、考核方法实验报告作为平时成绩记录六、实验项目设置序号实验名称内容提要实验学时每组人数实验属性实验要求1 淀粉粒,石细胞,厚角组织的观察观察植物不同组织的细胞形态及结构 2 1 验证2 根尖形态与结构观察 观察根尖的形态与结构 2 1 验证3 茎的初生与次生结构观察 观察单、双子叶植物茎的初生与次生结构 2 1 验证4 叶表皮细胞,气孔与结构观察观察植物叶表皮细胞及气孔形态与叶横切面结构2 1 验证5 植物细胞原生质流动和质壁分离现象的观察观察植物细胞原生质流动,质壁分离的现象2 1 综合6 植物组织水势的测定 利用小液流法测定植物组织的水势 3 4 综合7 植物叶绿素的提取、分离、性质及吸收光谱利用有机溶剂提取新鲜植物叶片的叶绿素,观察叶绿素的荧光现象,掌握吸收光谱测定方法3 4 综合8 过氧化物酶及超氧化物歧化酶活性的测定掌握植物材料中过氧化物酶及超氧化物歧化酶活性测定原理与方法,比较各种植物材料中酶活性的变化2 4 综合9 油类种子萌发时脂肪酸含量的变化掌握油类种子里脂肪酸测定的方法,比较它们在萌发过程中含量的变化3 4 综合小计21。
《植物生理学实验》课程大纲一、课程概述课程名称(中文):植物生理学实验(英文):Plant Physiology Experiments课程编号:18241054课程学分:0.8课程总学时:24课程性质:专业基础课前修课程:植物学、生物化学、植物生理学二、课程内容简介植物生理学是农林院校各相关专业的重要学科基础课,是学习相关后续课程的必要前提,也是进行农业科学研究和指导农业生产的重要手段和依据。
本实验课程紧密结合理论课学习内容,加深学生对理论知识的理解。
掌握植物生理学的实验技术、基本原理以及研究过程对了解植物生理学的基本理论是非常重要的。
本大纲体现了植物生理学最实用的技术方法。
实验内容上和农业生产实践相结合,加强学生服务三农的能力。
实验手段和方法上,注重传统、经典技术理论与现代新兴技术的结合,提高学生对新技术、新知识的理解和应用能力。
三、实验目标与要求植物生理学实验的基本目标旨在培养各专业、各层次学生有关植物生理学方面的基本研究方法和技能,包括基本操作技能的训练、独立工作能力的培养、实事求是的科学工作态度和严谨的工作作风的建立。
开设植物生理学实验课程,不仅可以使学生加深对植物生理学基本原理、基础知识的理解,而且对培养学生分析问题、解决问题的能力和严谨的科学态度以及提高科研能力等都具有十分重要的作用。
要求学生实验前必须预习实验指导和有关理论,明确实验目的、原理、预期结果,操作关键步骤及注意事项;实验时要严肃认真专心操作,注意观察实验过程中出现的现象和结果;及时将实验结果如实记录下来;实验结束后,根据实验结果进行科学分析,完成实验报告。
四、学时分配植物生理学实验课学时分配实验项目名称学时实验类别备注植物组织水势的测定3学时验证性叶绿体色素的提取及定量测定3学时验证性植物的溶液培养及缺素症状观察3学时验证性植物呼吸强度的测定3学时设计性红外CO2分析仪法测定植物呼吸速率3学时设计性选修植物生长物质生理效应的测定3学时验证性植物种子生活力的快速测定3学时验证性果实、蔬菜中有机酸含量测定3学时设计性植物抗逆性的鉴定3学时设计性改良半叶法测定植物的光合速率6学时综合性选修植物生理综合演示实验3学时综合、设计性演示合计36学时注:本实验课程总计0.8学分,合24学时,安排8次实验,其中验证性实验占62.5%,综合性、设计性实验占37.5%。
五、实验内容安排实验一:植物组织水势的测定(3学时)(一)实验目的了解植物体不同组织和细胞之间、植物和环境之间水分移动与植物组织水势的关系;熟悉植物组织水势测定的原理和一般方法;掌握小液流法测定植物组织水势的基本方法。
(二)实验材料与用品实验材料:植物叶片。
实验用品:CaCl2或蔗糖溶液、甲烯蓝溶液、试管、带塞离心管、试管架、移液管、洗耳球、洗瓶、标签纸、吸水纸、旋涡混合器、打孔器(φ0.5cm)、塑料垫板、镊子、弯头吸管、超声波清洗机、烘箱、纯水机等。
(三)实验内容与方法1.配制0.05、0.10、0.15、0.20、0.25、0.30、0.35、0.40 mol·L-1共8种浓度的CaCl2或蔗糖溶液;2.测定女贞、冬青等功能叶片组织水势;3.计算植物组织水势;4.结果分析。
(四)作业1.测定植物组织水势有何意义?2.小液流法测定植物组织水势的优缺点?实验二:叶绿体色素的提取及定量测定(3学时)(一)实验目的了解叶绿素的荧光现象及产生荧光的机理;熟悉叶绿体色素的提取方法;掌握分光光度计法测定叶绿体色素含量的基本过程。
(二)实验材料与用品实验材料:新鲜植物叶片。
实验用品:95%乙醇(或丙酮)、碳酸钙、石英砂、电子天平、组织捣碎机(或研钵、研棒)、剪刀、漏斗、玻棒、烧瓶、量筒、722型分光光度计(或751型或其它精密型)、日光灯、圆形滤纸、吸水纸、擦镜纸等。
(三)实验内容与方法1.叶绿体色素的提取;2.叶绿素荧光的观察;3.分光光度计测定663nm、645nm的吸光值;4.计算Chla、Chlb的含量及Chla/b的比值。
(四)作业1.为什么提取叶绿素时干材料一定要用80%的丙酮,而新鲜的材料可以用无水丙酮提取?2.叶绿素a、b在蓝紫光区也都有一吸收峰,能否用这一吸收峰波长进行叶绿素a、b 的定量测定?3.分析比较活体测定的叶绿素含量与提取测定的区别。
实验三:植物的溶液培养及缺素症状观察(3学时)(一)实验目的了解植物的溶液培养技术在理论、生产上的实际应用;熟悉植物溶液培养法的原理和基本方法;掌握植物必需元素的生理作用及典型的缺素症状。
(二)实验材料与用品实验材料:玉米、蕃茄幼苗。
实验用品:硝酸钾、硫酸镁、磷酸二氢钾、硫酸钾、硫酸钠、磷酸二氢钠、硝酸钠、硝酸钙、氯化钙、硫酸亚铁、硼酸、氯化锰、硫酸铜、硫酸锌、钼酸、盐酸、乙二胺四乙酸二钠(EDTA-Na2)、烧杯、移液管、量筒、微量加液器、试剂瓶、培养缸、纯水机等。
(三)实验内容与方法1.配制系列溶液培养液:完全液、-N液、-P液、-K液、-Ca液、-Mg液、-Fe 液;2.将玉米苗或番茄幼苗固定在培养瓶中培养3-4个星期;3.每星期观察植株表现症状,同时补加或更换培养液;4.记录植株表现的症状并分析。
(四)作业1.为什么说溶液培养是研究矿物质营养的重要方法?2.溶液培养过程中,为什么要打气、补加或更换培养液?3.根据实验结果叙述玉米、番茄幼苗缺乏必需元素时所表现的症状并分析原因。
实验四:植物呼吸强度的测定(3学时)(一)实验目的了解不同组织器官、不同生育期植物呼吸强度的差异;熟悉呼吸速率在植物生理学研究及农业生产实践等方面的重要作用;掌握广口瓶法测定植物呼吸强度的基本方法。
(二)实验材料与用品实验材料:豆芽、黄豆;植物花、叶等不同器官。
实验用品:1/44 mol·L-1草酸溶液、0.05mol·L-1 Ba(OH)2溶液酚、酞指示剂、广口瓶测定呼吸装置、三角瓶、电子天平、酸式滴定管、滴定管架等。
(三)实验内容与方法1.装配广口瓶测定呼吸装置;2.空白滴定;3.样品滴定;4.计算呼吸强度。
(四)作业1.影响植物呼吸强度的因素有哪些?2.在呼吸强度测定中哪些步骤容易出现误差,应当怎样避免?3.测定植物呼吸强度有何意义?实验五:红外CO2分析仪法测定植物呼吸速率(3学时)(一)实验目的了解不同组织器官、不同生育期植物呼吸强度的差异;熟悉呼吸速率在植物生理学研究及农业生产实践等方面的重要作用;掌握红外线气体分析仪法测定植物呼吸强度的基本方法。
它不但快速、准确,而且可将测定信号变为电信号输出,便于仪器的自动化和智能化。
(二)实验主要仪器实验材料:番茄、桔子、草莓等果实或叶片以及蘑菇等活体植物。
实验仪器:GXH-3051型红外线CO2气体分析仪。
(三)实验内容与方法1.按说明书要求连接仪器;2.打开红外仪电源预热;3.调零与校准;4.测定;5.计算呼吸速率。
(四)作业1.掌握红外线CO2气体分析仪的原理与操作方法。
2.比较不同植物材料、不同生育期呼吸速率的差异。
实验六:植物生长物质生理效应的测定(3学时)(一)实验目的了解植物激素对各器官的不同效应;熟悉植物生长素的生理效应;掌握测定α-萘乙酸(NAA)生理效应的方法。
(二)实验材料与用品实验材料:小麦种子。
实验用品:饱和漂白粉(或0.1%HgCl2)、10mg·L-1萘乙酸(NAA)溶液、恒温培养箱、培养皿、移液管、微量取液器、圆形滤纸(直径与培养皿底内径相同)、尖头镊子、标签纸、纯水机等。
(三)实验内容与方法1.配制10、1、0.1、0.01、0.001、0.0001及0 PPM 的NAA溶液9mL于将培养皿中,编号;2.种子消毒,每个培养皿中摆放15粒种子,在暗中恒温箱中培养3天。
3.测定小麦种子萌发的根、芽生长量;4.记录原始数据并作图分析NAA对各器官的不同效应。
(四)作业1.你能否根据植物不同器官对生长素反应有所不同的原理,说明一些自然现象?2.根据生长素的生理效应,举例说明生长素在生产上的应用。
3.如果需要用植物激素处理以生产无根豆芽,选择哪种激素或生长调节剂?为什么?实验七:植物种子生活力的快速测定(3学时)(一)实验目的了解测定种子生活力对农业生产和种子经营产业的重要性;熟悉种子生活力检测的基本原理和各种方法的特点;掌握几种快速鉴定种子生活力的方法。
(二)实验材料与用品实验材料:小麦种子。
实验用品:0.1%TTC溶液、红墨水溶液、烘箱、培养皿、镊子、单面刀片、垫板(切种子用)、烧杯、棕色试剂瓶、滤纸等。
(三)实验内容与方法1.浸泡小麦种子:冷水16-20h或温水6-8h;2.随机取种子2份,每份50粒,用单面刀片沿胚部中线纵切成两半,其中一半用于测定。
同时将种子在沸水中煮沸3~5min,取5粒死种子作对照;3.把切好的种子分别放在培养皿中,一份加TTC溶液,以浸没种子为度,在30~35℃的恒温箱内保温30min。
另一份加红墨水溶液,以浸没种子为度,染色10~20min;4.用自来水反复冲洗,立即观察种胚着色情况,判断种子有无生活力。
(四)作业1.比较几种快速测定种子生活力方法所测得的结果是否相同?为什么?2.实验测得的发芽率与实际发芽率是否一致?为什么?3.就你所知,还有哪些快速测定种子生活力的方法?实验八:果实、蔬菜中有机酸含量的测定(3学时)(一)实验目的了解测定果蔬有机酸的意义;熟悉测定果蔬有机酸方法的一般原理;掌握果蔬中有机酸含量的测定方法。
(二)实验材料与用品实验材料:不同发育阶段的苹果、桔子。
实验用品:1%酚酞试剂、0.1 mol·L-1NaOH、电子天平、研钵、研棒、水浴锅、漏斗、移液管、容量瓶、量筒、三角瓶、碱式滴定管等。
(三)实验内容与方法1.有机酸提取:热水浸提果实、蔬菜中的有机酸;2.有机酸含量测定:碱滴定法测定有机酸含量;3.每组实验设3次重复;4.结果计算。
(四)作业1.分析比较不同果实或不同成熟度的果实有机酸含量的差异原因?2.为什么说柠檬酸含量是衡量果蔬品质的重要指标之一?实验九:植物抗逆性的鉴定(3学时)(一)实验目的了解细胞膜透性变化在科研上的应用;熟悉细胞膜系统的结构和功能;掌握电导率仪法测定植物叶片抗逆性的原理和方法。
(二)实验材料与用品实验材料:植物叶片。
实验用品:去离子水、DDS-11A型或DDS-11型电导仪、真空泵(附真空干燥器)恒温水浴锅、镊子、剪刀、烘箱、低温冰箱、移液管、烧杯等。
(三)实验内容与方法1.容器的洗涤;2.实验材料处理:正常与高温、低温等处理;3.使用电导率仪测定去离子水的电导率(本底值)和正常、逆境处理叶片的电导率;4.计算。
(四)作业1.测定电解质外渗量时,为何要对材料进行真空渗入?测定过程中为何要进行振荡? 2.细胞受伤后为何透性会变大?透性变大有何害处?3.据你所知,还有哪些因素会使细胞透性发生变化?透性增大是否都属反常现象?实验十:改良半叶法测定植物的光合速率(6学时)(一)实验目的了解生态环境因子对光合速率的影响;熟悉CO2分析仪法、光合仪测定光合速率与改良半叶法的差异;掌握改良半叶法测定植物光合速率的原理和方法。